粘質沙雷氏菌產靈菌紅素的碳源分析、菌種誘變及動力學

榮廣健，張佑紅，陳艷，諶頡，黃萌，周鋒

（1武漢工程大學化學與環境工程學院，湖北 武漢 430073；2武漢工程大學化工與制藥學院，綠色化工過程教育部重點實驗室，湖北 武漢 430073）

粘質沙雷氏菌產靈菌紅素的碳源分析、菌種誘變及動力學

榮廣健1，張佑紅2，陳艷2，諶頡2，黃萌2，周鋒2

（1武漢工程大學化學與環境工程學院，湖北 武漢 430073；2武漢工程大學化工與制藥學院，綠色化工過程教育部重點實驗室，湖北 武漢 430073）

使用流式細胞儀研究了不同碳源對粘質沙雷氏菌ZSG新陳代謝的影響，發現不同碳源導致ZSG的DNA含量、細胞內部顆粒密度、表面粗糙度和細胞大小在發酵過程中呈現有差異的變化。對ZSG進行復合誘變篩得一株穩定突變菌株ZSG7，在250 ml搖瓶和5 L發酵罐中進行發酵，其靈菌紅素（PG）產量比出發菌株分別提高了62.5%和269%。對ZSG7進行發酵培養基優化后PG產量比優化前提高了100%。對ZSG7發酵進行溶氧分段控制模式調控后PG產量比DO調控前提高了30.9%。對ZSG7發酵進行恒定pH調控后比pH調控前提高了35.9%。對ZSG7發酵進行補料組分優化后比補料前提高了47.6%。基于Logistic方程和Luedeking-Piret方程建立了恒定pH7分批發酵和補料分批發酵的菌體生長模型和PG合成模型。擬合模型參數后，模型可以合理地描述恒定pH7分批發酵和補料分批發酵的過程。

流式細胞儀；碳源；靈菌紅素；動力學模型；誘變；優化；發酵

引 言

PG是一大類具有甲氧基吡咯環骨架結構的天然色素[1]。PG對多種癌細胞具有抑制作用[2-4]，還具有免疫抑制[5]、抗細菌[6]、抗真菌[7-8]、抗瘧疾[9]、除藻[10]、染色[11]等多種功能。PG對酸堿性敏感，在堿性條件下不穩定容易分解，在酸性條件下可較長時間保存[12]。PG是一種可以被粘質沙雷氏菌等多個種屬的微生物合成出來的次級代謝產物[13-15]。發酵過程中菌體生長和產物合成過程具有一定的規律性，構建發酵動力學模型可對菌體生長和產物合成過程進行深入研究[16]。目前流式細胞儀在微生物檢測領域應用廣泛[17]，但對PG發酵檢測分析的研究還比較少，同時關于PG發酵最佳pH的研究主要是初始pH，發酵中恒定pH的研究也比較少。本文首先使用流式細胞儀對粘質沙雷氏菌利用不同碳源時的生長代謝情況進行分析，然后通過菌種誘變、培養基優化和在5 L發酵罐中培養工藝優化來提高PG產量，最后進行發酵動力學模擬，為以后PG工業化奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 菌株

粘質沙雷氏菌株，由本實驗室自糖化車間酸性土壤中篩選獲得并保藏于中國典型培養物保藏中心（CCTCC NO: M 209195），菌株編號ZSG[18]。

1.2 實驗儀器

主要儀器：賽多利斯生物反應器，BIOSTAT A plus，購于廣州寶信捷生物應用設備有限公司；振蕩培養箱，SPX-250B-D，上海博訊實業有限公司醫療設備廠；超凈工作臺，AIR TECH，蘇凈集團安泰公司；高速離心機，TG18M，臺式多管低速離心機，TDZ5-WS，長沙平凡儀器儀表有限公司；紫外可見分光光度計，UV-1800，蘇州島津儀器有限公司；流式細胞儀，FACS Calibur，美國BD公司。

1.3 材料與溶液配制

瓊脂粉（強度＞1300 g·cm?2），牛肉浸膏，蛋白胨，酵母粉，魚粉蛋白胨，胰蛋白胨均為生化試劑BR。

蔗糖，甘油，油酸，可溶性淀粉，尿素，硝酸銨，無水氯化鈣，無水氯化鎂，氯化鉀，十二水合磷酸氫二鉀，氫氧化鈉，濃鹽酸，硫酸鈉，二甲亞砜（DMSO），十二烷基磺酸鈉（SDS），吐溫-80均為分析純。

固體培養基：牛肉膏0.5%，蛋白胨1%，瓊脂粉2%，NaCl 0.5%。

種子培養基：蔗糖0.5%，蛋白胨1.5%，NaCl 0.5%，MgCl20.25%，吐溫-80 1.0%。

發酵培養基：在種子培養基的基礎上調整。

PBS緩沖液：0.27 g KH2PO4，1.42 g Na2HPO4，8 g NaCl，0.2 g KCl，加去離子水約800 ml，充分攪拌溶解后加入濃鹽酸調節pH至7.2，定容至1 L，高溫高壓滅菌后室溫保存。

1.4 培養方法

保藏菌種經活化后接入裝有種子培養基的 250 ml錐形瓶中，裝液量為50 ml，將錐形瓶置于恒溫振蕩培養箱中29℃、160 r·min?1條件下培養24 h，按 10%的接種量接入發酵培養基中，29℃、160 r·min?1下培養。

1.5 菌體干重和PG濃度測量方法

本實驗采用陳艷等[19]測量菌體干重和PG濃度的方法進行測量。

1.6 DNA含量分布檢測

取發酵液0.5 ml于5 ml流式管中，2000 r·min?1離心5 min，棄上清。用PBS緩沖液清洗菌體，離心棄PBS，重復兩遍。沉淀中緩慢加入1 ml 70%的冰乙醇，對細胞進行破膜與固定，樣品保藏于?20℃冰箱中凍存過夜。分析時，離心棄上清，PBS溶液清洗兩遍。加入125 μl的試劑A（Trypsin buffer），20～25℃下反應10 min，降解細胞組織碎片，再加入 100 ml試劑 B（Trypsin inhibitor and Rnase buffer），20～25℃下反應 10 min，降解細胞中的RNA，最后再加入125 μl的試劑C（PI染料）進行DNA染色，2～8℃避光條件下孵育10 min后即可上 FCM 檢測。流式檢測圖譜采用 Cell Quest和Modifit軟件分析。

1.7 菌種誘變與篩選

先將處于對數生長期后期的粘質沙雷氏菌用體積分數1.0%的硫酸二乙酯處理20 min（終止反應為加入 25%的硫代硫酸鈉溶液），然后用紫外線照射20 s，最后稀釋涂平板，在恒溫29℃下培養48 h，挑取單菌落進行搖瓶發酵實驗，篩選PG產量最高且穩定的突變菌株。

1.8 突變菌株發酵培養基優化

采用單因素實驗和 L9(34)正交實驗對發酵培養基進行優化。

1.9 突變菌株溶氧分段控制模式調控

培養條件：5 L發酵罐中裝液量為3 L，培養溫度29℃，不調pH，發酵周期為66 h。實驗設置4組DO分段控制模式（如圖5）：（A）發酵全程均為轉速200 r·min?1，通氣比1 vvm，作為對照；（B）第0～12 h轉速200 r·min?1，通氣比1 vvm，第12～24 h DO為10%，將DO偶聯轉速，系統自動將DO恒定，第24 h以后控制DO為30%；（C）第0～12 h DO為10%，第12～24 h DO為30%，第24 h以后DO為60%；（D）第0～12 h DO為30%，第12～24 h DO為60%，第24 h以后DO為90%。在發酵過程中，適當調節通氣量，保證轉速處于200～500 r·min?1之間。

1.10 突變菌株恒定pH發酵調控

使用突變菌株在5 L發酵罐中進行發酵實驗，裝液量3 L，接種量10%，29℃，發酵周期66 h，DO為前面最優條件。發酵設置5組變量：不調pH（作為對照），恒定pH5，恒定pH6，恒定pH7，恒定pH8。pH使用pH探頭實時監控，由發酵系統軟件通過發酵系統主機的蠕動泵使用1 mol·L?1鹽酸溶液和 1 mol·L?1氫氧化鈉溶液自動調節發酵液pH，從而實現恒定pH。

1.11 突變菌株補料調控

在最佳恒定pH下進行補料培養，設置3種補料組分：（a）0.5%油酸、0.5%蛋白胨和0.5%吐溫-80；（b）1%蛋白胨和0.5%吐溫-80；（c）1%油酸和0.5%吐溫-80。流加方式為使用發酵系統自帶的蠕動泵蠕動流加。

1.12 發酵過程動力學數據處理

在發酵過程中定時取樣，測定樣品的菌體干重、PG含量，采用Origin 8.0軟件對發酵動力學模型參數進行求解。

2 結果與分析

2.1 使用流式細胞儀分析不同碳源對細菌的生長代謝調控的影響

本實驗設置了4組實驗，比較不同物質作碳源時 ZSG的生長代謝情況。發酵培養基配方：碳源0.5%，蛋白胨1.5%，NaCl 0.5%，MgCl20.25%，吐溫-80 1.0%，4組碳源分別為蔗糖、葡萄糖、牛肉膏、甘油。圖1是ZSG利用不同碳源時的菌體生長和PG合成曲線。使用流式細胞儀對粘質沙雷氏菌利用不同碳源時的生長代謝進行檢測分析，其細胞熒光（FL2-A）信號以及側向散射光（SSC）信號、前向散射光（FSC）信號分布如圖2（a）、（b）、（c）所示。FL2-A信號反映了細胞中DNA相對含量，信號強度越大，說明DNA含量越高。SSC信號反映了顆粒性質和細胞精細結構。細菌表面有細胞壁，表面比較光滑而粗糙度較小，當細菌長有纖毛時，細菌表面粗糙度顯著變大。細菌內部顆粒和表面纖毛共同影響著SSC信號，推測表面纖毛起的作用比細菌內部顆粒大。FSC信號表示相對細胞大小。

圖1 碳源對菌體干重和PG產量影響Fig.1 Effect of carbon source on DCW and PG production

圖2 流式細胞儀檢測結果Fig.2 Test results of flow cytometry

第0 h時，發酵開始，菌種被加入發酵罐，開始適應新環境，4組均處于遲滯期；FL2-A信號大多位于0～100道，極少量為100～200道，細胞中DNA含量比較低；絕大部分SSC信號處于0～50道，細胞顆粒還很少，纖毛還沒有長出；不同碳源下細胞大小有所不同，但大部分FSC信號處于25～50道之間。

第4 h時，蔗糖組、葡萄糖組、甘油組均進入對數生長期；蔗糖組和牛肉膏組FL2-A信號圖形都比較扁平，FL2-A信號迅速增長，表明DNA積累很快，甘油組FL2-A信號有少許增強，表明細胞中DNA含量不是很高，DNA復制不是很快，葡萄糖組幾乎沒有變化，可能是由于葡萄糖濃度過大反饋抑制了細胞中DNA合成；蔗糖組和牛肉膏組SSC信號幾乎未變化，說明此時細胞內部顆粒密度比較低，纖毛還沒有長出，葡萄糖組和甘油組中處于0～50道上的 SSC信號細胞比例明顯縮小，有一部分SSC信號移動到50～300道上，可能是由于細胞分裂和DNA復制比較慢，細胞中滯留一些顆粒；牛肉膏組細胞大小發生明顯變化，FSC信號圖變得扁平，波峰幾乎消失，大部分細胞DNA含量高而細胞還未分裂，故而細胞體積偏大。

第8 h時，4組均進入對數生長期；蔗糖組和牛肉膏組FL2-A信號開始降低，細胞中DNA含量明顯減少，大部分細胞是剛分裂出來的，葡萄糖組FL2-A信號則是從低道數向高道數移動，說明細胞中DNA含量緩慢增加，甘油組FL2-A信號圖形向低道數小范圍移動，表明DNA含量小范圍下降；蔗糖組、葡萄糖組和甘油組SSC信號增加，細胞內部顆粒增加，纖毛開始長出，牛肉膏組SSC信號雖然向高道數移動，但是高道數SSC信號較少，推測纖毛還沒長出；牛肉膏組FSC信號逐漸集中到25～50道之間，但是變化較小，表明細胞體積逐漸回復到原來大小。

第12 h時，蔗糖組PG開始合成，而葡萄糖組、牛肉膏組和甘油組只有微量合成；蔗糖組FL2-A信號增強，DNA相對含量增加，葡萄糖組和甘油組FL2-A信號降低，表明細胞完成分裂，細胞中DNA含量比較低，牛肉膏組FL2-A信號變化不大；蔗糖組SSC信號從第12～36 h緩慢增強，這期間細胞從對數生長期后期進入到穩定期，隨著細胞數目的增多，細胞分裂減慢至逐漸停止，個體為生存逐漸積累顆粒物質，增加纖毛來加強細菌群體交流；甘油組SSC信號變化在第12～36 h與蔗糖組相似，只是甘油組SSC信號要稍強，這期間甘油組仍然處于對數生長期，且甘油組中細胞分裂比較緩慢；葡萄糖組SSC信號從第12～30 h緩慢降低，說明隨著細胞分裂細胞內部顆粒和表面纖毛有些許減少。

第24 h時，蔗糖組和牛肉膏組已進入穩定期，葡萄糖組和甘油組仍處于對數生長期，4組都在合成 PG，但蔗糖組產量最大，葡萄糖組其次，甘油組再次，牛肉膏組最小；蔗糖組大部分FL2-A信號處于低道數上，這是因為大部分細胞為剛剛分裂出來的細胞，新細胞中DNA含量比較低，牛肉膏組FL2-A信號圖形幾乎沒有變化，葡萄糖組FL2-A信號從第24～30 h重復了從第8～12 h的熒光動向，表明這期間細胞又經歷了一次細胞分裂，但是時間相對延長，甘油組FL2-A信號增強，DNA含量細微增加；牛肉膏組FSC信號基本沒有變化。

第30 h時，葡萄糖組和甘油組仍處于對數生長期，4組合成PG的速度下降，但產量次序不變；蔗糖組FL2-A信號降低，DNA含量細微減少，甘油組FL2-A信號仍在增加；牛肉膏組SSC信號開始增強，細胞內部顆粒開始積累，纖毛開始生長。

第 36 h時，葡萄糖組和甘油組開始進入穩定期，蔗糖組和甘油組仍在慢速合成 PG，葡萄糖組和牛肉膏組停止合成 PG，但產量仍次序不變；蔗糖組出現一些較高FL2-A信號，可能是蔗糖組細胞適應穩定期后二次生長，葡萄糖組FL2-A信號進一步降低，甘油組FL2-A信號則向25～75道集中，DNA含量范圍縮小，細胞趨于保持現有狀態；葡萄糖組和牛肉膏組SSC信號進一步增強，說明細胞內部顆粒積累不少，纖毛長出很多。

第48 h時，蔗糖組和甘油組已停止合成PG；牛肉膏組出現一些較強的FL2-A信號，可能是細胞在穩定期后進行二次生長，蔗糖組高道數FL2-A信號減少，說明二次生長減緩，葡萄糖組FL2-A信號向25～75道集中，DNA含量范圍縮小，細胞趨于保持現有狀態；4組SSC信號明顯降低，細胞內部顆粒和表面纖毛減少。

綜上所述，菌體干重大小依次為牛肉膏組＞蔗糖組＞甘油組＞葡萄糖組，PG產量大小依次為蔗糖組＞葡萄糖組＞甘油組＞牛肉膏組，使用流式細胞儀對細菌個體分析發現粘質沙雷氏菌利用不同碳源時其DNA含量、細胞顆粒密度、表面粗糙度和細胞大小呈現不同變化。牛肉膏組細胞中DNA含量變化比較快，細胞顆粒密度增加和纖毛生長比較遲緩，對數生長期時細胞體積偏大，細胞生長繁殖很快，推測由于牛肉膏中包含碳氮源、無機鹽、生長因子等，營養豐富，牛肉膏組細胞繁殖過快，抑制了與生長繁殖無關的次級代謝如纖毛合成和PG合成，結果菌體干重最大，PG產量極低。PG合成是在對數生長期后期啟動的，牛肉膏組PG產量太少可能與PG前體的合成在對數生長期后期被抑制有關。葡萄糖組菌體干重最小，PG產量也不高，可能是由于葡萄糖是比較容易利用的碳源，其分解產物阻遏細菌利用其他碳源，進而細胞生長繁殖比較慢，同時PG合成緩慢，產量不高。甘油組菌體干重和PG產量均排第三，分析發現甘油組細胞中DNA含量、細胞顆粒密度、表面粗糙度和細胞大小等變化緩慢，細胞生長繁殖也較慢，PG產量最終比較低。蔗糖組菌體干重僅次于牛肉膏組，但PG產量最高，通過流式細胞儀分析，可以發現蔗糖組細胞中DNA含量、細胞顆粒密度、表面粗糙度和細胞大小等變化比較協調，蔗糖是二糖，沒有葡萄糖代謝阻遏效應，又沒有牛肉膏那么多營養成分，細胞利用蔗糖效率高，生長繁殖比較快，但沒有出現細胞生長大于分裂現象，也沒有抑制次級代謝產物的合成，所以PG產量很高。在這4種碳源中，未誘變的野生型粘質沙雷氏菌 ZSG使用蔗糖作碳源時菌體量和PG產量都比較高，說明蔗糖是這 4種碳源中最合適的。但是野生型粘質沙雷氏菌ZSG的PG產量還是太低，因此后續實驗將對ZSG進行菌種誘變，從根本上提高PG產量。

2.2 菌株誘變及篩選

經菌種誘變篩得一株 PG搖瓶產量達到 0.104 g·L?1的菌株 ZSG7，比出發菌株的 0.064 g·L?1提高了62.5%，其菌體干重0.93 g·L?1比原始菌株的0.73 g·L?1提高了27.4%。經過10代發酵培養其PG產量基本不變，說明遺傳穩定性良好，如表1。在5 L發酵罐中按相同條件（29℃，200 r·min?1，2 vvm）進行培養比較，誘變后ZSG7的最大菌體干重為0.84 g·L?1，與原始菌株的0.92 g·L?1相近，如圖3（a），其PG最高產量為0.1723 g·L?1，比原始菌株的0.0467 g·L?1提高了269%，誘變后PG產量提高很大，如圖3（b）。

2.3 發酵培養基優化

單因素實驗結果如圖4所示。突變株ZSG7使用油酸作為碳源和KCl作為無機鹽，其菌體干重和PG產量明顯高于用蔗糖作為碳源和MgCl2作為無機鹽時，即菌株最佳碳源和最佳無機鹽發生改變。由單因素實驗確定最佳碳源是油酸，最佳氮源是蛋白胨，最佳無機鹽是 KCl，最佳表面活性劑是吐溫-80。

表1 突變株傳代穩定性實驗Table 1 Mutant strain ZSG7 generation stability

圖3 原始菌株和突變菌株ZSG7在5 L反應器中發酵結果比較Fig.3 Comparison of fermentation results in 5 L reactor between original strain and mutant strain ZSG7

圖4 單因素實驗優化結果Fig.4 Optimization results of single factor experiments

以菌體干重和PG產量為指標，采用L9(34)正交實驗對油酸、蛋白胨、KCl和吐溫-80進行優化，實驗結果與分析如表2、表3和表4。

表2 培養基優化的培養基成分和水平Table 2 Medium components and levels of medium optimization

表3 優化培養基L9(34)正交實驗結果Table 3 Orthogonal results of optimization medium

表4 方差分析Table 4 ANOVA

由表3可知：由極差R可得，各因子對菌體生長的影響為B(蛋白胨) ＞A(油酸)＞C (KCl) ＞D (吐溫-80)，以菌體干重為指標時，A3B3C2D1為最佳培養基配方，菌體干重達到 1.5639 g·L?1；由極差 R′可得，各因子對PG產量的影響為B (蛋白胨) ＞ A(蔗糖)＞C (KCl) ＞D(吐溫-80) ，以PG產量為指標時，最優培養基配方為 A2B3C1D2，PG產量最高為0.2079 g·L?1。

由表4可知，FB＞3.110＞FA＞FC＞FD，表示B因素影響顯著，而A因素、C因素、D因素都不具有顯著影響。綜合考慮極差分析和方差分析，并且經過重復實驗，得出Serratia marcescens ZSG7產PG培養基最優配方為：油酸1.0%，蛋白胨1.5%，無水氯化鉀0.25%，吐溫-80 1.0%，NaCl 0.5%。在250 ml搖瓶中進行發酵，培養基優化后ZSG7菌體干重（1.19 g·L?1）比優化前（0.93 g·L?1）提高了28%，而PG產量（0.2079 g·L?1）則比優化前（0.104 g·L?1）提高了100%。

2.4 溶氧分段控制模式對PG產量的影響

圖5是4組模式的溶氧變化。DO實驗結果如圖6和表5所示，菌體干重為D組＞C組＞B組＞A組（對照組），PG產量為C組＞B組＞A組（對照組）＞D組。粘質沙雷氏菌合成PG是一個耗氧的過程，但并不是DO越大PG產量越高，其中D組每段控制模式的DO均大于C組的，但是PG產量卻遠遠低于C組，C組PG產量比對照組提高了30.9%。顯然C組控制模式（第0～12 h DO為10%，第12～24 h DO為30%，第24 h以后DO為60%）為粘質沙雷氏菌發酵產PG的最佳分段DO控制模式。

圖5 溶氧調控變化Fig.5 Variation of controlling DO

表5 溶氧分段控制下的發酵結果比較Table 5 Comparison of fermentation results by step controlling DO

圖6 溶氧對發酵過程的影響Fig.6 Effect of DO on fermentation

2.5 恒定pH對PG產量的影響

由圖7可知，當不調pH時，發酵液pH會隨著菌體繁殖發生變化：在0～4 h，pH基本保持在初始值4.9左右；在4～30 h，發酵液pH快速上升；第11 h時，pH為6；第23 h時，pH為7；第30 h時，pH為7.5，此時pH快速上升結束，以后pH上升極為緩慢，發酵結束時pH才到8.1。這表明該菌生長繁殖和生產PG是一個pH變大的過程。

圖7 粘質沙雷氏菌ZSG7發酵過程中pH曲線Fig.7 Curve of pH in fermentation process of Serratia marcescens ZSG7

設恒定pH5、6、7、8和不調pH（對照組）時的菌體生長速度分別為V5、V6、V7、V8和Vf。由圖8（a）可知，當菌體大量繁殖時，V7＞V6＞V5＞V8。不調pH時，在0～4 h，pH基本保持在4.9左右，在4～23 h，pH從4.9快速上升到7，這段時間菌體大量繁殖改變了發酵液pH，同時pH變化也給菌體生長速度帶來了影響。由圖8（a）和表6可知，恒定pH6和7時的最大菌體干重非常接近，明顯高于恒定pH5時與不調pH時，恒定pH8時V8最小，最大菌體干重也是最小，這表明在恒定pH8時細菌生長繁殖受到了影響。綜合考慮最大菌體干重和菌體生長速度，菌體生長繁殖的最適恒定pH是pH7。

圖8 恒定pH對發酵過程的影響Fig.8 Effect of pH on fermentation

設恒定pH5、6、7、8和不調pH時的PG生產速度分別為?5、?6、?7、?8和?f，PG最大產量分別為M5、M6、M7、M8和Mf。由圖8（b）可知，在第12～24 h時為?7＞?6＞?5＞?8，而在第24～42 h時為?7＞?6＞?8＞?5，其中恒定pH5發酵在第24 h以后就不再產 PG。最終 PG產量大小依次為M7＞M6＞M8＞M5，如表6。?5與M5低于恒定pH6和7條件下的，這說明由于發酵液（恒定pH5）酸性太高，有關PG合成的基因和酶受到了抑制，結果PG生產能力受到嚴重影響，產量大大降低。而 ?8與M8同樣很低，這說明由于在恒定pH8時細菌活性比較弱，同時PG在恒定pH8條件下不穩定，容易分解，大量PG在剛剛生產出來時就被恒定堿性環境所分解了。M6比Mf高出11.1%。而不調pH時的PG產量在發酵第12～34 h是高于pH6條件下的，這是因為不調pH時的發酵液pH在第11～23 h從pH6逐漸上升到pH7，粘質沙雷氏菌活性升高，產PG的速度加快，但是隨著發酵液pH在第23 h后超過7并繼續上升，由于PG在堿性條件下容易分解以及粘質沙雷氏菌活性因發酵環境堿性增強而下降，導致從第23 h開始PG生產速度不斷下降，結果PG最高僅為0.2813 g·L?1。當pH為7時，PG產生速度最快，產量最高，達到0.3822 g·L?1，比不調pH高出35.9%。因此，PG生產的最適恒定pH是pH7。

表6 恒定pH下的發酵結果比較Table 6 Comparison of fermentation results in constant pH

2.6 補料調控對PG產量的影響

在發酵第42 h時PG合成基本停止，因此補料起始點定為第42 h，持續12 h。補料發酵和分批發酵均是在pH恒定在7時進行。如圖9所示，3種補料組分與不補料時相比，菌體干重和PG產量都得到了提升。

由表7可知，不同補料組分下菌體干重和PG產量不同。與不補料的對照組相比，組分a、b、c的菌體干重分別提高了46.7%、29.4%和23.6%，而其PG產量分別提高了47.6%、33.6%和21.2%。補料組分a可以得到最高的菌體干重和PG產量，因此，采用補料組分a，在第42 h時補料，補充0.5%油酸、0.5%蛋白胨和 0.5%吐溫-80。如圖 9所示，當發酵78 h后PG含量下降，說明PG的分解大于生產，應該中止發酵，因此發酵周期定為78 h。

圖9 不同補料組分對發酵過程的影響Fig.9 Effect of different fed-batch components on fermentation

表7 補料控制下產PG的發酵過程參數比較Table 7 Comparison of parameters with PG production under fed-batch control

2.7 發酵動力學模型及模擬

2.7.1 菌體生長動力學模型及模擬 菌體生長動力學模型常用Monod及Logistic方程進行構建[20]。由圖8和圖9可以看出，菌體生長是一條S形曲線，本文采用Logistic方程模擬菌體生長動力學模型

其中，μm為最大比生長速率，Xm為最大菌體干重。以t=0，X=X0（X0為初始菌體干重）為條件，將Logistic方程式（1）進行積分，可得

對于補料發酵，當菌體生長進入穩定期后開始補料，可以設定補料前穩定期菌體干重為Xm1，則有

將圖8（a）中恒定pH7下的分批發酵的菌體干重數據代入式（2），非線性擬合可得Logistic方程參數，即X0=0.05 g·L?1，Xm=1.418 g·L?1，μm=0.415 h?1，R2=0.9916，說明兩者擬合效果非常好，如圖10（a）。其菌體干重X隨時間t變化的函數為

如圖 9（a），補料分批發酵的菌體生長曲線為雙S形，需要分段進行參數擬合，第1段S形曲線用式（2）進行擬合，參數為X0=0.05 g·L?1，Xm=1.426 g·L?1，μm=0.403 h?1，R2=0.9831，第2段S形曲線用式（3）進行擬合，參數為 Xm1=1.426 g·L?1，X0=1.57×10?10g·L?1，Xm=0.701 g·L?1，μm=0.448 h?1，R2=0.9815，說明擬合效果非常好，如圖10（b）。其菌體干重X隨時間t變化的函數為

2.7.2 產物動力學模型及模擬 PG合成起始于對數生長期后期，與菌體生長有部分偶聯，可以使用Luedeking-Piret方程[21]對其進行擬合

當a≠0、b=0時為生長偶聯型；a=0、b≠0時為非生長偶聯型；a≠0、b≠0時為部分生長偶聯型。將式（1）和式（2）代入式（7）后積分可得

圖10 菌體生長動力學的模擬Fig.10 Simulation of cell growth kinetics

圖11 PG生產動力學的模擬Fig.11 Simulation of PG production kinetics

將圖8（b）中恒定pH7下的分批發酵的PG數據和 X0、Xm、μm代入式（8），非線性擬合可得Luedeking-Piret方程參數為a=0.05，b=0.00832，這證明PG合成是部分生長偶聯型，R2=0.9577，說明擬合效果非常好，如圖11（a）。其PG濃度隨時間t變化的函數為

補料分批發酵全程的 X0=0.05 g·L?1，Xm=Xm1+0.707 g·L?1=2.127 g·L?1，μm=0.448 h?1，與圖9（b）中補料發酵PG數據一起代入式（8）進行非線性擬合，得a=0.4，b=0.00419，這也證明PG合成是部分生長偶聯型，R2=0.9934，說明擬合效果非常好，如圖11（b）。其PG濃度隨時間t變化的函數為

3 結 論

使用流式細胞儀研究了不同碳源對粘質沙雷氏菌生長代謝的影響，發現粘質沙雷氏菌利用不同碳源時其DNA含量、細胞顆粒密度、表面粗糙度和細胞大小呈現有差異的變化。未誘變的野生菌ZSG以蔗糖為碳源時PG產量最高，菌體干重比較高，DNA含量、細胞顆粒密度、表面粗糙度和細胞大小等變化比較協調，沒有葡萄糖代謝阻遏效應，沒有出現細胞生長大于分裂現象，也沒有抑制次級代謝產物的合成。

將野生菌ZSG進行誘變，得到一株穩定突變菌株ZSG7，在250 ml搖瓶和5 L發酵罐中發酵PG產量分別為0.104 g·L?1和0.1723 g·L?1，與出發菌株相比分別提高了62.5%和269%。突變菌株的最優發酵培養基是油酸 1.0%，蛋白胨 1.5%，KCl 0.25%，吐溫-80 1.0%，NaCl 0.5%。培養基優化后PG搖瓶產量比優化前提高了100%。ZSG7發酵中最佳溶氧分段控制模式是第0～12 h DO為10%，第12～24 h DO為30%，第24 h以后DO為60%，其PG產量是0.2813 g·L?1，比DO調控前提高了30.9%。ZSG7發酵中最佳恒定pH是pH7，其PG產量是0.3822 g·L?1，比pH調控前提高了35.9%。在ZSG7發酵中補料0.5%油酸、0.5%蛋白胨和0.5%吐溫-80后PG達到0.5643 g·L?1，比補料前提高了47.6%。

使用Logistic方程和Luedeking-Piret方程分別對在恒定pH7下的分批發酵和補料發酵的菌體生長和PG合成進行了動力學分析，用Origin 8.0軟件擬合出了動力學模型參數，較好地表現了菌株 ZSG7恒定pH7分批發酵和補料分批發酵的動力學特征。

符 號 說 明

a,b——與菌體生長相關的產物合成常數

M5,M6, M7,M8,Mf——恒定pH5、6、7、8和不調pH時的PG最大產量，g·L?1

t——發酵時間, h

V5,V6,V7, V8,Vf——恒定pH5、6、7、8和不調pH時的菌體生長速度，g·L?1·h?1

?5,?6,?7, ?8,?f——恒定pH5、6、7、8和不調pH時的PG生產速度，g·L?1·h?1

X——菌體干重, g·L?1

Xm——最大菌體干重, g·L?1

Xm1——補料前穩定期的最大菌體干重,g·L?1

X0——起始菌體干重, g·L?1

μm——最大比生長速率, h?1

下角標

m——最大

0——發酵起始

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Carbon source analysis, mutagenesis and kinetics of Serratia marcescens producing prodigiosin

RONG Guangjian1, ZHANG Youhong2, CHEN Yan2, CHEN Jie2, HUANG Meng2, ZHOU Feng2
(1School of Chemistry Environmental Engineering, Wuhan Institute of Technology, Wuhan 430073, Hubei, China;2School of Chemical Engineering and Pharmacy, Wuhan Institute of Technology, Key Laboratory for Green Chemical Process of Ministry of Education, Wuhan 430073, Hubei, China)

The DNA contents, the internal grain densities, the surface roughness and the cell sizes of Serratia marcescens ZSG cells were detected to have different changes by the flow cytometry when ZSG cells were cultivated in the medium with the different carbon sources. Through mutagenizing compoundly ZSG cells, a stable mutant strain ZSG7 was gained, of which the prodigiosin (PG) production in the 250 ml conical flask and in 5 L fermentor were increased by 62.5% and 269% compared with the the original strain yields, respectively. PG production of fermentation with the optimal culture medium in the 250 ml conical flask was increased by 100% compared with the unoptimized. After dissolved oxygen (DO) was optimized by step controlling, the PG production was increased by 30.9% compared with the DO-unoptimized. After constant pH was optimized, the PG production was increased by 35.9% compared with the pH-unoptimized. After the fed-batch components were optimized, the PG production was increased by 47.6% compared with the batch fermentation with constant pH7. The kinetic models about bacteria growth and PG formation of the batch fermentation with constant pH7 and the fed-batch fermentation were built based on the Logistic equation and Luedeking-Piret equation. With the fittingmodel parameters, the models could provide reasonable description for the processes of the batch fermentation with constant pH7 and the fed-batch fermentation.

flow cytometry; carbon source; prodigiosin; kinetic modeling; mutagenesis; optimization; fermentation

Prof. ZHANG Youhong, youhong@aliyun.com

Q 815；TQ 920.6

：A

：0438—1157（2017）01—0244—12

10.11949/j.issn.0438-1157.20160505

2016-04-19收到初稿，2016-10-10收到修改稿。

聯系人：張佑紅。

：榮廣健（1989—），男，碩士研究生。

湖北省科技廳省重點自然科學基金（2013CFA101）。

Received date: 2016-04-19.

Foundation item: supported by Hubei Key Natural Science Foundation, China (2013CFA101).