李云靜,何忠梅(1.吉林工程職業學院生物工程學院,吉林四平 136001;2.吉林農業大學中藥材學院,長春 130117)
HPLC法同時測定杜仲補天素片中6種成分的含量Δ
李云靜1*,何忠梅2#(1.吉林工程職業學院生物工程學院,吉林四平 136001;2.吉林農業大學中藥材學院,長春 130117)
目的:建立同時測定杜仲補天素片中麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸含量的方法。方法:采用高效液相色譜法。色譜柱為Kromasil C18,流動相為乙腈-0.2%磷酸溶液(梯度洗脫),流速為0.8 mL/min,檢測波長為330 nm(麥角甾苷和吉奧諾苷B1)、210 nm(去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸),柱溫為35℃,進樣量為10 μL。結果:麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸檢測質量濃度線性范圍分別為~74.20 μg/mL(r=0.999 9)、4.35~87.00 μg/mL(r=0.999 5)、3.86~77.20 μg/mL(r=0.999 9)、5.05~101.00 μg/mL(r=0.999 1)、4.20~84.00 μg/mL(r=0.999 7)、4.73~87.40 μg/mL(r=0.999 6);定量限分別為0.322、0.187、0.105、0.381、0.214、0.452 μg/mL,檢測限分別為0.108、0.059、0.032、0.131、0.072、0.149 μg/mL;精密度、穩定性、重復性試驗的RSD<2.0%;加樣回收率分別為96.20%~99.53%(RSD=1.23%,n=6)、96.99%~100.67%(RSD=1.47%,n=6)、96.64%~100.08%(RSD=1.28%,n=6)、97.47%~100.59%(RSD=1.18%,n=6)、97.97%~100.83%(RSD=1.25%,n=6)、96.81%~99.61%(RSD=1.09%,n=6)。結論:該方法操作簡便、快速、準確,可用于杜仲補天素片中麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸含量的同時測定。
高效液相色譜法;杜仲補天素片;麥角甾苷;吉奧諾苷B1;去氫土莫酸;豬苓酸C;去氫茯苓酸;茯苓酸;含量測定
杜仲補天素片由熟地黃、茯苓、杜仲(鹽水炒)、菟絲子(制)、肉蓯蓉等25味中藥材組成,具有補氣益血、溫腎養心、壯腰安神的功效,主要用于腰膝酸軟、夜多小便、神經衰弱等癥的治療。該制劑收載于《中華人民共和國衛生部藥品標準·中藥成方制劑》(第12冊)[1]。現行標準僅規定了性狀鑒別及制劑通則的檢查項[1-2],未對該制劑處方中的任何藥物所含成分進行定量測定;現有相關文獻[3-7]也僅對其單一藥材及含該藥材的其他制劑的含量進行測定。為了更好地控制該制劑的質量,筆者以熟地黃[4]中所含麥角甾苷和吉奧諾苷B1與茯苓[4]中所含去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸為指標成分,采用高效液相色譜法(HPLC),以梯度洗脫的方式同時測定上述6種成分的含量,以期為完善杜仲補天素片質量標準提供依據。
1.1 儀器
2695型HPLC儀,包括自動進樣器、Empower Pro色譜工作站、G1315B可變波長檢測器(美國Waters公司);Tu-1901型紫外可見分光光度計(北京普析通用儀器有限責任公司);BT25S型十萬分之一電子分析天平[賽多利斯科學儀器(北京)有限公司);KQ-100DB型數控超聲儀(昆山市超聲儀器有限公司,功率:100 W,頻率:40 kHz)。
1.2 藥品與試劑
杜仲補天素片(貴州漢方藥業有限公司,批號:1502114、1503108、1504123,規格:0.27 g/片);麥角甾苷對照品(批號:22323-52-0,純度:98.0%)、茯苓酸對照品(批號:29070-92-6,純度:98.0%)均購于成都曼思特生物科技有限公司;吉奧諾苷B1對照品(批號:120406-37-3,純度:98.0%)、去氫土莫酸對照品(批號:6754-16-1,純度:99.0%)均購于成都普瑞法科技開發有限公司;豬苓酸C對照品(批號:465-18-9,純度:98.0%)、去氫茯苓酸對照品(批號:77012-31-8,純度:98.0%)均購于南京森貝伽生物科技有限公司;乙腈為色譜純,磷酸為分析純,水為超純水。
1.3 藥材
熟地黃、茯苓、杜仲、菟絲子、肉蓯蓉、遠志、當歸、蓮子、澤瀉、牡丹皮、白芍、淫羊藿、黃芪、山藥、白術、陳皮、砂仁、女貞子、金櫻子、山茱萸、巴戟天、柏子仁、黨參、枸杞子、甘草等藥材均購于吉林省北藥藥材加工有限公司,經吉林農業大學中藥材學院何忠梅副教授鑒定為真品,同時按照2015年版《中國藥典》(一部)相關標準[3]檢驗均符合質量標準規定。
2.1 色譜條件
色譜柱:Kromasil C18(250 mm×4.6 mm,5μm);流動相:乙腈(A)-0.2%磷酸溶液(B),梯度洗脫(0~11 min,21.0%A;11~27 min,21.0%→34.0%A;27~48 min,34.0%→65.0%A;48~56 min,65.0→21.0%A);流速:0.8 mL/min;檢測波長:330 nm[3,5](0~27 min,麥角甾苷和吉奧諾苷B1)、210 nm[6](27~56 min,去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸);柱溫:35℃;進樣量:10 μL。
2.2 溶液的制備
2.2.1 混合對照品溶液 分別精密稱取麥角甾苷對照品7.42 mg、吉奧諾苷B1對照品8.70 mg、去氫土莫酸對照品7.72 mg、豬苓酸C對照品10.10 mg、去氫茯苓酸對照品8.40 mg和茯苓酸對照品8.74 mg,分別置于不同的10 mL量瓶中,加甲醇溶解并定容,搖勻,即得各待測成分的單一對照品貯備液。再分別取麥角甾苷對照品貯備液5.0 mL、吉奧諾苷B1對照品貯備液2.0 mL、去氫土莫酸對照品貯備液2.5 mL、豬苓酸C對照品貯備液1.0 mL、去氫茯苓酸對照品貯備液1.5 mL和茯苓酸對照品貯備液5.0 mL,置于同一100 mL量瓶中,加甲醇定容,搖勻,即得混合對照品溶液。
2.2.2 供試品溶液 取樣品適量,除去包衣層,研成細粉,精密稱取4.0 g,置于100 mL錐形瓶中,精密加甲醇50 mL,稱定質量,超聲處理60 min,放冷;再次稱定質量,加甲醇補足減失的質量,搖勻,濾過,取續濾液,即得。
2.2.3 陰性對照溶液 按樣品的制備工藝和配方比例,分別制備缺熟地黃和茯苓的單一陰性樣品,再按“2.2.2”項下方法制備單一陰性對照溶液。
2.3 系統適用性試驗
精密量取“2.2”項下混合對照品溶液、供試品溶液和陰性對照溶液各適量,按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄色譜,詳見圖1。由圖1可知,在該色譜條件下,各成分均能達到基線分離,分離度>2.0;理論板數分別以麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸、茯苓酸峰計均≥3 000,保留時間分別為16.6、21.5、32.6、34.8、37.6、43.1 min。

圖1 高效液相色譜圖Fig 1 HPLC chromatograms
2.4 線性關系考察
精密量取“2.2.1”項下混合對照品溶液各0.1、0.2、0.5、1.0、1.5、2.0 mL,分別置于20 mL量瓶中,加甲醇定容,搖勻,即得系列混合對照品溶液。取上述系列混合對照品溶液適量,按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積。以待測成分質量濃度(x,μg/mL)為橫坐標、峰面積(y)為縱坐標進行線性回歸,得回歸方程與線性范圍,詳見表1。

表1 回歸方程與線性范圍Tab 1 Regression equation and linear ranges
2.5 定量限與檢測限考察
取“2.2.1”項下混合對照品溶液適量,倍比稀釋,按“2.1”項下色譜條件連續進樣測定6次,記錄峰面積。當信噪比為10∶1時,得定量限(LOQ);當信噪比為3∶1時,得檢測限(LOD)。結果,麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸的LOQ分別為0.322、0.187、0.105、0.381、0.214、0.452μg/mL;LOD分別為0.108、0.059、0.032、0.131、0.072、0.149μg/mL。
2.6 精密度試驗
取“2.2.1”項下混合對照品溶液適量,按“2.1”項下色譜條件重復進樣測定6次,記錄峰面積。結果,麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸峰面積的RSD分別為1.02%、0.99%、1.10%、1.17%、0.93%、0.86%(n=6),表明儀器精密度良好。
2.7 穩定性試驗
取“2.2.2”項下供試品溶液(批號:1502114)適量,分別于室溫下放置0、2、4、8、12 h時按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積。結果,麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸峰面積的RSD分別為0.83%、0.95%、1.02%、1.07%、0.99%、0.88%(n=5),表明供試品溶液在室溫放置12 h內穩定性良好。
2.8 重復性試驗
取樣品(批號:1502114)6份,按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,再按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積并計算含量。結果,麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸平均含量分別為0.483、0.211、0.227、0.116、0.160、0.571 mg/g,RSD分別為1.08%、1.06%、0.96%、1.01%、1.12%、0.97%(n=6),表明本方法重復性良好。
2.9 加樣回收率試驗
取已知含量的樣品(批號:1502114)適量,共6份,每份約2.0 g,分別置于25 mL量瓶中,加甲醇適量,再加入一定質量的待測成分對照品,按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,再按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積并計算加樣回收率,結果見表2。

表2 加樣回收率試驗結果(n=6)Tab 2 Results of recovery test(n=6)
2.10 樣品含量測定
取3批樣品各適量,按“2.2.2”項下方法制備供試品溶液,再按“2.1”項下色譜條件進樣測定,記錄峰面積并計算麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸的含量,結果見表3。
表3 樣品含量測定結果(s,n=3,mg/g)Tab 3 Results of contents determination of samples(s,n=3,mg/g)

表3 樣品含量測定結果(s,n=3,mg/g)Tab 3 Results of contents determination of samples(s,n=3,mg/g)
樣品批號1502114 1503108 1504123麥角甾苷0.482±0.005 0.475±0.002 0.488±0.004吉奧諾苷B10.211±0.002 0.205±0.001 0.216±0.003去氫土莫酸0.224±0.003 0.229±0.002 0.218±0.002豬苓酸C 0.117±0.002 0.121±0.001 0.111±0.002去氫茯苓酸0.159±0.001 0.164±0.002 0.153±0.001茯苓酸0.571±0.004 0.587±0.007 0.565±0.005
3.1 提取時間的選擇
以待測成分的提取率為指標,對不同超聲提取時間(30、60、90 min)進行對比試驗,結果超聲提取60 min和90 min,所測各成分提取效果差異不大,但都明顯高于超聲提取30 min所測各成分含量,為了節約試驗時間,故本試驗選取60 min作為超聲提取的最佳時間。
3.2 檢測波長的選擇
取“2.2.1”項下單一對照品貯備液各適量,在190~400 nm波長范圍內進行紫外掃描。結果表明,麥角甾苷和吉奧諾苷B1在330 nm波長處有最大吸收,去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸在210 nm波長處有最大吸收,故麥角甾苷和吉奧諾苷B1檢測波長定為330 nm,去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸檢測波長定為210 nm。
3.3 流動相的選擇
筆者在試驗過程中分別采取乙腈-0.05%磷酸溶液[7-8]、乙腈-0.1%乙酸溶液、乙腈-0.2%甲酸溶液[9]、乙腈-0.2%磷酸溶液[10]以不同比例進行梯度洗脫,以待測成分的出峰時間、峰形和分離度效果為評價指標進行綜合評價,優選最佳的檢測流動相體系。結果,乙腈-0.05%磷酸溶液按不同比例進行梯度洗脫時,麥角甾苷和吉奧諾苷B1分離效果較好,但去氫土莫酸和豬苓酸C達不到有效分離;乙腈-0.1%乙酸溶液按不同比例進行梯度洗脫時,去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸能有效分離,但麥角甾苷峰形較差,拖尾現象嚴重;以乙腈-0.2%甲酸溶液按不同比例進行梯度洗脫時,去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸分離度均能達到要求,但吉奧諾苷B1與其他雜質峰達不到有效分離;乙腈-0.2%磷酸溶液按照“2.1”項下比例進行梯度洗脫時,各待測成分色譜峰的出峰時間、峰形和分離度效果較好,故選擇乙腈-0.2%磷酸溶液為本試驗的流動相。
3.4 耐用性試驗
取“2.2.2”項下供試品溶液(批號:1502114)適量,分別采用 Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm,5μm)、Kromasil C18(200 mm×4.6 mm,5μm)和 Kromasil C18(250 mm×4.6 mm,5μm)進行對比研究。結果,采用Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm,5μm)進行試驗時,所測成分吉奧諾苷B1與其他峰分離效果較差;采用Kromasil C18(200 mm×4.6 mm,5μm)進行試驗時,所測成分去氫土莫酸和豬苓酸C達不到有效分離;采用Kromasil C18(250 mm×4.6 mm,5μm)進行試驗時,所測成分均能達到有效分離,故最終采用kromasil C18(250 mm×4.6 mm,5μm)進行試驗。
綜上所述,本方法操作簡便、快速、準確,可用于杜仲補天素片中麥角甾苷、吉奧諾苷B1、去氫土莫酸、豬苓酸C、去氫茯苓酸和茯苓酸含量的同時測定。
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Simultaneous Determination of 6 Components in Duzhong Butiansu Tablet by HPLC
LI Yunjing1,HE Zhongmei2(1.College of Bioengineering,Jilin Engineering Vocational College,Jilin Siping 136001,China;2.College of Traditional Chinese Medicinal Materials,Jilin Agricultural University,Changchun 130117,China)
OBJECTIVE:To establish a method for the simultaneous determination of acteoside,jionoside B1,dehydrotumulosic acid,polyporenic acid C,dehydropachymic acid and pachymic acid in Duzhong butiansu tablet.METHODS:HPLC was performed on the column of Kromasil C18with mobile phase of acetonitrile-0.2%phosphate acid(gradient elution)at a flow rate of 0.8 mL/min,the detection wavelength was 330 nm for acteoside and jionoside B1,210 nm for dehydrotumulosic acid,polyporenic acid C,dehydropachymic acid and pachymic acid,the column temperature was 35℃,and the injection volume was 10 μL.RESULTS:The linear range was 3.71-74.20 μg/mL for acteoside(r=0.999 9),4.35-87.00 μg/mL for jionoside B1(r=0.999 5),3.86-77.20 μg/mL for dehydrotumulosic acid(r=0.999 9),5.05-101.00 μg/mL for polyporenic acid C(r=0.999 1)and 4.20-84.00 μg/ mL for dehydropachymic acid(r=0.999 7)and 4.73-87.40 μg/mL for pachymic acid(r=0.999 6);the limits of qu-antification were 0.322,0.187,0.105,0.381,0.214,0.452 μg/mL,and the limits of detection were 0.108,0.059,0.032,0.131,0.072,0.149 μg/mL;RSDs of precision,stability and reproducibility tests were lower than 2.0%;recoveries were 96.20%-99.53%(RSD=1.23%,n=6),96.99%-100.67%(RSD=1.47%,n=6),96.64%-100.08%(RSD=1.28%,n=6),97.47%-100.59%(RSD=1.18%,n=6),97.97%-100.83%(RSD=1.25%,n=6)and 96.81%-99.61%(RSD=1.09%,n=6).CONCLUSIONS:The method is simple,rapid,accurate,and can be used for the simultaneous determination of acteoside,jionoside B1,dehydrotumulosic acid,polyporenic acid C,dehydropachymic acid and pachymic acid in Duzhong butiansu tablet.
HPLC;Duzhong butiansu tablet;Acteoside;Jionoside B1;Dehydrotumulosic acid;Polyporenic acid C;Dehydropachymic acid;Pachymic acid;Content determination
R917
A
1001-0408(2017)03-0401-04
2016-01-30
2016-10-09)
(編輯:劉 柳)
吉林省科技發展計劃項目(No.20140311029YY)
*副教授,碩士。研究方向:生物制藥、發酵技術、藥用酶生產與教學工作。E-mail:523882748@qq.com
#通信作者:副教授,碩士生導師,博士。研究方法:中藥有效成分作用機制及產品開發。E-mail:hezhongmei1978@163.com
DOI10.6039/j.issn.1001-0408.2017.03.32