999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

紫杉醇生物合成途徑及合成生物學研究進展

2017-02-13 17:08:59匡雪君王彩霞鄒麗秋李瀅孫超
中國中藥雜志 2016年22期
關鍵詞:紫杉醇

匡雪君王彩霞鄒麗秋 李瀅 孫超

[摘要] 紫杉醇是一種從紅豆杉植物中提取的具有顯著抗癌效果的萜類次生代謝產物。作為有效的抗癌藥物,目前生產主要依賴于紅豆杉,供求矛盾十分突出。近年來,利用合成生物學技術建立新的紫杉醇來源途徑已成為研究熱點。目前,紫杉醇合成途徑基本框架已經確定;參與紫杉醇合成相關酶基因大部分已被克隆和鑒定;已經在大腸桿菌和釀酒酵母中異源合成了紫杉醇的前體物質紫杉烯和5α羥基紫杉烯。該研究對紫杉醇生物合成途徑及紫杉醇藥物中間體在大腸桿菌和釀酒酵母工程細胞中的合成進展進行了綜述,以期為生物合成紫杉醇進一步研究提供參考。

[關鍵詞] 紫杉醇; 合成途徑; 合成生物學

Recent advances in biosynthetic pathway and synthetic biology of taxol

KUANG Xuejun1, WANG Caixia2, ZOU Liqiu1, LI Ying1, SUN Chao1*

(1. Institute of Medicinal Plant Development, China Academy of Medical Sciences and Peking Union Medical College,

Beijing 100193, China;

2. Institute of Chinese Materia Medica, China Academy of Chinese Medical Sciences, Beijing 100700, China)

[Abstract] Taxol, a kind of terpenoid secondary metabolite produced by Taxus brevifolia, is an effective anticancer drug that manufacture relies mainly on the extraction form plants. In order to solve the resource shortage, a lot of work has been done to develop the alternative method. Recently, using synthetic biology to realize heterologous biosynthesis of the precursors of taxol has become a hotspot. Now, the basic framework of taxol biosynthetic pathways has been confirmed, and most enzyme genes involved in taxol biosynthesis have been cloned and identified. The two taxol precursors, taxa4(5),11(12)diene and taxa4(20),11(12)dien5αol, have been synthesized in Escherichia coli and Saccharomyces cerevisiae. Here this paper reviewed the recent advances in the biosynthetic pathway of taxol and the latest developments of synthetic biology, which aims to provide a guidance for the heterologous biosynthesis of taxol.

[Key words] taxol; biosynthetic pathway; synthetic biology

doi:10.4268/cjcmm20162210

紫杉醇是一種復雜的四環二萜類化合物,1971年首次由Wani等從短葉紅豆杉Taxus brevifolia Nutt.樹皮中提取出來并確定其結構[1]。該植物天然產物具有低毒、高效的抗癌效果,自1992年上市以來,廣泛用于卵巢癌、乳腺癌和非小細胞癌的治療,市場需求巨大[2]。

作為抗癌藥物,紫杉醇的分子結構非常復雜,有11個立體中心和1個17碳的四環骨架結構[3]。紫杉醇屬于次生代謝產物,合成量少,從短葉紅豆杉樹皮僅能獲得500 mg·kg-1的產量,遠遠滿足不了臨床的需要[34]。也有學者對其進行化學合成的研究,但合成路線復雜,而且反應條件難以控制,合成率低。因此,在后續的研究多集中于紫杉醇的半合成法,即首先從紫杉枝葉里提取出紫杉烷類中間產物,如10去乙酰巴卡亭Ⅲ (10deacetylbaccatin Ⅲ,10DAB)和巴卡亭Ⅲ(baccatin Ⅲ), 然后再經過化學合成得到紫杉醇[56]。該方法獲得的紫杉醇純度高、成本低,是工業化生產紫杉醇的主要方法,合成技術已比較純熟,但紫杉醇的生產仍受限于其來源植物[6]。紅豆杉是國家重點保護野生植物,從其來源植物中大量提取會對紅豆杉的生長造成嚴重威脅,且產量低,不適合大規模生產。利用合成生物學技術,通過微生物來合成紫杉醇的前體巴卡亭Ⅲ,再半合成紫杉醇是目前應用前景最廣闊的一種方法,有望解決市場上紫杉醇價格昂貴、供不應求的現狀,并且對于瀕危藥用植物的保護具有十分重要的意義[46]。

1 紫杉醇的生物合成途徑

紫杉醇的生物合成可分為3個階段:①紫杉烷環母核結構的合成,以巴卡亭Ⅲ為產物;②苯基異絲氨酸側鏈的合成;③側鏈與紫杉烷母核的C13位?;B接,然后在側鏈C2′位和C3′位分別被羥化和苯甲?;?,形成紫杉醇[78]。紫杉醇的生物合成途徑見圖1。

1.1 紫杉烷環母核結構的合成

1.1.1 三環二萜骨架的形成 作為二萜類化合物,紫杉醇類化合物是通過異戊二烯前體合成的[7]。萜類的異戊二烯結構單元可以通過位于細胞質中的甲羥戊酸途徑(mevalonic acid pathway,MVA)或位于質體中的磷酸甲基赤蘚糖醇途徑(methylerythritol phosphate,MEP)合成[9]。MVA途徑起始于乙酰輔酶A,經過6步酶促反應生成異戊烯焦磷酸(IPP);MEP途徑起始于丙酮酸和甘油醛3磷酸,經過7步酶促反應生成IPP[10]。IPP是MVA和MEP途徑的共同中間體,在異戊烯基焦磷酸異構酶(IDI)的作用下,部分IPP可以轉化為雙鍵異構體甲基丙烯基焦磷酸(dimethylallyl diphosphate,DMAPP) [11]。對于紫杉醇合成前體的來源還沒有定論,用上述 2條途徑抑制劑分別處理紅豆杉細胞后紫杉醇合成均受到抑制[1213]。IPP和DMAPP縮合,生成二萜化合物的共同前體——牻牛兒基牻牛兒基焦磷酸 (geranyl geranyl diphosphate,GGPP),然后,GGPP在紫杉烯合成酶(taxadiene synthase,TS)的催化下,環化生成紫杉烯[taxa4(5),11(12)diene],形成了紫杉醇的三環二萜骨架結構[1415]。

1.1.2 骨架上的官能團反應 紫杉烷環骨架形成后,在 C1,C2,C4,C5,C7,C9,C10和 C13位發生進一步的修飾,最終形成紫杉醇的前體巴卡亭Ⅲ(baccatin Ⅲ)[28]。這些修飾包括羥基化,羥基組上的酰基化、酮基化和環氧丙烷的形成[15] 。通過對天然紫杉烷類化合物含量分析和化學結構推測表明, 羥基化反應與?;磻墙换ミM行的, 即羥基組上的一些?;磻上扔谛碌牧u基化反應發生,所以給紫杉醇途徑研究增加了難度[29]。Eisenreich 等證實紫杉烷環上的所有羥基化反應均由依賴細胞色素P450的單加氧酶類催化完成[30]。紫杉醇合成過程中,其母核紫杉烯需經 8個碳位的有效羥化,分別是C1位、C2位、C4位、C5位、C7 位、C9位、C10位、C13位[3132]。目前,紫杉醇生物合成過程中的羥化酶研究已取得了一些進展,已經完成了C2 位、C5位、C7 位、C10位、C13位和C14位羥化酶基因的克隆與鑒定,見表1,其中催化C14位羥化的紫杉烷14β羥基化酶(taxol 14βhydroxylase,T14βH)考慮到在紫杉烷的結構中, C14位并沒有被氧化, 因此, 推斷該酶沒參與紫杉醇的生物合成,可能參與紫杉烷類的支路合成途徑[18]。在前體巴卡亭Ⅲ合成過程中,關于依賴乙酰輔酶A的?;磻?,目前已經完成3個基因的克隆與鑒定,分別為:紫杉烯醇5α乙酰氧化基轉移酶(taxadienol 5αOacetyl transferase,TAT)、紫杉烷2α苯甲?;D移酶(taxane2αObenzoyltransferase,TBT)和10β去乙酰巴卡亭Ⅲ乙酰氧基轉移酶(10deacetylbaccatin Ⅲ10Oacetyltransferase,DBAT)[2224]。

除了紫杉烯的 C5 位最先羥化外,其他位點的羥化順序及參與酶的底物特異性仍不明確[3334]。紫杉烯由紫杉烯 5α羥基化酶 (taxadiene 5αhydroxylase,T5αH) 在 C5 位上引入羥基,生成5α羥基紫杉烯[taxa4(20),11(12)dien5αol][19]。接著從5α羥基紫杉烯到2debenzoyltaxan的反應有2種推測[3536]:一是此萜烯中間體在 5α 羥基上由TAT酶催化其發生乙?;磻纬蓆axa4(20),11(12)diene5αyl acetate,再經紫杉烷 10β羥基化酶(taxoid 10βhydroxylase,T10βH)在 10 位上發生羥化反應,然后如何生成2debenzoyltaxan不清楚[35];二是此萜烯中間體在紫杉烷 13α羥基化酶(taxoid 13αhydroxylase,T13αH)催化作用下C13 位發生羥化反應,生成taxa4(20),11(12)diene5a,13diol,然而對于其他位點C1,C2,C4,C7,C9 位發生的羥基化作用,4,5環氧丙烷環的形成,C2,C5,C10 位羥基上的?;?C9 位的酮基化反應發生的順序尚不明確[3637],見圖1。2debenzoyltaxan形成后,由TBT催化其生成10去乙酰巴卡亭Ⅲ(10deacetyl baccatin Ⅲ,10DAB),然后發生紫杉烷環母核上的最后一步修飾反應——DBAT催化10去乙酰巴卡亭Ⅲ生成巴卡亭Ⅲ[2324]。

1.2 苯基異絲氨酸側鏈的合成

C13位側鏈是保證紫杉醇抗癌活性的關鍵因素,而且代謝調控研究表明側鏈對終產物合成限速影響大于三環二萜骨架[38], 因此了解側鏈生物合成途徑, 對提高紫杉醇的生物合成量具有實際意義。C13 苯基異絲氨酸側鏈起源、側鏈的連結次序和方式、組裝至巴卡亭Ⅲ形成紫杉醇的路徑都已清楚,絕大部分相關酶基因也已被克隆,見表1。側鏈的合成由兩步反應完成:首先,α苯丙氨酸(αphenylalanine)在苯丙氨酸氨基變位酶(phenylalanine aminomutase,PAM)的作用下異構化為β苯丙氨酸(βphenylalanine)[27],再與乙酰輔酶A結合生成βphenylalanyl CoA,目前此連接酶基因尚未克隆獲得[39]。

1.3 紫杉醇的形成

首先,巴卡亭Ⅲ 3氨基3苯丙醇基轉移酶(baccatin Ⅲ:3amino3phenylpropanoyltransferase,BAPT)以βphenylalanyl CoA作為?;w,催化巴卡亭Ⅲ的C13 位?;纬搔聀henylalanyl baccatin Ⅲ[25],再經過側鏈的羥化作用形成3′N去苯甲酰紫杉醇(3′Ndebenzoyltaxol),這一步的細胞色素P450羥化酶尚未克隆獲得[40]。然后3′N去苯甲酰2′脫氧紫杉醇 N苯甲?;D移酶(3′Ndebenzoyl2′deoxytaxol Nbenzoyltransferase,DBTNPT)催化側鏈上 C3′位N原子發生苯甲?;山K產物紫杉醇[26]。

2 紫杉醇的合成生物學研究

隨著紫杉醇代謝途徑的逐步闡明,紫杉醇生物合成途經的一些步驟已經被轉化到大腸桿菌,釀酒酵母這些異源表達系統,制備獲得了不同的紫杉醇中間體,如紫杉烯和5α羥基紫杉烯[4149]。

2.1 大腸桿菌作為工程菌合成紫杉醇前體

紫杉烯是紫杉醇合成途徑中的一個重要中間產物,許多學者在大腸桿菌中對其進行了合成生物學研究[4244]。2001年,Hang等[42]將DXP合酶基因、IPP異構酶基因、GGPP合酶基因以及紫杉烯合酶基因在大腸桿菌中共表達,以異戊二烯焦磷酸為原料進行發酵,首次通過工程菌株獲得了紫杉醇合成途徑中的重要中間體紫杉烯,產量達到1.3 mg·L-1。紫杉烯在工程菌株中的成功合成說明了在微生物中通過組合不同的紫杉醇生物合成相關基因來獲得目標產物的方法是可行的。Ajikumar 等[43]在大腸桿菌中使用多元模塊代謝工程(multiple module metabolic engineering,MMME),以IPP為節點,將紫杉醇生物合成途徑分為2個模塊,即:產IPP的內源性MEP途徑的上游模塊和合成異源萜類化合物途徑的下游模塊。上游模塊包括MEP途徑的4個關鍵酶基因,即:dxs, idi, ispD, ispF,下游模塊包括紫杉醇代謝途徑中的2個基因:GGPP 合酶基因和紫杉二烯合成酶基因。首先,將下游模塊導入底盤細胞中,上游代謝模塊的4個基因由操縱子(dxsidiispDF)控制過表達,然后,利用改變質??截悢岛蛦幼訌姸鹊姆椒ㄕ{節下游模塊2個基因的表達強度。通過上下游模塊的平衡使整個代謝途徑達到最優化,使大腸桿菌中紫杉烯達到幾乎1 g·L-1的產量,這在目前是紫杉烯最高的產量。他們也進行了紫杉烯下一步的轉化,利用T5αH 使5α羥基紫杉烯的產量達到58 mg·L-1。近來,Biggs等[44]通過優化細胞色素P450酶在大腸桿菌中的表達,使總的氧化紫杉烷類產量達到570 mg·L-1。

2.2 酵母菌作為工程菌合成紫杉醇前體

由于大腸桿菌是原核生物,不含Ⅱ型P450氧化酶及還原酶的偶聯并缺少完整的內膜系統,細胞色素P450酶不能定位表達,而酵母菌可以產生有功能的Ⅱ型P450單加氧酶,并且具有完整的細胞內膜系統,能確保與紫杉醇生物合成相關的羥化酶基因的共表達,因此,釀酒酵母細胞更適合于較為復雜產物的合成[4546]。P450介導的氧化反應是紫衫烯合成巴卡亭Ⅲ的必經反應,故酵母菌成為表達紫杉醇中間產物的另一個選擇。2006年,DeJong等[47]將紫杉醇合成途經中從IPP到taxa4(20),11(12)diene5aacetoxy10βol的5個基因導入釀酒酵母,它們分別為:GGPPS基因,TS基因,T5αH基因,TAT基因和T10βH基因。然而,只有紫杉二烯的產量達到mg·L-1的級別,5α羥基紫杉烯的產量僅有25 mg·L-1,5α羥基紫杉烯接下來兩步反應的產物taxa4(20),11(12)diene5ayl acetate和taxa4(20),11(12)diene5aacetoxy10βol均沒有檢測到。該研究表明細胞色素P450酶T5αH介導的第一步氫化反應是限速步驟。Rontein等[48]在酵母菌中構建了紫杉烯5α羥基化酶、細胞色素P450還原酶融合基因,獲得的工程菌能夠進行第一步氧化反應。2008年,Engels 等[49]將密碼子優化的荊江紅豆杉的TS基因、HMGCoA還原酶基因、UPC21轉錄因子基因和噬酸熱硫化葉菌的GGPP合成酶基因導入釀酒酵母來生產紫杉醇的中間產物紫杉二烯。UPC21是酵母中調節甾醇生物合成的一個通用轉錄因子,通過加入UPC21,可以促進酵母細胞在有氧生長條件下吸收利用甾醇,降低甾醇的生物合成與構建的紫杉烯合成途徑的競爭。采用噬酸熱硫化葉菌的GGPP合成酶基因也是為了避免和甾體化合物合成競爭。最后,工程菌中紫杉二烯的產量達到8.7 mg·L-1,同時還有未被TS催化合成紫杉烯的前體物質牻牛兒基牻牛兒醇(geranylgeraniol) 33.1 mg·L-1,說明了紫杉烯的產量能得到進一步的提高。

3 展望

紫杉醇作為治療乳腺癌、卵巢癌和非小細胞肺癌的一線藥物,目前的生產主要依賴于從紅豆杉中提取前體之后再化學合成。開發成本低且產率高的生物合成的方法尤為重要,對紫杉醇生物合成路徑及相關酶的研究是進行紫杉醇異源生物合成的基礎。目前,紫杉醇合成途徑基本框架已經確定,參與的大部分酶也已經克隆得到,已經可以在大腸桿菌和釀酒酵母中異源合成紫杉醇的前體物質紫杉烯和5α羥基紫杉烯,但是由于紫杉醇生物合成途徑仍然沒有完全清楚,導致對紫衫烯到紫杉醇階段的合成研究較少,因此要利用生物合成實現紫杉醇的持續供應仍需付出艱苦努力。本草基因組學(herbgenomics)的快速發展為合成生物學研究提供了大量可供選擇和改造的生物學元器件,綜合運用各種組學技術,將極大地加速天然產物合成途徑的解析研究[5051]。

[參考文獻]

[1] Wani M C, Taylor H L, Wall M E, et al. Plant antitumor agents. VI. The isolation and structure of taxol, a novel antileukemic and antitumor agent from Taxus brevifolia [J]. J Am Chem Soc, 1971, 93(9):2325.

[2] Crown J, O′Leary M, Ooi W S. Docetaxel and paclitaxel in the treatment of breast cancer:a review of clinical experience [J]. Oncologist, 2004, 9(2):24.

[3] Kingston D G, Jagtap P G, Yuan H, et al. The chemistry of taxol and related taxoids [J]. Fortschr Chem Org Naturst, 2002, 84:53.

[4] 楊春, 孔令義, 汪俊松. 加拿大紅豆杉中紫杉烷類成分的研究進展及藥源危機解決方法探討[J]. 中國中藥雜志, 2014, 39(11):1961.

[5] Li Y, Zhang G, Pfeifer B A. Current and emerging options for taxol production [J]. Adv Biochem Eng Biotechnol, 2015, 148:405.

[6] Liu W C, Gong T, Zhu P. Advances in exploring alternative taxol sources [J]. RSC Adv, 2016, 6:48800.

[7] Howat S, Park B, Oh I S, et al. Paclitaxel:biosynthesis, production and future prospects [J]. N Biotechnol, 2014, 31(3):242.

[8] Tabata H. Production of paclitaxel and the related taxanes by cell suspension cultures of Taxus species[J].Curr Drug Targets, 2006, 7(4):453.

[9] Opitz S, Nes W D, Gershenzon J. Both methylerythritol phosphate and mevalonate pathways contribute to biosynthesis of each of the major isoprenoid classes in young cotton seedlings [J]. Phytochemistry, 2014, 98:110.

[10] Liao P, Hemmerlin A, Bach T J, et al. The potential of the mevalonate pathway for enhanced isoprenoid production [J]. Biotechnol Adv, 2016, 34(5):697.

[11] JarchowChoy S K, Koppisch A T, Fox D T. Synthetic routes to methylerythritol phosphate pathway intermediates and downstream isoprenoids [J]. Curr Org Chem, 2014, 18(8):1050.

[12] Malik S, Cusidó R M, Mirjalili M H, et al. Production of the anticancer drug taxol in Taxus baccata suspension cultures:a review[J]. Process Biochem, 2011, 46(1):23.

[13] Roberts S C. Production and engineering of terpenoids in plant cell culture [J]. Nat Chem Biol, 2007, 3(7):387.

[14] Hefner J, Ketchum R E, Croteau R. Cloning and functional expression of a cDNA encoding geranylgeranyl diphosphate synthase from Taxus canadensis and assessment of the role of this prenyltransferase in cells induced for taxol production [J]. Arch Biochem Biophys, 1998, 360(1):62.

[15] Wildung M R, Croteau R. A cDNA clone for taxadiene synthase, the diterpene cyclase that catalyzes the committed step of taxol biosynthesis [J]. J Biol Chem, 1996, 271(16):9201.

[16] Schoendorf A, Rithner C D, Williams R M, et al. Molecular cloning of a cytochrome P450 taxane 10 betahydroxylase cDNA from taxus and functional expression in yeast [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2001, 98(4):1501.

[17] Jennewein S, Rithner C D, Williams R M, et al. Taxol biosynthesis:taxane 13 alphahydroxylase is a cytochrome P450dependent monooxygenase [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2001, 98(24):13595.

[18] Jennewein S, Rithner C D, Williams R M, et al. Taxoid metabolism:taxoid 14betahydroxylase is a cytochrome P450dependent monooxygenase [J]. Arch Biochem Biophys, 2003, 413(2):262.

[19] Jennewein S, Long R M, Williams R M, et al. Cytochrome P450 taxadiene 5alphahydroxylase, a mechanistically unusual monooxygenase catalyzing the first oxygenation step of taxol biosynthesis [J]. Chem Biol, 2004, 11(3):379.

[20] Chau M, Croteau R. Molecular cloning and characterization of a cytochrome P450 taxoid 2alphahydroxylase involved in taxol biosynthesis [J]. Arch Biochem Biophys, 2004, 427(1):48.

[21] Chau M, Jennewein S, Walker K, et al. Taxol biosynthesis:molecular cloning and characterization of a cytochrome P450 taxoid 7 betahydroxylase [J]. Chem Biol, 2004, 11(5):663.

[22] Walker K, Schoendorf A, Croteau R. Molecular cloning of a taxa4(20),11(12)dien5alphaolOacetyl transferase cDNA from taxus and functional expression in Escherichia coli [J]. Arch Biochem Biophys, 2000, 374(2):371.

[23] Walker K, Croteau R. Taxol biosynthesis:molecular cloning of a benzoylCoA:taxane 2alphaObenzoyltransferase cDNA from taxus and functional expression in Escherichia coli [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2000, 97(25):13591.

[24] Walker K, Croteau R. Molecular cloning of a 10deacetylbaccatin Ⅲ10Oacetyl transferase cDNA from Taxus and functional expression in Escherichia coli [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2000, 97(2):583.

[25] Walker K, Fujisaki S, Long R, et al. Molecular cloning and heterologous expression of the C13 phenylpropanoid side chainCoA acyltransferase that functions in taxol biosynthesis [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2002, 99(20):12715.

[26] Walker K, Long R, Croteau R. The final acylation step in taxol biosynthesis:cloning of the taxoid C13sidechain Nbenzoyltransferase from Taxus [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2002, 99(14):9166.

[27] Walker K D, Klettke K, Akiyama T, et al. Cloning, heterologous expression, and characterization of a phenylalanine aminomutase involved in taxol biosynthesis [J]. J Biol Chem, 2004, 279(52):53947.

[28] Kingston D G. The shape of things to come:structural and synthetic studies of taxol and related compounds [J]. Phytochemistry, 2007, 68(14):1844.

[29] Fang W S, Liang X T. Recent progress in structure activity relationship and mechanistic studies of taxol analogues [J]. Mini Rev Med Chem, 2005, 5(1):1.

[30] Eisenreich W, Menhard B, Lee M S. Multiple oxygenase reactions in the biosynthesis of taxoids [J]. J Am Chem Soc, 1998, 120(37):9694.

[31] Croteau R, Ketchum R E B, Long R M, et al. Taxol biosynthesis and molecular genetics [J]. Phytochem Rev, 2006, 5(1):75.

[32] Wheeler A L, Long R M, Ketchum R E B, et al. Taxol biosynthesis:differential transformations of taxadien5αol and its acetate ester by cytochrome P450 hydroxylases from Taxus suspension cells [J]. Arch Biochem Biophys, 2001, 390(2):265.

[33] Jennewein S, Long R M, Williams R M, et al. Cytochrome P450 taxadiene 5alphahydroxylase, a mechanistically unusual monooxygenase catalyzing the first oxygenation step of taxol biosynthesis [J]. Chem Biol, 2004, 11(3):379.

[34] Hefner J, Rubenstein S M, Ketchum R E, et al. Cytochrome P450catalyzed hydroxylation of taxa4(5),11(12)diene to taxa4(20),11(12)dien5alphaol:the first oxygenation step in taxol biosynthesis [J]. Chem Biol, 1996, 3(6):479.

[35] Wheeler A L, Long R M, Ketchum R E, et al. Taxol biosynthesis:differential transformations of taxadien5 alphaol and its acetate ester by cytochrome P450 hydroxylases from Taxus suspension cells [J]. Arch Biochem Biophys, 2001, 390(2):265.

[36] Walker K, Croteau R. Taxol biosynthetic genes [J]. Phytochemistry, 2001, 58(1):1.

[37] Vázquez A, Williams R M. Studies on the biosynthesis of taxol. Synthesis of taxa4(20),11(12)diene2α,5αdiol [J]. J Org Chem, 2000, 65(23):7865.

[38] Hezari M, Ketchum R E B, Gibson D M, et al. Taxol production and taxadiene synthase activity in Taxus canadensis cell suspension cultures [J]. Arch Biochem Biophys, 1997, 337:185.

[39] Muchiri R, Walker K D. Taxol biosynthesis:tyrocidine synthetase a catalyzes the production of phenylisoserinyl CoA and other amino phenylpropanoyl thioesters [J]. Chem Biol, 2012, 19(6):679.

[40] Howat S, Park B, Oh I S, et al. Paclitaxel:biosynthesis, production and future prospects [J]. N Biotechnol, 2014, 31(3):242.

[41] Julsing M K, Koulman A, Woerdenbag H J, et al. Combinatorial biosynthesis of medicinal plant secondary metabolites [J]. Biomol Eng, 2006, 23(6):265.

[42] Huang Q, Roessner C A, Croteau R, et al. Engineering Escherichia coli for the synthesis of taxadiene, a key intermediate in the biosynthesis of taxol [J]. Bioorg Med Chem, 2001, 9(9):2237.

[43] Ajikumar P K, Xiao W H, Tyo K E,et al. Isoprenoid pathway optimization for taxol precursor overproduction in Escherichia coli [J]. Science, 2010, 330(6000):70.

[44] Biggs B W, Lim C G, Sagliani K, et al. Overcoming heterologous protein interdependency to optimize P450mediated taxol precursor synthesis in Escherichia coli [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2016, 113(12):3209.

[45] Zhao F, Bai P, Liu T, et al. Optimization of a cytochrome P450 oxidation system for enhancing protopanaxadiol production in Saccharomyces cerevisiae [J]. Biotechnol Bioeng, 2016, 113(8):1787.

[46] Mazzaferro L S, Hüttel W, Fries A, et al. Cytochrome P450catalyzed regioand stereoselective phenol coupling of fungal natural products [J]. J Am Chem Soc, 2015, 137(38):12289.

[47] Dejong J M, Liu Y, Bollon A P, et al. Genetic engineering of taxol biosynthetic genes in Saccharomyces cerevisiae [J]. Biotechnol Bioeng, 2006, 93(2):212.

[48] Rontein D, Onillon S, Herbette G, et al. CYP725A4 from yew catalyzes complex structural rearrangement of taxa4(5),11(12)diene into the cyclic ether 5(12)oxa3(11)cyclotaxane [J]. J Biol Chem, 2008, 283(10):6067.

[49] Engels B, Dahm P, Jennewein S. Metabolic engineering of taxadiene biosynthesis in yeast as a first step towards taxol (paclitaxel) production [J]. Metab Eng, 2008, 10(3/4):201.

[50] 陳士林,宋經元.本草基因組學[J].中國中藥雜志, 2016,41(21):3381.

[51] Chen S L, Song J Y, Sun C, et al. Herbal genomics:examining the biology of traditional medicines [J]. Science, 2015, 347 (6219 Suppl):S27.

[責任編輯 孔晶晶]

猜你喜歡
紫杉醇
電壓門控離子通道參與紫杉醇所致周圍神經病變的研究進展
心肌缺血預適應在紫杉醇釋放冠脈球囊導管擴張術中的應用
MUC1靶向性載紫杉醇超聲造影劑的制備及體外靶向實驗
雷公藤內酯醇聯合多西紫杉醇對PC-3/MDR細胞耐藥的體外逆轉作用
中成藥(2018年12期)2018-12-29 12:25:22
紫杉醇脂質體與紫杉醇不同途徑灌注治療兔舌癌的療效研究
脂質體紫杉醇周療方案與普通紫杉醇治療乳腺癌的療效及不良反應比較
中外醫療(2016年15期)2016-12-01 04:25:50
護理干預對預防紫杉醇過敏反應療效觀察
哈爾濱醫藥(2015年2期)2015-12-01 03:57:41
紫杉醇C13側鏈的硒代合成及其結構性質
替吉奧聯合紫杉醇治療晚期胃癌的療效分析
紫杉醇新劑型的研究進展
安徽醫藥(2014年4期)2014-03-20 13:12:25
主站蜘蛛池模板: 亚洲午夜片| 国产一区二区丝袜高跟鞋| 中国黄色一级视频| 成人免费午间影院在线观看| 51国产偷自视频区视频手机观看| 欧洲欧美人成免费全部视频| 国产经典三级在线| 在线无码九区| 一区二区三区四区精品视频| 国产精品亚洲一区二区三区z | 国产精品浪潮Av| 欧美日韩国产精品综合| 日韩毛片视频| 国产精彩视频在线观看| 久久中文电影| 国产无码精品在线播放| 欧美97欧美综合色伦图| 久夜色精品国产噜噜| 永久在线精品免费视频观看| 国产成人久视频免费| 永久在线精品免费视频观看| 日本三级精品| 欧美日韩第二页| 五月婷婷伊人网| 有专无码视频| 国产欧美日韩在线在线不卡视频| 有专无码视频| 亚洲看片网| 一级毛片网| 国产丝袜丝视频在线观看| 99精品免费欧美成人小视频| 久久婷婷五月综合97色| 国产精品亚洲一区二区三区z| 久久精品亚洲热综合一区二区| 麻豆精选在线| 97无码免费人妻超级碰碰碰| 91年精品国产福利线观看久久| 亚洲色图在线观看| 国模沟沟一区二区三区| 欧美日韩国产成人高清视频| 97在线碰| 一级毛片免费的| 亚洲无线视频| 一级成人欧美一区在线观看 | 日韩色图区| 亚洲αv毛片| 亚洲天堂视频在线免费观看| 精品91在线| 国产亚洲男人的天堂在线观看| 2021国产在线视频| 激情国产精品一区| 日韩精品亚洲人旧成在线| 国产欧美又粗又猛又爽老| 日本免费福利视频| 国产精品观看视频免费完整版| 国产成人久久综合777777麻豆| 婷五月综合| 亚洲天堂福利视频| 国产三区二区| 91尤物国产尤物福利在线| 久久精品电影| 自拍偷拍欧美| 亚洲精品国产日韩无码AV永久免费网| 亚洲一区二区在线无码| 国产精品制服| 亚洲综合欧美在线一区在线播放| 乱人伦99久久| 日本人妻一区二区三区不卡影院| 91免费观看视频| 日韩欧美在线观看| 亚洲国产成人自拍| 国产国产人免费视频成18| 久久精品视频亚洲| 日韩黄色大片免费看| 色悠久久综合| 亚洲黄色成人| 久久久91人妻无码精品蜜桃HD| 无码福利日韩神码福利片| 巨熟乳波霸若妻中文观看免费| 成人欧美在线观看| 色综合激情网| 97在线国产视频|