4組沙漠綠藻分子生物學鑒定及其生物學特性研究

卡麗比努爾·艾依提

艾山江1，2

努爾古麗·熱合曼1，2

(1. 新疆師范大學生命科學學院，新疆 烏魯木齊 830054；2. 新疆特殊環境物種保護與調控生物學實驗室，新疆 烏魯木齊 830054)

4組沙漠綠藻分子生物學鑒定及其生物學特性研究

卡麗比努爾·艾依提1，2

艾山江1，2

努爾古麗·熱合曼1，2

(1. 新疆師范大學生命科學學院，新疆 烏魯木齊 830054；2. 新疆特殊環境物種保護與調控生物學實驗室，新疆 烏魯木齊 830054)

對從塔克拉瑪干沙漠中分離的4組沙漠綠藻進行形態特征鑒定，繪制生長曲線，考察pH對其生長的影響，并進行系統發育分析。形態特征結果顯示a組為橢圓形藻，b、c和d組為球狀藻。a組沙漠藻最適pH值為6.0，c組的最適pH值以原BG-11培養基為準，b和d組最適pH值為8.0。采用分子生物學18S rDNA序列分析法鑒定出代表性4株沙漠藻的基因序列，結果表明：a組的3YS16①和c組3YS21-1的序列跟Chlamydomonasincerta親緣關系很近;b組的 KXII(2)序列跟Chlorosarcinopsisbastropiensis親緣關系很近;d組的YS2-3的序列跟Chlorosarcinopsiscommunis親緣關系很近。該研究確定了4組藻的分類地位和最佳生長pH條件,可為沙漠綠藻分子生物學和食品應用方面的研究提供理論依據。

沙漠綠藻；18S rDNA；形態特性

新疆塔克拉瑪干沙漠作為典型的內陸干旱地區沙漠，是中國最大的沙漠，也是世界第二大流動沙漠[1]。藻類在世界荒漠地區廣泛分布，是荒漠、半荒漠系統的生物結皮先行者[2]。生物結皮主要包括藍藻、綠藻、衣藻、苔蘚及微小節肢動物等[3-4]。結皮在沙漠中對固定土壤和養分循環發揮著重要的作用，也是固沙的首要標志[5]。沙漠綠藻通過光合作用為土壤提供碳源和有機質[6]，還隨著藻細胞數量的增加，藻結皮轉化為地衣結皮。張建成[7]、李芳芳[8]等通過藻細胞形態觀察和分子生物學等方法對古爾班通古特沙漠結皮藻類進行研究，發現沙漠中有小球藻、衣藻、克里藻等藻種。目前關于塔克拉瑪干沙漠結皮藻類的研究較少，依里夏提等[5]對塔克拉瑪干沙漠藻進行分子生物學鑒定，發現沙漠中存在衣藻、絲狀藻、綠藻等藻種。

綠藻除對生物結皮有重要的作用以外，還因富含生長因子(CGF)、堿性多糖、不飽和脂肪酸、膳食纖維等成分得到了廣泛關注。隨著人們對高品質生活及對綠色健康食品的追求，藻類保健也逐漸得到開發[9]。綠藻含有多種維生素、胡蘿卜素、煙堿酸、泛酸、葉酸、葉綠素(約3%)、蛋白質(約60%)、纖維等，是維持健康和養顏相當理想的健康食品，被稱為“21世紀最佳食品”[10]。

目前關于藻類研究主要集中于海洋藻和淡水藻[11-13]，塔克拉瑪干沙漠藻類的研究和其食品應用的相關報道尚未見。本研究運用形態學觀察、分子鑒定，研究其生物學特性及沙漠藻生長最適pH，為塔克拉瑪干沙漠藻類在分子生物學和后續藻類保健品應用方面提供基礎性理論依據。

1 材料與方法

1.1 土壤樣品

從新疆塔克拉瑪干沙漠采集，提供單位：新疆葉希麗生物科技有限公司。

1.2 培養基

藻種用的BG-11培養基：K2HPO4· 3H2O 0.04 g/L，NaNO31.5 g/L，MgSO4· 7 H2O 0.075 g/L，檸檬酸鐵銨 0.006 g/L，CaCl2· 2 H2O 0.036 g/L，檸檬酸0.006 g/L，EDTANa20.001 g/L，Na2CO30.02 g/L，H3BO32.86 g/L，MnCl4· 4H2O 1.81 g/L，ZnSO4·7H2O 0.222 g/L，Na2MoO4·2H2O 0.39 g/L，CuSO4·5H2O 0.079 g/L，Co(NO3)2·6H2O 0.049 g/L。

1.3 主要儀器

超凈工作臺：Boxun SW-CJ-2FD型，昆山廣測儀器設備有限公司；

成像儀：ChampGel6000型，北京賽智創業科技有限公司；

PCR儀：PEQSTAR型，德國Peqlab公司；

臺式冷凍離心機：SIGMA 3K30型，德國Sigma公司；

制冰機：SIM-F140AY65-PC型，日本上海公司；

紫外/可見分光光度計：4802UV/VIS型，上海龍尼柯儀器有限公司；

智能人工氣候箱：RTOP-260Y型，浙江托普儀器有限公色；

pH計：pH-220型，廈門國島科技有限公司。

1.4 方法

1.4.1 藻種的培養與分離 稱取30 g沙樣置于盛有100 mL BG-11培養基的三角瓶中靜置培養，溫度30 ℃，光照強度 2 500 Lx，光暗比為14∶10。光照培養設置為兩個工作段：6:00～20:00，光強 2 500 Lx；20:00～6:00，光強 0 Lx，培養2周后，采用稀釋涂布法進行純化，定期觀察藻液，并用光學顯微鏡拍照記錄。

1.4.2 光學顯微鏡觀察 處于生長周期的藻細胞，用倒置顯微鏡觀察并拍照。

1.4.3 掃描電鏡觀察 采用Hohn等[14]的方法，收集對數生長期的藻細胞，用10 000 r/min離心10 min，棄上清液，加入PBS緩沖液清洗2遍，4%的戊二醛固定，依次用50%，70%，80%，90%，100%叔丁醇逐級脫水，采用冷凍干燥儀干燥5 min，真空噴金，掃描電鏡下拍照觀察。

1.4.4 藻株生長曲線的繪制 取5 mL處于指數生長期的藻液，置于盛有200 mL滅菌BG-11培養基的三角瓶中，在溫度為30 ℃，光照強度 2 500 Lx，光暗比為14∶10，光照培養設置為兩個工作段：6:00～20:00，光強 2 500 Lx；20:00～6:00，光強 0 Lx，培養1個月，做3個重復，且每2 d于680 nm[15]下測定吸光度。

1.4.5 pH對沙漠藻生長的影響 取5 mL處于指數生長期的藻液，加入pH值為 6.0，7.0，8.0(用0.1 mol/L HCl 和0.1 mol/L NaOH 調節)的BG-11液體培養基中，原培養基(pH為自然)為對照組，培養2周，做3個重復，且每24 h于680 nm下測定吸光度值。每天早晚將培養瓶振動一次，防止藻細胞貼壁生長。

1.4.6 基因組DNA的提取 用天根植物基因組DNA提取試劑盒提取DNA。

1.4.7 PCR擴增 用于真核綠藻18SrRNA基因的上游引物MA1(5`-CGGGATCCGTAGTCATATGCTTGTCTC-3`)和下游引物MA2(5`-CGGAATTCCTTCTGCAGGTTCACC-3`)[16]，由上海生工生物技術有限公司進行合成；PCR反應體系為25 μL，dd H2O 8.5 μL，上下引物各0.5 μL，DNA模板3 μL，2×TAP PCR Master Mix (TIANGEN) 12.5 μL。PCR反應條件：95 ℃預變性5 min；95 ℃變性1 min，56 ℃退火1 min，72 ℃延伸2 min，30個循環；72 ℃延伸10 min，4 ℃保存。PCR產物經1%(1×TAE)瓊脂糖凝膠電泳檢測后，觀察并成像[17]。擴增產物由上海生工生物技術有限公司進行測序。

1.4.8 系統發育樹分析 測序結果與NCBI已知的數據庫進行比較，并用Genetyx軟件進行多重序列對齊排列比較，通過MEGA 7.0軟件鄰接(NJ)法繪制系統發育樹，基于Kimura2-Prameter方法計算遺傳距離值，計算Bootstrap值，重復1 000次[18]。

2 結果與分析

2.1 4組沙漠藻的光學顯微鏡觀察結果

按顏色、形狀、大小將分離純化的藻類分為a、b、c、d 4個組，其形態結構見圖1。其中a組的細胞形態為綠色、黏稠、油性、細胞呈橢圓形、細胞比較小；b組的黃色、干燥、難挑取、細胞呈球狀、細胞偏大；c組的綠色，油性，細胞形態為球狀；d組的偏黃色、干燥、難挑取、細胞接近球狀。

2.2 4組沙漠藻的掃描電鏡觀察

由圖2可知，a和c組是正處于分裂期的藻細胞，a組為橢圓形藻；b組為球狀藻，表面光滑；c組為球狀藻，表面粗糙；d組的形狀接近球狀。

通過光學顯微鏡和掃描電鏡觀察結果表明4組沙漠藻的形態結構與李芳芳等[19]和龔春霞等[20]從古爾班通古特沙漠和塔克拉瑪干沙漠分離純化和分子鑒定的藻種形態不一致，說明因地理位置的差異也能導致藻類形態的多樣性。對比徐娜等[21]分離純化的海洋微藻有很大的區別，應該是新疆塔克拉瑪干沙漠氣候干旱、降水量少、溫度高、蒸發量高等原因形成的特殊形態結構。

圖1 4組沙漠藻細胞的光學顯微鏡觀察照片

Figure 1 Morphological observations of four groups Desert algae cells under optical microscope (×40)

圖2 4組沙漠藻細胞的掃描電鏡照片

Figure 2 Morphological observations of four groups Desert algae cells under electron microscope

2.3 4組沙漠藻的生長曲線

在培養初期藻體數量隨時間變化不大；進入對數生長期后，生長速率迅速增加[22]，藻液也由淺綠色變為暗綠色；進入衰亡期后，藻體逐漸死亡并下沉，藻液顏色開始變黃，最后至無色、腐爛。

由圖3可知，a組藻類的適應期較短，第3天進入對數生長期，第25天進入穩定期；b組前3 d是適應期，第4天進入對數生長期，第21天進入穩定期；c組的適應期也短，第3天進入對數生長期，第23天進入穩定期；d組的適應期最短，第2天進入對數生長期，第25天進入穩定期。比較4組藻的生長情況均表現出較長的生長周期，1個月內均沒有進入衰亡期，a和c組生長最好，b組生長不好；d組的適應期最短，對數生長期最長。

通過生長曲線結果可知，4組沙漠藻培養期間表現出對數生長期長，不易發生腐爛等特性，因此藻種在塔克拉瑪干沙漠長期得以生存下來。

2.4 pH對4組沙漠藻生長的影響

由圖4可知，a組藻類前8 d在pH 8.0的培養基上生長較好，從第9天開始pH 6.0和pH 7.0的生長明顯優于對照組，14 d開始pH 6.0的生長占優勢，表明沙漠藻a組的適應pH為6.0～7.0。比較生長速率表明pH 6.0>對照組>pH 7.0>pH 8.0，得出a組藻類最適生長pH為6.0，說明a組沙漠藻適合生長在酸性環境。

圖3 4組沙漠藻的生長曲線Figure 3 Growth curve of four groups Desert algae

圖4 pH對a組沙漠藻生長的影響Figure 4 Effects of pH on the growth of group a

由圖5可知，前9 d藻細胞在3種培養基上的生長與對照組沒有明顯的差異，但從第10天開始藻在pH值為8.0培養基上生長速度大于其它pH水平。比較生長速率表明pH 8.0>pH 6.0>對照組>pH 7.0，可知b組藻類最適生長pH為8.0，說明b組沙漠藻適合生長在堿性環境。

圖5 pH對b組沙漠藻生長的影響Figure 5 Effects of pH on the growth of group b

由圖6可知，第10天pH 7.0和pH 8.0的藻細胞的生長與對照組接近；第12天后pH 8.0的生長開始變緩，pH 6.0和pH 7.0的生長開始增長但生長速率小于對照組。比較生長速率表明對照組>pH 6.0>pH 7.0>pH 8.0，可知c組藻類最適生長pH為原培養基(pH 為自然)，說明c組沙漠藻適合生長在酸性環境。

由圖7可知，第6天藻細胞在3種pH值的培養基中生長情況沒有明顯的差異，第8天開始pH 8.0和pH 6.0培養基的生長明顯增長，但藻細胞在pH 6.0培養基的生長小于pH 8.0，比較生長速率表明pH 8.0>pH 6.0>對照組>pH 7.0，可知d組沙漠藻類最適生長pH為8.0，說明d組沙漠藻適合堿性環境。

圖6 pH對c組沙漠藻生長的影響Figure 6 Effects of pH on the growth of group c

圖7 pH對d組沙漠藻生長的影響Figure 7 Effects of pH on the growth of group d

培養基的 pH是直接影響藻類生長代謝等許多生理過程的重要因子，會影響藻類光合作用和呼吸作用，并影響培養基中藻細胞對離子的吸收和利用以及對代謝產物的利用[23]，每一種藻類都有它自身適合的pH范圍，改變pH值會影響藻類的生長和光合作用[24]，沙漠藻a和c組在pH 5.0～6.0條件下生長最好，說明具有較好耐酸能力。b和d組在pH 8.0環境下生長最好，具有耐堿能力，可能是與培養液中鹽類有關，這些鹽類能使沙漠藻生長所需的pH 環境維持時間延長，利于細胞維持較好的分裂速度。袁麗娜等[25]研究表明：低pH值不利于藻生長，而在一定范圍內，較高的pH值仍能促進藻細胞增殖；趙娜等[26-27]研究結果表明：小球藻的最適生長pH 為7.0，而斜生柵藻的最適生長pH值為 9.0。可知藻類生長環境酸性或堿性太強都會對藻細胞生長有傷害，只有在適宜的酸堿度范圍內，才能正常生長繁殖。

2.5 4株沙漠藻的18S rDNA序列分析

對具代表性的4株沙漠藻3YS16①(a組)、KXII(2)(b組)、3YS21-1(c組)和YS2-3(d組)進行18S rDNA序列分析，擴增出長度分別為1 726，1 712，1 708，1 723 bp(圖8)的基因片段。

1. 3YS16①(a組) 2. KXII(2)(b組) 3. 3YS21-1(c組) 4. YS2-3(d組)

圖8 4株代表性沙漠藻的18S rDNA PCR電泳圖

Figure 8 Electrophoresis of PCR products 18S rDNA four Representative strains of Desert algae

NCBI中BLAST結果表明，3YS16①和3YS21-1的序列與GenBank上的Chlamydomonasincerta(KR349061.1)的同源性高，相似率達99%，比對序列中有2個堿基不同。由圖9可以看出3YS16①和3YS21-1跟衣藻屬聚簇成一支，跟Chlamydomonasincerta(KR349061.1)的節點支持率為95，遺傳距離值為0.00，說明3YS16①和3YS21-1與Chlamydomonasincerta(KR349061.1)親緣關系很近。擴增得到的YS2-3的序列與GenBank上的Chlorosarcinopsiscommunis(AB218705.1)同源性高，相似率為97%，比對序列中有50個堿基不同，YS2-3與Chlorosarcinopsis聚簇成一支，與Chlorosarcinopsiscommunis(AB218705.1)的節點支持率為100，遺傳距離為0.00，說明YS2-3與Chlorosarcinopsiscommunis(AB218705.1)的親緣關系很近。擴增得到的KXII(2)的序列與GenBank上屬于綠囊藻目的Chlorosarcinopsisbastropiensis(AB218703.1)同源性高，相似率達99%，比對序列中有14個堿基不同，KXII(2)與Chlorosarcinopsis聚簇成一支，與Chlorosarcinopsisbastropiensis(AB218703.1)的節點支持率為100，遺傳距離值為0.00，說明親緣關系很近，沙漠藻KXII(2)屬于Chlorosarcinopsisbastropiensis。

圖9 4株代表性沙漠綠藻的18S rDNA序列的系統發育樹Figure 9 Phylogenetic Tree based on 18S rDNA Sequencing of Four Representative Desert Algae

鑒定藻的傳統方法是通過觀察藻細胞形態進行鑒定，但由于藻類的生長范圍廣，且生活史復雜導致相同的藻細胞形態不一樣，所以鑒定誤差較大。基于 18S rRNA基因序列進行藻類鑒定已經有廣泛的報道[28-31]。李芳芳[17]、龔春霞[19]等應用18S rRNA基因分子鑒定和形態學結合進行鑒定。研究結果表明：a組的3YS16①和c組的3YS21-1屬于衣藻。這個跟龔春霞等[32]從塔克拉瑪干沙漠分離鑒定出來的結果一致。b組的KXII(2)和d組的YS2-3屬于綠囊藻目的Chlorosarcinopsisbastropiensis和Chlorosarcinopsiscommunis。本試驗結果與Lewis等[33]報道沙漠中的綠藻主要包含3大類群，綠藻綱、共球藻綱和輪藻綱吻合。

3 結論

目前中國對沙漠藻類的研究，主要以形態觀察為主，此方法需要豐富的分類經驗，對有些形態結構簡單、外部形態特征不明顯的種類鑒定困難。本試驗利用分子生物學鑒定及生物學特性研究4組沙漠綠藻。結果表明，4組沙漠藻屬于衣藻和綠囊藻，具有較好的耐酸、耐堿、耐高溫、生長周期長且不容易腐爛等生物學特性。這些生物學特性將賜予這些藻類在沙漠干旱環境中能生存的能力。為了將沙漠藻應用于生物結皮和食品方面，其光強度和溫度對藻類生長的影響和藻類食品安全方面需要進一步研究。

[1] SMITH S M, ABED R M M, GARCIA PICHEL F, et al. Biological soil crusts of sand dunes In cape cod national seashore Massachusetts, USA[J]. Microbial Ecology, 2004, 48: 200-208.

[2] HAWKES C V, FLECHTNER V R. Biological soil crosts In a Xeric Florlda Shrubland: composition, abundance, and spatial heterogeneity of crusts with different disturbance histories[J]. Microbial Ecology, 2002, 43(1): 1-12.

[3] 王靜, 林向陽, 李麒龍, 等. 環保型微藻絮凝劑的制備及應用[J]. 食品與機械, 2014, 30(2): 206-210.

[4] 唐翱. SY綠藻產品推廣項目營銷策略研究[D]. 成都: 西南交通大學, 2006: 14-15.

[5] 依里夏提·地里夏提, 艾山江, 吾甫爾·米吉提. 3株塔克拉瑪干沙漠藻的分子鑒定與分析[J]. 安徽農業科學, 2015, 43(18): 41-44, 48.

[6] 李芳芳, 隋正紅, 龔春霞. 5種沙漠微藻的分離鑒定及其18S rDNA保守區片段差異分析[J]. 石河子大學學報: 自然科學版, 2012, 30(3): 265-270.

[7] 趙建成, 張丙昌, 張元明. 新疆古爾班通古特沙漠生物結皮綠藻研究[J]. 干旱區研究, 2006, 23(2): 189-194.

[8] 李芳芳, 隋正紅, 龔春霞, 等. 5種沙漠微藻的分離鑒定及其18S rDNA保守區片段差異分析[J]. 石河子大學學報: 自科版, 2012, 30(3): 265-270.

[9] SHIELDS L M, DURREL LW. Algae in relation to soil fertility[J]. The Botanica Review, 1964, 30(1): 92-128.

[10] EVANS C T, RATLEDGE C. Influence of nitrogen metabolism of lipid accumulation by rhodosporidium tor loides CBS14[J]. Journal of General Microbiology, 1984, 130(7): 1 704-1 705.

[11] 林玉艷. 一株海洋微藻的分離鑒定及環境因素對其生長的影響[D]. 青島: 中國海洋大學, 2015.

[12] 劉欣, 姚衛蓉. 藻類食品衛生指標解析[J]. 食品科技, 2013(12): 299-303.

[13] 吉宏武, 趙素芬. 南海3種可食綠藻化學成分及其營養評價[J]. 廣東海洋大學學報, 2005, 25(3): 19-23.

[14] HOHN S, HALLMANN A.There is more than one way to turn aspherical cellular monolayer inside out: Type B embryo inversion in Voluox globator[J]. Biomedcentral, 2011, 29(9): 89.

[15] 周楠. 水體中微囊藻毒素的分析提純及去除實驗研究[D]. 哈爾濱: 哈爾濱工業大學, 2009: 31.

[16] OLMOS J, PANIAGUA J, CONTRERAS R. Molecular identication ofDunaliellasp. utilizing the 18S rDNA gene[J]. Letters in Applied Microbiology, 2000, 30: 80-84.

[17] 盧夢瑤, 劉書亮, 胡凱弟, 等. 酵素中一株高產酸醋酸菌的鑒定及其產酸特性[J]. 食品與機械, 2016, 32(12): 64-69, 114.

[18] KUMAR S, NEI M, DUDLEY J, et al. MEGA: A biologistcentric software for evolutionary analysis of DNA and protein sequences[J]. Briefings in Bioinformatics, 2008, 9(4): 299-306.

[19] 李芳芳, 隋正紅, 周偉. 兩種沙漠微藻的形態學和分子生物學鑒定[J]. 干旱區資源與環境, 2013(3): 167-172.

[20] 龔春霞, 王丹, 茍亞峰. 4株沙漠土壤衣藻的分離培養及形態和分子鑒定[J]. 石河子大學學報: 自然科學版, 2013, 31(3): 294-300.

[21] 徐娜, 逄少軍. 三種海洋浮游微藻的分子鑒定及培養條件研究[J]. 海洋科學, 2012, 36(10): 13-25.

[22] 尹樂斌, 張臣飛, 孫菁, 等. 一株產細菌素乳酸菌的分離、鑒定及生物學特性研究[J]. 食品與機械, 2016, 32(3): 12-15, 64.

[23] 王雪青, 趙培, 胡萍, 等. 金藻3011的培養條件優化及擴大培養研究[J]. 食品科學, 2006(12): 253-259.

[24] 李艷紅. 環境因子對銅綠微囊藻生長和光合作用的影響[D]. 南昌: 南昌大學, 2010: 40.

[25] 袁麗娜, 宋煒, 肖琳. 多環境因素全面正交作用對銅綠微囊藻生長的效應研究[J]. 南京大學學報: 自然科學版, 2008(4): 408-414.

[26] 趙娜, 馮鳴鳳, 朱琳. 不同pH值條件下Cr6+對小球藻和斜生柵藻的毒性效應[J]. 東南大學學報: 醫學版, 2010(4): 382-386.

[27] 歐陽崢嶸, 溫小斌, 耿亞紅. 光照強度、溫度、pH、鹽度對小球藻(Chlorella)光合作用的影響[J]. 武漢植物學研究, 2010(1): 49-55.

[28] 侯建軍, 賴紅艷, 黃邦欽. 幾種典型藻華生物的分子分類學分析[J]. 水生生物學報, 2008, 32(5): 711-719.

[29] 林子杰. 三種綠藻的ITS和18S rDNA序列及系統發育分析[D]. 蘇州: 蘇州大學, 2011: 23-31.

[30] 胡樂琴, 唐晨, 汪卿. 前溝藻18S rDNA序列克隆和分子鑒定分析[J]. 生物技術通報, 2011(12): 92-95.

[31] 莊麗, 陳月琴, 李欽亮. 赤潮叉角藻18S rDNA和ITS區序列測定與分析[J]. 海洋與湖沼, 2001, 32(2): 148-154.

[32] 王丹, 龔春霞, 茍亞峰. 塔克拉瑪干沙漠生物結皮中幾種藻類的系統發育分析[J]. 草業學報, 2014(3): 97-103.

[33] LEWIS L A, LEWIS P O. Unearthing the molecular phylodiversity of desert soil green algae (Chlorophyta)[J]. Systems Biology, 2005, 54(6): 936-947.

Morphological and molecular identification of four groups desert green algae

QELBINUREyit1,2

AISHANJIANG1,2

NURGULRahman1,2

(1.SchoolofLifeScience,XinjiangNormalUniversity,Urumqi,Xinjiang830054,China;2.XinjiangKeyLaboratoryofSpecialSpeciesConservationandRegulatoryBiology,Urumqi,Xinjiang830054,China)

Four groups of algas, isolated from the Taklimakan desert, were identified by morphological characters in this study. The pH effect of the growth of algae is analyzed according to the growth curve, and the phylogenetic tree was pictured. It shows that the group a belongs to the oval algae, and group b, c and d belong to the spherical algae. The optimum suitable pH values for the group a desert algae was 6.0, 8.0 for the group b and d; the same value of original BG-11 for the group c. Four representative strains of desert algae gene sequences were identified by using the 18S rDNA sequence analysis method. It shows that the strain of 3YS16① (group a) and the strain of 3YS21-1 (group c) have close genetic relationship with theChlamydomonasincerta; the strain of KXII(2) (group b) has close genetic relationship with theChlorosarcinopsisbastropiensi; the Strain of YS2-3 (group d) has close genetic relationship withChlorosarcinopsiscommunis. This study determined the classification status of four groups of algae and the optimal pH growth conditions, and provided theoretical basis to the molecular biology studies of desert algae and applications in food industry.

Desert algae; 18S rDNA; Morphological Characteristics

國家自然科學基金(編號：31460448，31160333)

卡麗比努爾·艾依提，女，新疆師范大學在讀碩士研究生。

努爾古麗·熱合曼(1972—)，女，新疆師范大學副教授，博士。E-mail：nurgulum@163.com

2017—04—03

10.13652/j.issn.1003-5788.2017.05.005