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pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞系的建立及鑒定

2017-01-06 08:18:12張文政傅曉鐘
中國藥理學通報 2016年12期

陳 雅,李 靜,張文政,羅 敏,傅曉鐘,劉 亭

(1. 民族藥與中藥開發應用教育部工程研究中心,貴州 貴陽 550004;2. 貴州省藥物制劑重點實驗室,貴州 貴陽 550004;3.貴州醫科大學藥學院,貴州 貴陽 550004;4.國家苗藥工程技術研究中心,貴州 貴陽 550004)

◇實驗方法學◇

pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞系的建立及鑒定

陳 雅1,3,4,李 靜1,3,張文政1,3,羅 敏1,3,傅曉鐘1,3,劉 亭2,3

(1. 民族藥與中藥開發應用教育部工程研究中心,貴州 貴陽 550004;2. 貴州省藥物制劑重點實驗室,貴州 貴陽 550004;3.貴州醫科大學藥學院,貴州 貴陽 550004;4.國家苗藥工程技術研究中心,貴州 貴陽 550004)

目的 高效快速地建立穩定高表達鈉離子-牛磺膽酸共轉運多肽(sodium taurocholate cotransporting polypeptide,NTCP)的HEK293細胞系。方法 構建可表達EGFP-NTCP融合蛋白的pEGFP-NTCP重組質粒,并利用FuGENE 6轉染試劑將重組質粒轉染至HEK293細胞中。用熒光顯微鏡觀察綠色熒光蛋白表達情況,挑選轉染細胞進行14 d G418篩選和單克隆培養,以獲得穩定轉染細胞株。用RT-PCR法、qRT-PCR法和Western blot技術檢測穩定轉染細胞及正常細胞中NTCP mRNA和蛋白的表達情況,并進一步用超高效液相色譜-串聯質譜法(UPLC-MS/MS)考察穩定轉染細胞的牛磺膽酸攝取能力。結果 使用本文優化的方法,細胞轉染率可達90%。RT-PCR、qRT-PCR、Western blot和牛磺酸攝取實驗結果顯示:相對于正常組,在熒光顯微鏡下呈綠色熒光的轉染細胞;其NTCP表達均顯陽性(P<0.01);且穩定轉染細胞的牛磺膽酸攝取能力明顯升高(P<0.05)。結論 高效快速地建立了穩定高表達NTCP的HEK293細胞系,為膽酸衍生物攝取機制研究奠定了基礎。

NTCP;EGFP;穩定轉染;牛磺膽酸;HEK293細胞;高效快速

膽汁酸在肝臟中合成并儲備在膽囊,在食物的刺激下被腸道吸收,至回腸末端被腸壁吸收后,經門靜脈重新進入肝臟,被肝細胞攝取后再次分泌,進行肝腸循環[1]。研究發現,在肝腸循環中肝細胞對膽汁酸的攝取具有靶向性。而多數治療肝病的藥存在肝細胞富集能力差,對非靶器官毒性較大等缺點,因此可引入膽汁酸載體片段實現藥物的肝靶向性富集。研究表明介導血液中的膽汁酸進入肝細胞的關鍵載體蛋白是位于肝細胞表面的鈉離子-牛磺膽酸共轉運多肽(sodium taurocholate cotransporting polypeptide,NTCP)[1]。因此建立穩定高表達NTCP的HEK293細胞系,可為大規模篩選基于膽酸結構的具有肝靶向性的新藥提供一個便利的模型。 在構建穩定轉染細胞系的過程中,常常因為轉染效率低、表達不穩定等因素,使得整個工作周期變得冗長,增加了大量的額外工作。尤其在表達離子通道蛋白的細胞系構建上,由于離子通道蛋白活性鑒定較為繁復,通常需要利用到液質聯用等分析儀器,因此要選擇表達效率最高的轉染細胞尤為耗時耗力。鑒于此本文擬建立一種高效、方便的穩定高表達NTCP細胞系構建方法,不僅為肝靶向膽酸衍生物的篩選提供一個便利的工具,也旨在為他人建立穩定表達離子通道細胞系提供方法學參考。

1 材料

1.1 細胞 HEK293細胞株購自中國科學院細胞庫。

1.2 試劑 DMEM培養基(批號8114031)、胎牛血清(FBS,批號1227694)、胰蛋白酶(批號J130049)均購于美國Gibco公司;質粒pEGFP-N1、NTCP DNA購于北京博邁德基因技術有限公司;質粒提取試劑盒(批號08114KA1)、G418(批號G8160)、BCA蛋白濃度測定試劑盒(批號20160113)、牛血清白蛋白V(批號1112M055)、ECL Plus超敏發光液(批號20151020)、RIPA(批號20151020)均購于索萊寶公司;限制性內切酶EcoR Ι、BamH I(批號00187254)購于美國Thermo公司;鼠抗β-actin單抗(批號AB66132)購于巴傲得生物科技有限公司;牛磺膽酸(批號2015092601)購于Regent Sicence Industry Limited公司;RNA提取試劑盒(批號7020001018)、PVDF膜(批號K4SA1716L)均購于美國Millipore公司;FuGENE6轉染試劑(批號0000164121)購于美國Promega公司;GAPDH引物上游5′-GGTCCTGGTTCTCATTCCT-3′,引物下游5′-TTTGAGGGTGCAGCGAACTT-3′;NTCP引物上游5′-GGTCCTGGTTCTCATTCCT-3′,引物下游5-AGAGTAATATCATGGCAAA-3′,由上海生工公司合成;膜蛋白提取試劑盒(批號BB150121)購于上海貝博生物公司;TRIzol(批號15596026)購于美國Ambion公司;T4 DNA連接酶(批號K6901BB)、TransScriptTMOne-Step RT-PCR SuperMix(批號RR047A)、逆轉錄試劑盒(批號AK5301)均購于日本TaKaRa公司;兔抗NTCP多克隆抗體(批號GR90832-34)、鼠抗EGFP單克隆抗體(批號GR191827-3)均購于美國Abcam公司;羊抗兔IgG抗體(批號C2301)、羊抗鼠IgG抗體(批號C3114)均購于上海Santa公司。

1.3 儀器 CO2細胞培養箱(美國Thermo Scientific公司);超凈工作臺(北京東聯哈爾儀器制造有限公司);數顯立式壓力蒸汽滅菌器(上海博訊實業有限公司醫療儀器廠);Allegra 64R 冷凍高速離心機(美國Beckman公司);熒光倒置顯微鏡(日本尼康公司);Acugity-TDQ型超高效液相色譜-串聯質譜(美國Waters公司);PowerPac Basic電泳儀、Modle 680酶標儀、垂直電泳槽、ChemiDoc XRS+凝膠成像儀(美國Bio-Rad公司)。

2 方法

2.1 pEGFP-NTCP質粒的構建 將NTCP基因片段與pEGFP-N1載體分別用EcoR Ⅰ與BamH Ⅰ雙酶切,切膠回收后用T4連接酶切產物。將連接產物轉化至TOP10感受態大腸桿菌中,在0.1%卡拉霉素的LB瓊脂平板上37℃培養12 h后,挑選單克隆至含0.1%卡拉霉素的LB培養基中,200 r·min-1、37℃培養14 h。然后用質粒提取試劑盒提取質粒。

2.2 pEGFP-NTCP質粒的鑒定 將提取的質粒EcoR Ⅰ與BamH Ⅰ雙酶切后,挑取陽性克隆進行測序鑒定。

2.3 HEK293細胞的培養 用含10%胎牛血清的DMEM培養液在37℃、5% CO2中靜置培養HEK293細胞,細胞達到80%匯合時,用胰蛋白酶消化傳代。

2.4 確定G418篩選濃度 取生長到對數期的HEK293細胞,胰酶消化后計數,用完全培養基將細胞密度調整為2.4×108·L-1。在6孔板每孔中加入2 mL細胞懸浮液,于37℃,5% CO2條件下培養24 h。待細胞匯合度達到80%后,在6孔板中分別加入不同濃度抗生素G418(100、200、400、500、600、700、800 mg·L-1)。每隔2 d換液(含同濃度抗生素的培養液)1次,并觀察細胞生長狀態,選擇5 d后大批量死亡、14 d后全部死亡的最低G418濃度為最佳篩選濃度。

2.5 pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞系的構建

2.5.1 篩選最佳轉染條件 取對數生長期的HEK293細胞,胰酶消化后,用完全培養基調整細胞密度為1.0×108、1.5×108、2.0×108、2.4×108·L-1,然后轉至96孔板中,每孔加入100 μL,培養24 h。細胞匯合度分別為50%、60%、70%、80%。按FuGENE6轉染試劑說明書配制轉染工作液,使pEGFP-NTCP質粒與FuGENE6的比例分別達到6 ∶1、4 ∶1、3 ∶1、1.5 ∶1,并在不同匯合度的HEK293細胞中均加入不同比例的轉染液。分別孵育24、30、48 h后熒光顯微鏡下觀察。篩選出最佳轉染條件。

2.5.2 挑選穩定轉染HEK293細胞單克隆培養[2-3]取對數生長期的HEK293細胞,胰酶消化后,在6孔板中每孔加入2 mL密度為2.4×108·L-1的細胞懸浮液。培養30 h后,細胞達到80%匯合度,按FuGENE6轉染試劑說明書配制pEGFP-NTCP質粒與FuGENE6比例為1 ∶3的轉染液,將轉染液加入到HEK293細胞中,孵育30 h后熒光顯微鏡下觀察。選取轉染效率為90%的細胞,將原培養液更換濃度為800 mg·L-1的G418的選擇性培養液[5],每隔2 d更換1次相同選擇性培養液,孵育14 d后,基本得到含G418抗性HEK293細胞的克隆,挑選單個細胞克隆擴大培養,更換800 mg·L-1的G418培養液維持篩選。

2.6 RT-PCR鑒定NTCP mRNA的表達

2.6.1 RT-PCR測定穩定轉染 HEK293細胞系中NTCP mRNA水平對穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞,利用總RNA提取試劑盒提取細胞中總RNA,通過逆轉錄試劑盒將總RNA逆轉錄成cDNA,以0.5 μg cDNA為模板,利用NTCP引物進行PCR擴增,25 μL擴增體系包括:上下游引物各0.5 μL,dNTP 2.0 μL,rTaq 0.2 μL,MgCl21.5 μL,10×buffer 2.5 μL。PCR擴增程序為:95℃預變性5 min,94℃變性30 s,55℃退火1 min,40個循環,72℃延伸10 min。以GAPDH作為內參,擴增后經瓊脂糖凝膠電泳鑒定。

2.6.2 qRT-PCR測定 NTCP mRNA水平以0.1 μg mRNA逆轉錄后的cDNA為模板,20 μL熒光定量PCR反應體系包括:1.0 μL cDNA,上下游引物(10 μmol·L-1)各0.8 μL,SYBR?Premix Ex TaqTMII 10 μL。PCR擴增程序同2.5.1。以GAPDH為內參,通過2(-△△Ct)方法分析數據。

2.7 Western blot測定NTCP、EGFP的蛋白表達 利用膜蛋白提取試劑盒提取穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞膜蛋白,用BCA試劑盒測定蛋白含量。取等量膜蛋白變性進行SDS-PAGE凝膠電泳,電泳結束后通過轉膜裝置將蛋白轉印至PVDF膜,并將膜在5%的BSA中封閉2 h,分別加入兔抗NTCP多克隆抗體和鼠抗EGFP單克隆抗體4℃孵育14 h后,對應加入二抗羊抗兔IgG抗體和羊抗鼠IgG抗體室溫下孵育2 h。用ECL進行檢測,通過ChemiDoc XRS+系統成像。

2.8 pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞系的功能鑒定

2.8.1 考察牛磺膽酸對HEK293細胞及穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞安全濃度范圍 將對數生長期的HEK293細胞與穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞消化后,調整細胞密度為2.4×108·L-1。96孔板中每孔加入100 μL細胞懸浮液,孵育24 h后,在穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞孔中加入濃度分別為:25、50、100、200、400 μmol·L-1的牛磺膽酸。放入孵育箱孵育1 h后,吸棄藥液,每孔加入100 μL培養基及5 μL MTS溶液孵育3 h,最后利用酶標儀檢測490 nm波長處吸收值,按以下公式計算細胞存活率,考察安全濃度范圍。

2.8.2 HEK293細胞及穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞對牛磺膽酸的攝取[4-5]參考已有文獻[4],并稍作調整。具體步驟如下,取匯合度為90%的HEK293細胞與穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞,胰酶消化,并調整細胞密度為2.4×108·L-1,在6孔板中每孔加入2 mL細胞懸浮液。孵育24 h后分別加入濃度為10、25、50、100、200 μmol·L-1的牛磺膽酸,并于培養箱孵育30 min后,用200 μL的RIPA裂解細胞,通過BCA試劑盒測定蛋白濃度,裂解液與甲醇的比值按1 ∶6混勻,13 800×g離心20 min,沉淀蛋白,最后通過UPLC-MS/MS測定牛磺膽酸的攝取量,計算正常HEK293細胞與穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞中單位蛋白藥物的攝取量。

2.9 色譜與質譜條件 色譜柱Waters Van Guard BEH C 18(2.1 mm×50 mm,1.7 μm)柱,柱溫:45℃,流速:0.35 mL·min-1,進樣體積:2.0 μL,流動相:A:含0.1%甲酸的乙腈,B:含0.1%甲酸的水,梯度洗脫:5% A(0~1.5 min),5%~100% A(1.5~4 min),5% A(4~6 min)。錐孔電壓為:45 V,質譜采用選擇離子監測(SIR),以格列本脲為內標,用于定量正離子對(m/z):515.71。

3 結果

3.1 pEGFP-NTCP質粒的鑒定 瓊脂糖凝膠電泳顯示:pEGFP-NTCP質粒的主帶在5.7 kb左右,如Fig 1所示,與理想大小相符合。pEGFP-NTCP質粒的EcoR Ⅰ與BamH Ⅰ雙酶切產物亦符合理論大小,如Fig 2所示。將陽性克隆送出測序,結果與GenBank(L21893.1)報道的NTCP序列相符,說明質粒pEGFP-NTCP構建成功。

3.2 NTCP穩定轉染細胞模型的建立與鑒定 質粒通過FuGENE 6轉染試劑轉染至HEK293細胞后,利用濃度為800 mg·L-1的G418篩選成功轉染的細胞,d 5細胞開始大量死亡,d 14后大部分細胞死亡,如Fig 3所示。基本得到G418抗性HEK293細胞的克隆,挑選單克隆繼續進行篩選擴增。

Fig 1 Gel electrophoresis of pEGFP-NTCP recombinant plasmid

M:DNA Marker 5 000; 1:pEGFP-NTCP recombinant plasmid

Fig 2 Identification of recombinant plasmid digested by EcoR Ⅰand BamH Ⅰ

M:DNA Marker 2 000; 1:pEGFP-NTCP recombinant plasmid

3.2.1 熒光顯微鏡鑒定穩定轉染 pEGFP-NTCP的HEK293細胞系在熒光顯微鏡下顯綠色熒光,如Fig 4所示。說明穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞表達含綠色熒光的融合蛋白。

3.2.2 RT-PCR鑒定NTCP轉錄的表達 瓊脂糖凝膠電泳結果顯示,在GAPDH表達量相同時,HEK293細胞組擴增不出目的條帶,而pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞可擴增出175 bp的目的片段,如Fig 5所示。qRT-PCR結果顯示,與正常組相比,pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞中的NTCP mRNA表達明顯升高,且差異有顯著性(P<0.01),如Tab 1所示。說明外源性基因已整合到HEK293細胞中,且能轉錄出相應的mRNA。

CellNTCPmRNAStabletransfectedHEK293cells14939.56±1034.98**HEK293cells1.00±0.06

**P<0.01vsHEK293 cells

3.2.3 Western blot鑒定NTCP、EGFP特異性蛋白的表達 以HEK293細胞作為陰性對照,穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞的NTCP特異性蛋白表達呈陽性,且EGFP特異性蛋白表達也同時呈陽性,如Fig 6所示,與RT-PCR結果相符。說明穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞系構建成功。

Fig 3 Cell morphology(×100) A:Culture for first day; B:Culture for fifth day;C:Culture for fourteenth day

Fig 4 Cell morphology under fluorescence microscope(×100)

Fig 5 Analysis of NTCP mRNA by RT-PCR

M:DNA Marker 5 000;1:NTCP from RNA of HEK293 cells;2:NTCP from RNA of stable transfected HEK293 cells;3:GAPDH of HEK293 cells;4:GAPDH of stable transfected HEK293 cells

Fig 6 Western blot

1:Stable transfected HEK293 cells; 2:HEK293 cells

3.3 pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞功能鑒定

3.3.1 牛磺膽酸的細胞安全濃度范圍 實驗結果表明,受試化合物濃度在400 μmol·L-1以下對HEK293細胞及轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞均沒有毒性作用(P>0.05),如Tab 2所示。因此研究HEK293細胞及穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞的牛磺膽酸攝取能力時,可選擇作用時間1 h之內、受試化合物濃度在400 μmol·L-1以下的條件進行實驗。

3.3.2 牛磺膽酸對HEK293細胞及穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞的攝取 分別給濃度為10、25、50、100、200 μmol·L-1的牛磺膽酸至HEK293細胞及穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞中,測定牛磺膽酸的攝取量。實驗結果表明pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞對牛磺膽酸的攝取從濃度50 μmol·L-1開始趨于飽和,且穩定轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞對牛磺膽酸的攝取明顯高于HEK293細胞(P<0.05),如Fig 7所示,說明轉染pEGFP-NTCP的HEK293細胞系模型構建成功。

Fig 7 Concentration dependence of taurocholate uptake

**P<0.01vscontrol group. Uptake of taurocholate into stable transfected HEK2932(■),Uptake of taurocholate into HEK2932(●)

4 討論

鑒定穩定轉染細胞系是否構建成功的重要標志是外源基因是否表達以及目的蛋白是否具有活性。本文構建了一個能表達NTCP載體蛋白和EGFP熒光蛋白的穩定轉染細胞系,為了驗證該細胞是否構建成功,本文利用熒光顯微鏡觀察、RT-PCR、qRT-PCR、Western blot和膽酸攝取實驗等方法來進行鑒定。實驗表明,細胞系在熒光顯微鏡下顯綠色熒光;RT-PCR、qRT-PCR、Western blot表明NTCP和EGFP蛋白在轉染細胞中得到了表達;并且膽酸攝取實驗證實所表達的NTCP 目的蛋白具有活性。以上實驗說明pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞系構建成功。

HEK293細胞是常用于研究外源基因的細胞株,具有轉染效率高、極少表達細胞外配體所需的內生受體等特點[6];FuGENE 6轉染試劑是一種非脂質體轉染試劑,與其它試劑相比具有更高的轉染效率、毒性更低等優勢。因此實驗選用HEK293細胞作為宿主細胞,FuGENE 6作為轉染試劑來篩選最佳轉染條件。實驗發現轉染效率隨細胞匯合度的增加而增加,且細胞匯合度達到80%時轉染效率最佳;當FuGENE 6轉染試劑與pEGFP-NTCP質粒濃度比例在3 ∶1時轉染效率最佳;pEGFP-NTCP質粒轉染HEK293細胞30 h轉染效率達到最佳,48 h細胞明顯部分死亡。因此本實驗選用細胞融合度為80%,FuGENE 6轉染試劑與轉染質粒濃度比例為3 ∶1,轉染時間為30 h進行轉染。實驗表明,在該條件下,轉染效率可達90%。此外,本文還發現,當HEK293細胞形態縮小且生長偽足時,會降低轉染效率。

Tab 2 Toxic effects of taurocholic acid on cells after 1 ±s,n=3)

增強的綠色熒光蛋白(enhanced green fluorescent protein, EGFP)是綠色熒光蛋白(green fluorescent protein GFP)的突變體[7],其熒光強度比GFP高6 倍以上,比GFP更適合作為報告基因監測外源基因表達[8]。為了提高轉染效率,并快速挑選出蛋白表達效率高的單克隆,本文構建了能表達EGFP-NTCP融合蛋白的pEGFP-NTCP重組質粒,并轉入HEK293細胞,通過比較綠色熒光強度來挑選表達效率最高的單克隆進行擴增培養,成功建立穩定表達NTCP的HEK293細胞系。并且牛磺膽酸的攝取實驗數據顯示,穩定轉染細胞對牛磺膽酸的攝取量明顯高于正常細胞,表明EGFP-NTCP融合蛋白具有NTCP特異性介導的運輸功能。本文使用的方法解決了構建穩定轉染細胞時存在的轉染效率低、目的蛋白表達不穩定、目的蛋白活性鑒定繁復等問題,提升了構建穩定表達NTCP轉染細胞的工作效率。

綜上所述,建立pEGFP-NTCP穩定轉染HEK293細胞便于高效快速得到穩定高表達NTCP蛋白的轉染細胞系,且不影響NTCP特異性介導的運輸功能,為膽酸衍生物開發及研究奠定了基礎。

(致謝:感謝傅曉鐘老師與劉亭老師的細心指導,感謝李靜同學、羅敏同學和張文政同學的熱心幫助。)

[1] Schaap F G,Trauner M,Jansen P L.Bile acid receptors as targets for drug development[J].NatRevGastroenterolHepatol,2014,11(1):55-67.

[2] Kullak-Ublick G A, Ismair M G, Kubitz R,et al.Stable expression and functional characterization of a Na+-taurocholate cotransporting green fluorescent protein in human hepatoblastoma HepG2 cells[J].Cytotechnology,2000,34(1-2):1-9.

[3] Shimomura O,Johnson F H,Saiga Y,et al.Extraction, purification and properties of aequorin, a bioluminescent protein from the luminous hydromedusan, Aequorea[J].JCellCompPhysiol,1962,59:223-7.

[4] Zhou S M,Meng F G,Dani-an H G,et al.Green fluorescent protein and its application[J].ProgrBiotechnol,1999,19(2):56-9.

[5] Kain S R.Green fluorescent protein(GFP):applications in cell-based assays for drug discov[J].DrugDiscoveryToday,1999,4(7):304-12.

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Abstrate:Aim To construct HEK293 cell line with stable and high expression of sodium taurocholate cotransporting polypeptide(NTCP) efficiently and rapidly.Method Vector expressing EGFP-NTCP fusion protein was constructed and verified by DNA sequencing. The pEGFP-NTCP expression vector was transfected into HEK293 cells by FuGENE 6 transfection reagent. The transfected cells with high expression of green fluorescent protein were selected using fluorescence microscope for screening of G418 for 14 days to obtain cell lines stably and highly expressing NTCP. NTCP expression was detected by RT-PCR, qRT-PCR, Western-blot and the uptake experiment of taurocholic acid.Result RT-PCR, qRT-PCR, Western-blot and the uptake experiment revealed that compared to the control cells, the expression of NTCP was significantly positive(P<0.01) in stable trans-fected cells showing green fluorescence(P<0.05).Conclusion The HEK293 cell line with stable and high expression of NTCP has been established efficiently and rapidly, which provides a cellular model for the study of the mechanism of the uptake of bile acid derivatives.

Establishment and identification of HEK293 cell lines with stable and high expression of NTCP

CHEN Ya1,3,4, LI Jing1,3,ZHANG Wen-zheng1,3, LUO Min1,3, FU Xiao-zhong1,3,LIU Ting2,3

(1.EngineeringResearchCenterfortheDevelopmentandApplicationofEthnicMedicineandTCM(MinistryofEducation),Guiyang550004,China; 2.ProvincialKeyLaboratoryforPharmaceuticalPreparations,Guiyang550004,China;3.SchoolofPharmacy,GuizhouMedicalUniversity,Guiyang550004,China;4.NationalEngineeringResearchCenterofMiao′sMedicines,Guiyang550004,China)

NTCP; EGFP; stable transfection; taurocholic acid; HEK293 cells; efficient and fast

時間:2016-12-5 15:14

http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1086.R.20161205.1514.050.html

2016-06-08,

2016-08-22

國家自然科學基金資助項目(No 81460523);貴州省優秀青年科技人才培養對象專項基金(No 2013-45號);貴州省社會發展攻關計劃項目(No 2013-3031號);貴州省中藥現代化科技產業研究開發專項(No 2013-4001號);貴州省科學技術基金(No 黔科合J字[2014]2018號)

陳 雅(1991-),女,碩士生,研究方向:藥物化學及藥理學,E-mail: 635959626@qq.com; 傅曉鐘(1972-),男,博士,教授,碩士生導師,研究方向:藥物化學,通訊作者,E-mail: xiaozhong_fu@sina.com; 劉 亭(1981-),男,博士,副教授,碩士生導師,研究方向:藥理學,通訊作者,E-mail: 1586740@qq.com

10.3969/j.issn.1001-1978.2016.12.025

A

1001-1978(2016)12-1767-06

R282.74;R322.61;R341;R394.2

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