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浮萍遺傳轉(zhuǎn)化體系的建立和優(yōu)化*

2017-04-09 05:16:39武鳳潔朱曄榮姬曉櫞琳劉苗苗李亞輝白艷玲
生物學(xué)通報(bào) 2017年1期
關(guān)鍵詞:體系

武鳳潔 朱曄榮** 姬曉櫞 楊 琳劉苗苗 李亞輝 白艷玲 王 勇**

(1南開(kāi)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院 天津 300071 2天津師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院 天津 300384)

浮萍(Lemna minor)屬于浮萍科(lemnaceae),為最簡(jiǎn)單的單子葉水生漂浮植物,雖然小而簡(jiǎn)單,但是多年來(lái),圍繞浮萍在植物生理學(xué)、遺傳學(xué)、生態(tài)學(xué)等領(lǐng)域展開(kāi)了眾多理論研究,同時(shí)被廣泛應(yīng)用于除草劑的篩選、水環(huán)境污染程度監(jiān)測(cè)、重要藥用蛋白的生產(chǎn)和水體污染的修復(fù),同時(shí)因?yàn)楦∑嫉牡矸酆偷鞍缀扛叨婚_(kāi)發(fā)為生物質(zhì)能和優(yōu)質(zhì)蛋白生產(chǎn)的優(yōu)勢(shì)原料[1-5],使得浮萍成為研究、開(kāi)發(fā)和應(yīng)用領(lǐng)域的熱點(diǎn)和焦點(diǎn)。遺傳轉(zhuǎn)化技術(shù)是理論研究和拓寬應(yīng)用開(kāi)發(fā)領(lǐng)域最重要且最有效的手段之一,特別是浮萍藥用蛋白生物反應(yīng)器的建立,高產(chǎn)淀粉或蛋白優(yōu)質(zhì)浮萍株系的獲得等,都離不開(kāi)穩(wěn)定高效的遺傳轉(zhuǎn)化體系。

相對(duì)于其他重要農(nóng)作物和模式植物的遺傳轉(zhuǎn)化體系,浮萍侵染體系的研究報(bào)道相對(duì)甚少[6-7]。此外,針對(duì)不同的浮萍屬,其再生和侵染體系的特異性較強(qiáng),因此不同屬浮萍遺傳轉(zhuǎn)化體系的建立,對(duì)于通過(guò)轉(zhuǎn)基因進(jìn)行浮萍的相關(guān)機(jī)理研究和生產(chǎn)開(kāi)發(fā)應(yīng)用至關(guān)重要。本研究是在課題組建立和優(yōu)化了浮萍組培體系的基礎(chǔ)上[8],通過(guò)不同條件的摸索和優(yōu)化,建立了浮萍穩(wěn)定的遺傳轉(zhuǎn)化體系,為通過(guò)基因轉(zhuǎn)化對(duì)浮萍進(jìn)行理論研究和開(kāi)發(fā)應(yīng)用提供技術(shù)支撐。

1 材料與方法

1.1實(shí)驗(yàn)材料供試材料浮萍由本實(shí)驗(yàn)室保存;轉(zhuǎn)化載體含有擬南芥絲氨酸:乙醛酸氨基轉(zhuǎn)移酶基因(Serine:Glyoxylate Aminotransferase,AtAGT1),由本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建(圖1,見(jiàn)封四);供試農(nóng)桿菌菌株為EHA105、LBA4404 和 C58C1。

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1浮萍轉(zhuǎn)化體系的建立浮萍遺傳轉(zhuǎn)化體系的建立根據(jù)文獻(xiàn)6、文獻(xiàn)7進(jìn)行摸索,首先將浮萍葉狀體放于誘導(dǎo)培養(yǎng)基上3周后形成愈傷組織,然后轉(zhuǎn)移到繼代培養(yǎng)基中進(jìn)行繼代培養(yǎng),以繼代培養(yǎng)后的浮萍愈傷為原材料進(jìn)行浮萍的遺傳轉(zhuǎn)化,包括共培養(yǎng)和篩選及再生培養(yǎng)。其中,誘導(dǎo)和繼代培養(yǎng)基與文獻(xiàn)8相同,共培養(yǎng)培養(yǎng)基是在B5基本培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上加了100 μmol/L乙酰丁香酮,篩選培養(yǎng)基是在繼代培養(yǎng)基中加入抑菌抗生素和潮霉素,再生培養(yǎng)基是在文獻(xiàn)8中的再生培養(yǎng)基中加入抑菌抗生素和潮霉素。

1.2.2浮萍轉(zhuǎn)化體系的優(yōu)化使用不同種類的農(nóng)桿菌(農(nóng)桿堿型 EHA105、胭脂堿型 GV3101和C58C1)對(duì)浮萍進(jìn)行侵染,統(tǒng)計(jì)侵染3 d后浮萍愈傷的GUS瞬時(shí)表達(dá)率確定哪種農(nóng)桿菌對(duì)浮萍的侵染效率最高。

采 用 0、50 μmol/L、100 μmol/L、150 μmol/L、200 μmol/L的乙酰丁香酮侵染同一批浮萍愈傷,統(tǒng)計(jì)侵染3 d后浮萍愈傷組織的GUS瞬時(shí)表達(dá)率確定乙酰丁香酮的最適作用濃度。

將農(nóng)桿菌活化于分別含有頭孢霉素和羧芐青霉素(0、50 mg/L、100 mg/L、150 mg/L、200 mg/L、250 mg/L、300 mg/L)的培養(yǎng)基中,通過(guò)測(cè)定其OD值觀察其抑菌效果。

將野生型愈傷組織和葉狀體放于不同濃度的潮霉素篩選培養(yǎng)基中,觀察野生型愈傷組織和葉狀體的狀態(tài)確定篩選濃度。

1.2.3轉(zhuǎn)基因植株的分子鑒定將再生的轉(zhuǎn)基因植株在液體培養(yǎng)基中進(jìn)行抗性篩選,選擇生長(zhǎng)較好的抗性植株,進(jìn)行GUS染色,并采用SDS法提取基因組DNA,采用RNA提取試劑盒提取抗性植株RNA進(jìn)行PCR檢測(cè),PCR檢測(cè)出具有目的條帶的為陽(yáng)性植株。其中,RNA提取試劑盒為T(mén)aKaRaMiniBEST,來(lái)源于北京六合通經(jīng)貿(mào)有限公司;PCR引物為:

2 結(jié)果與分析

2.1不同類型的農(nóng)桿菌對(duì)浮萍侵染效率的比較

使用不同農(nóng)桿菌對(duì)抗性浮萍愈傷組織的GUS瞬時(shí)表達(dá)率檢測(cè)結(jié)果顯示,農(nóng)桿菌EHA105的侵染效率要高于GV3101和C58C1,因此浮萍遺傳轉(zhuǎn)化確定選用農(nóng)桿菌EHA105(圖2)。

圖2 不同類型的農(nóng)桿菌對(duì)浮萍愈傷組織侵染的瞬時(shí)表達(dá)率比較

2.2乙酰丁香酮濃度對(duì)侵染效率的影響本實(shí)驗(yàn)使用添加不同濃度乙酰丁香酮(0、50 μmol/L、100 μmol/L、150 μmol/L、200 μmol/L)的菌液侵染浮萍,發(fā)現(xiàn)隨著乙酰丁香酮濃度的升高,侵染效率先升高后降低,當(dāng)乙酰丁香酮濃度為100 μmol/L時(shí),浮萍的侵染效率最高(圖3)。

圖3 不同濃度乙酰丁香酮對(duì)EHA105介導(dǎo)的浮萍愈傷組織瞬時(shí)轉(zhuǎn)化率的影響

2.3抗生素濃度的確定頭孢霉素(Cef)和羧芐青霉素(Carb)都具有抑制農(nóng)桿菌生長(zhǎng)的作用,在侵染過(guò)程中抑制農(nóng)桿菌過(guò)度生長(zhǎng)是轉(zhuǎn)基因成敗的關(guān)鍵,因此抗生素濃度的選擇至關(guān)重要。本實(shí)驗(yàn)采用檢測(cè)OD值觀察抗生素對(duì)農(nóng)桿菌的抑制效果,由圖4可知,頭孢霉素和羧芐青霉素對(duì)農(nóng)桿菌EHA105都有很好的抑制效果,濃度為300 mg/L時(shí)可以完全抑制農(nóng)桿菌的生長(zhǎng),所以在侵染浮萍愈傷組織時(shí)選擇頭孢霉素或羧芐青霉素作為抑菌的抗生素,其最佳濃度都選用300 mg/L。

圖4 頭孢霉素和羧芐青霉素對(duì)農(nóng)桿菌EHA105生長(zhǎng)的影響

2.4潮霉素篩選濃度的確定

2.4.1固體潮霉素篩選濃度的確定在篩選培養(yǎng)過(guò)程中,隨著潮霉素濃度的增加,野生型浮萍愈傷組織的存活率不斷下降,當(dāng)潮霉素濃度為60 mg/L時(shí),愈傷組織的存活率為0,因此,固體潮霉素篩選的最佳濃度為60 mg/L,結(jié)果見(jiàn)表1。

表1 固體潮霉素篩選濃度的確定

2.4.2液體潮霉素篩選濃度的確定使用野生型(WT)和轉(zhuǎn)潮霉素篩選基因的浮萍(OE1)作為實(shí)驗(yàn)材料,當(dāng)用不同濃度的潮霉素進(jìn)行處理后,其表型變化如圖 5~圖 7(見(jiàn)封四),當(dāng) Hyg濃度為1 mg/L時(shí),WT植株的根變?yōu)榘咨~狀體生長(zhǎng)明顯受到抑制,當(dāng)Hyg濃度大于1 mg/L時(shí),WT植株根掉落,葉狀體逐漸變白直至死亡。因此篩選轉(zhuǎn)基因植株的最低Hyg濃度為1 mg/L。當(dāng)Hyg濃度為10 mg/L時(shí),OE1轉(zhuǎn)基因植株的生長(zhǎng)明顯受到抑制,當(dāng)Hyg濃度大于10 mg/L時(shí),OE1植株的葉狀體變小,而且葉狀體上葉脈凸顯,且根全部變白,因此篩選轉(zhuǎn)基因植株的最高Hyg濃度選用10mg/L。

2.5浮萍轉(zhuǎn)化體系的建立經(jīng)過(guò)反復(fù)摸索,建立了浮萍的遺傳轉(zhuǎn)化體系。首先用含有OD值為0.5~0.8的農(nóng)桿菌YEP培養(yǎng)液侵染浮萍愈傷組織,于28℃暗培養(yǎng)3 d,超聲清洗愈傷組織后將其放于含有抗性的篩選培養(yǎng)基中進(jìn)行篩選培養(yǎng)2~3周,直至長(zhǎng)出綠色抗性愈傷組織,隨后將其轉(zhuǎn)接到再生培養(yǎng)基中進(jìn)行再生培養(yǎng)3周,將再生出的苗轉(zhuǎn)接到液體培養(yǎng)基中進(jìn)行擴(kuò)繁鑒定。

2.6轉(zhuǎn)基因植株的鑒定

2.6.1抗性苗的篩選將再生出的苗選取單株接入含有潮霉素的篩選培養(yǎng)基中進(jìn)行篩選,5 d后觀察結(jié)果如(圖6),非轉(zhuǎn)基因植株變白死亡,轉(zhuǎn)基因植株能適應(yīng)液體環(huán)境并進(jìn)行擴(kuò)繁。

2.6.2GUS染色鑒定將已經(jīng)擴(kuò)繁的植株取一部分進(jìn)行GUS染色鑒定,鑒定結(jié)果如(圖7)。由圖7可知,經(jīng)過(guò)潮霉素篩選后的植株全為轉(zhuǎn)基因植株,但是不同轉(zhuǎn)基因株系的基因表達(dá)量存在一定的差異。

2.6.3分子鑒定選取長(zhǎng)勢(shì)良好、基因表達(dá)量高的3株抗性株系提取DNA和RNA,進(jìn)行PCR檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果顯示PCR片段大小符合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)(圖8),初步結(jié)果表明已經(jīng)獲得轉(zhuǎn)基因植株。

圖8 轉(zhuǎn)基因植株分子鑒定圖

3 討論

自從本課題組開(kāi)始建立浮萍再生體系的同時(shí),也在開(kāi)始摸索建立浮萍的遺傳轉(zhuǎn)化體系,因?yàn)榭蓞㈤喌母∑嫁D(zhuǎn)化方面的文獻(xiàn)較少,期間發(fā)現(xiàn)有很多因素影響該體系的穩(wěn)定性,通過(guò)多方面的不斷摸索和優(yōu)化,發(fā)現(xiàn)除需要注意培養(yǎng)溫度和光周期外,以下幾個(gè)因素的確定也很關(guān)鍵。

3.1侵染方法結(jié)合浮萍的結(jié)構(gòu)特點(diǎn),可以選擇的植物轉(zhuǎn)化技術(shù)主要包括基因槍法、化學(xué)藥劑誘導(dǎo)法、顯微注射法、激光微束穿刺法、多聚陽(yáng)離子基因?qū)敕ā⑥r(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化法等。鑒于成本、技術(shù)等問(wèn)題,選擇農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化法進(jìn)行轉(zhuǎn)基因植株的獲得較為普遍,應(yīng)用也比較廣泛,而且前期課題組已經(jīng)建立了浮萍的再生體系。有研究表明不同植物對(duì)農(nóng)桿菌的敏感性不同,且不同的農(nóng)桿菌對(duì)植物的侵染能力也不同,因此對(duì)于浮萍來(lái)說(shuō),選擇侵染效率高的農(nóng)桿菌至關(guān)重要。本研究顯示EHA105菌株對(duì)浮萍的侵染效率較其他菌株高。

3.2乙酰丁香酮的使用乙酰丁香酮AS是雙子葉植物細(xì)胞壁合成的前體,通常單子葉植物在轉(zhuǎn)化過(guò)程中不產(chǎn)生AS,所以在轉(zhuǎn)化過(guò)程中外源添加AS可以促進(jìn)根癌農(nóng)桿菌感染單子葉植物。因?yàn)楦∑紝儆趩巫尤~水生植物,因此,在侵染過(guò)程中加入AS是必需的,且合適濃度的AS對(duì)侵染效率很重要,本研究顯示當(dāng)AS濃度為100 μmol/L時(shí),外源基因?qū)Ω∑嫉那秩拘首罡摺?/p>

3.3篩選抗生素濃度的確定當(dāng)共培養(yǎng)結(jié)束后,植株在篩選培養(yǎng)基中篩選時(shí),首先需要抑制農(nóng)桿菌的生長(zhǎng),因此選擇合適的抑菌抗生素和濃度很關(guān)鍵。本實(shí)驗(yàn)顯示頭孢霉素和羧芐青霉素都可以在300 mg/L時(shí)發(fā)揮很好的抑菌作用。在抑菌之后的篩選過(guò)程中,篩選具有抗性的轉(zhuǎn)化材料是獲得轉(zhuǎn)基因植株的首要前提,因此植株抗性濃度的確定很重要,如果抗生素濃度過(guò)低,起不到篩選的作用,會(huì)出現(xiàn)大量假陽(yáng)性植株,加大后期的工作量;若抗生素濃度太高,會(huì)將抗性植株也殺死,導(dǎo)致遺傳轉(zhuǎn)化不能順利進(jìn)行,本實(shí)驗(yàn)以潮霉素的研究顯示,60 mg/L和10 mg/L分別是浮萍固體和液體潮霉素篩選的最佳濃度。

[1]朱曄榮,馬榮,劉清岱,等.浮萍相關(guān)研究的幾方面重要進(jìn)展.生物學(xué)通報(bào),2010,45(4):4.

[2]朱曄榮,李亞輝,劉苗苗,等.新型能源植物浮萍生物質(zhì)能的研究與開(kāi)發(fā).自然雜志,2013,35(5):1.

[3]朱曄榮,劉苗苗,李亞輝,等.植物淀粉生物合成調(diào)節(jié)機(jī)制的研究進(jìn)展.植物生理學(xué)報(bào),2013,49(12):1.

[4]Verma R, Suthar S.Utility of Duckweeds as Source of Biomass Energy:a Review.Bioenerg.Res.2015(8):1589.

[5]Stomp A M,Rajbhandari N.Method for producing stablytransformedduckweedusingmicroprojectilebombardment.United States Patent 7161064.Publication Date.2007(1):9.

[6]Suk Min Ko,Hyeon Jin Sun,Myung Jin Oh,et al.Expression of the Protective Antigen for PEDVin Transgenic Duckweed,Lemna minor.Environment Biotechnology.2011,52(5):511.

[7]Aleksey Firsov Irina Tarasenko,Tatiana Mitiouchkinaet al.High Yield Expression of M2e Peptide of Avian Influenza VirusH5N1 in Transgenic Duckweed Plants.Biotechnology,2015(57):653.

[8]王勇,楊琳,朱曄榮,等.高效浮萍再生體系的建立:中國(guó),CN102487827A[P]2013-5-6.

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