梁德賢 李慶軍 陳康榮


[摘要]目的:分析糖尿病心肌PTEN蛋白表達變化及其在糖尿病心肌IPo中的作用。方法:選取健康成年SD大鼠,腹腔注射1%鏈脲佐菌素(STZ)(60mg/kg)誘導糖尿病模型。對照組給予等量的生理鹽水。將糖尿病大鼠和非糖尿病大鼠隨機分為3組:假手術組(Sham);缺血/再灌注組(IR);缺血后處理組(IP0)。部分亞組糖尿病大鼠在缺血前1h用trFEN抑制劑BPV(HOpic)干預后再進行缺血/再灌注損傷實驗。免疫組化方法分析心肌PTEN、PI-3K、p-Akt的表達;TYC法檢測心肌梗死面積;TUNEL法檢測心肌細胞凋亡。比較非糖尿病與糖尿病組及BPV干預前后糖尿病各組相應指標的變化。結果:IPo明顯降低了非糖尿病鼠心肌細胞中PTEN的表達,增加了H-3K和p-Akt的表達,但未能減少PTEN在糖尿病鼠心肌中的表達,相應的Pl-3K和p-Akt的表達也無明顯改變。與N+S組相比,N+IR及N+IPo組的凋亡指數增高(P<0.05)。但是經后處理干預后N+IPo組的凋亡指數低于N+IR組(P<0.05)。與DM+S組相比,DM+IR及DM+IPo組的凋亡指數增高(P<0.05),但后處理并沒有減少糖尿病心肌的凋亡指數。與N+IR相比,N+IPo的梗死面積減少(P<0.05)。然而,DM+IR組與DM+IPo組的梗死面積無統計學差異(P>0.06)。BPV干預各組的心肌PI-3K及P-Akt的表達高于未干預各組(P<0.05)。與未經BPV干預的各組相比,被干預各組的心肌凋亡細胞減少。心肌梗死面積比較BPV干預的各組心肌梗死減少。結論:高血糖導致心肌PTEN高表達使PI-3K/Akt信號通路失活,是導致IPo對心肌IRI保護作用喪失的一個重要原因。
[關鍵詞]糖尿病;缺血再灌注損傷;缺血后處理;PTEN;BPV
有研究發現PTEN(Phosohatase and tensin honologdeleted on chromosometen,PTEN)是PI-3K/Akt信號通路的負性調控因子。它起初被發現是一種腫瘤抑制基因。后來越來越多的研究發現它在調節細胞增殖、生長和凋亡中也起到重要作用。有研究顯示,與非糖尿病大鼠相比,糖尿病大鼠體內PTEN的表達明顯增多,并會隨著病程的延長增加其表達的程度。增加PTEN的活性會使胰島素的敏感性下降,并且會增加2型糖尿病的風險。Mensah等人實驗證明,通過阿托伐他汀進行IPC,可通過激活PT-3K/Akt信號通路,對非糖尿病大鼠心肌IRI產生保護作用,但對糖尿病大鼠心肌IRI的療效顯著降低,其主要原因是由于PTEN的拮抗作用。Crackower等人通過對mN半量表達的PTEN+/-小鼠離體心臟的研究表明,在P1EN+/-的小鼠體內,Akt的活性明顯增加,經4周期的預處理PTEN+/-組的心肌梗死面積明顯小于6周期預處理的PTEN+/+對照組。因此可以看出P1EN在糖尿病心肌IRI中也扮演著重要的角色。然而關于PTEN在缺血后處理(Ischemic postconditioning,IPo)的作用機制中發揮著怎樣的作用,以及IPo對糖尿病心肌IRI保護作用的消失是否與糖尿病心肌中PTEN高表達有關,現在還不十分清楚。因此,本研究擬探討糖尿病心肌PTEN蛋白表達變化及其在糖尿病心肌IPo中的作用。對比IPo對糖尿病和非糖尿病心肌PTEN/PI-3K/Akt信號通路的影響情況,及其對心肌IRI的改善情況;觀察抑制PTEN的表達是否能改善糖尿病心肌的損傷程度;證明糖尿病心肌PTEN的高表達是導致心肌IRI耐受力降低和IPo保護作用消失的重要原因。
1.材料與方法
1.1材料 實驗動物:220~280g成年SD大鼠130只,由湖南斯萊克景達實驗動物有限公司提供。主要試劑及儀器:SureStep血糖儀、血糖試紙(美國強生公司);Bene View T5型監護儀(西安巨田醫療設備有限公司);DW-2000型動物呼吸機(上海嘉鵬科技有限公司);高精度電子天平(精度0.0001g,上海越平科學儀器有限公司);SHHW21Gr600恒溫水浴箱(北京長安科學儀器廠);Olympus顯微鏡(日本Olympus公司);Olympus BXS0顯微攝影系統(日本Olympus公司);EPSON-V30掃描儀(日本Epson公司);ImageProPlus6.0計算機圖像分析軟件(美國Media Cyberneties);鏈脲佐菌素(Streptozoein,STZ),美國Sigma公司;戊巴比妥鈉(Pentobarbital),美國Sigma公司;伊文氏藍(Evans blue),美國Sigma公司;三苯基氯化四氮唑(TTC),美國Sigma公司;Bpv(HOpic),瑞士Alexis公司;PTEN單克隆抗體,北京博奧森生物技術有限公司;P13K(P85cL亞型)單克隆抗體,北京博奧森生物技術有限公司;P-Akt(ser-473)單克隆抗體,北京博奧森生物技術有限公司;免疫組化試劑盒,武漢博士德生物制品有限公司;TUNEL試劑盒,南京建成生物工程研究所。
1.2方法 糖尿病大鼠及非糖尿病大鼠模型的建立:220~280g成年SD大鼠130只,喂養一周后,隨機分為糖尿病組(n=90)和非糖尿病組(n=40),所有大鼠禁食12小時。腹腔注射1%STZ60mg/kg誘導糖尿病模型,非糖尿病組的大鼠腹腔注射等量的生理鹽水,其余操作同糖尿病組大鼠。72h后禁食4h,斷尾取血測空腹血糖。當血糖濃度≥16.7mmol/L,并且出現多飲、多食、多尿的癥狀表示糖尿病鼠模型誘導成功。模型成功后監測大鼠血糖和體重,每2周一次。所有大鼠普食喂養8周。8周后進行手術。淘汰標準:①血糖濃度<16.7mmol/L的大鼠,②飼養過程中死亡的大鼠。
實驗分組:造模成功的糖尿病和非糖尿病大鼠隨機分為9組,實驗過程中剔除造模未成功和手術過程中死亡的模型,具體實驗分組如下:非糖尿病+假手術組(N+s組):n=9;糖尿病+假手術組(DM+S組):n=9;非糖尿病+缺血再灌注組(N+IR組):n=15;糖尿病+缺血再灌注組(DM+IR組):n=15;非糖尿病+缺血后處理組(N+IPo組):n=15;糖尿病+缺血后處理組(DM+IPo組):n=15;糖尿病+假手術組+抑制劑組(B+DM+S組):n=9;糖尿病+缺血再灌注+抑制劑組(B+DM+IR組):n=15;糖尿病+缺血后處理+抑制劑組(B+DM+IPo組):n=15。以上標有“*”的各組中6個心臟標本用于TFC,另外9個和非“*”的各組標本全部用于組織包埋。