張 瑋,魏 群,郭惠芳,鄭桂敏,張蓮之,彭媛媛,劉淑霞
(1.河北醫科大學 病理教研室,河北 石家莊 050017;2.河北省人民醫院醫院 a.感染管理科;b.免疫風濕科,河北 石家莊 050051;3.河北醫科大學第二醫院 免疫風濕科,河北 石家莊 050000)
·論著·
去泛素化酶Usp46基因在系統性紅斑狼瘡患者血液中的表達及意義
張 瑋1,魏 群2a,郭惠芳3,鄭桂敏2b,張蓮之1,彭媛媛1,劉淑霞1
(1.河北醫科大學 病理教研室,河北 石家莊 050017;2.河北省人民醫院醫院a.感染管理科;b.免疫風濕科,河北 石家莊 050051;3.河北醫科大學第二醫院 免疫風濕科,河北 石家莊 050000)
目的 研究泛素特異性蛋白酶46 (Usp46)基因在系統性紅斑狼瘡(SLE)患者及健康人外周血中的表達水平,并探討其在SLE發病中的作用。方法 收集73例SLE患者及75 例健康人臨床資料,采用Real-timePCR法檢測外周血中Usp46基因mRNA的表達情況,分析其表達水平與臨床指標的關系。結果 與健康對照組相比,SLE患者血液中Usp46基因的mRNA表達水平明顯升高(Z=-6.98,P<0.01);在SLE患者中Usp46基因的mRNA表達水平與紅細胞沉降率(ESR)、IgG、IgM和谷丙轉氨酶(ALT)呈正相關(P<0.05)。結論Usp46基因的mRNA表達水平在SLE患者血液中明顯增高,提示Usp46基因可能參與SLE疾病的發生發展過程。
紅斑狼瘡, 系統性;基因;血沉;泛素特異性蛋白酶46
系統性紅斑狼瘡(SLE)是一種復雜的自身免疫性疾病,累及多系統、多器官,以自身抗體產生、補體激活、免疫復合物沉積以及多種組織器官損傷為特征,病死率極高[1],是一種嚴重危害人類健康的常見病。SLE的病因至今未明,發病機制復雜,已有研究表明SLE的發生和發展與激素水平、環境誘因和遺傳易感性等多種因素有關[2]。其中免疫系統的過度活化可導致自體抗體的產生、免疫復合物的沉積以及致炎因子的釋放,最終引發SLE中各個臟器的損傷[3]。最近研究發現泛素特異性蛋白酶46 (Usp46)基因作為一種去泛素化酶,通過去泛素化PH結構域富含亮氨酸重復蛋白磷酸酶1(PHLPP1)參與調控Akt信號通路[4],在結直腸癌中發揮著抑癌基因的作用,而且新近研究報道該基因與EB病毒核抗原(EBNA)家族一同參與調控淋巴細胞的生長和分化[5],可能在免疫系統中發揮重要作用,然而其是否在SLE的發病中發揮作用仍是未知,本研究采用Real-timePCR法檢測SLE患者及健康人外周血中Usp46基因mRNA的表達情況,分析其表達水平與臨床指標的關系,初步探討Usp46基因在SLE患者發病中的可能作用。
1.1 研究對象 2015年1月至2017年1月在河北醫科大學第二醫院免疫風濕科診斷的SLE患者73例,男7例,女66例,年齡(35.0±2.8)歲。SLE診斷均符合美國2009年風濕病學會修訂的診斷標準。選取同期健康獻血者75例作為對照,男10例,女65例,年齡(38.0±1.2)歲。兩組性別、年齡等一般資料比較差異無統計學意義(P>0.05)。研究對象均已簽署知情同意書且已通過倫理委員會批準。
1.2 方法 所有研究對象抽取空腹靜脈血用于紅細胞沉降率(ESR)、IgA、IgG、IgM、C3、C4及丙氨酸轉氨酶(ALT)檢測。
1.2.1 總RNA提取及cDNA合成 用PAXgeneBloodRNATubes(Quagen)保存血液,保證血液中RNA的穩定性,運用PAXgeneBloodRNAKit(Quagen)試劑盒提取總RNA,檢測其純度和濃度后,采用FastQuantRTKit(天根)試劑盒反轉錄合成cDNA,本試驗是在河北省腎臟病重點實驗室完成。
1.2.2 引物設計 根據Usp46(NM_022832.3)和內參基因GAPDH(NM_002046)基因序列設計引物,由上海生工生物公司合成,引物序列見表1。

表1 引物序列
1.2.3Real-timePCR檢測Usp46基因表達水平 用熒光定量PCR檢測儀(AgilentMX3000P,美國)進行PCR擴增,Real-time反應體系由SYBRGreenMix10μl、上游引物和下游引物各0.5μl(終濃度為12.5μM)、cDNA1μl、無RNA酶的去離子水8μl構成20μl體系。反應條件為95 ℃ 2分鐘預變性,95 ℃ 5秒,55 ℃ 30秒,72 ℃ 30秒共40個循環,同時檢測熔解曲線。確定循環閾值(Ct)后,目標基因Usp46相對于內參基因GAPDH進行相對定量,采用2-△△Ct法計算相對表達量,并比較兩組間的基因表達水平的差異[6-7]。PCR擴增產物經2.5%瓊脂糖凝膠電泳以檢測基因特異性。
1.3SLEDAI評分對SLE病情的判斷依據 0~4分,基本無活動;5~9分,輕度活動;10~14分,中度活動;≥15分,重度活動。

2.1 臨床指標SLE患者SLEDAI評分為中度活動;患者存在血液系統、腎臟、皮膚及神經系統損傷;ESR明顯加快,高于正常水平;補體C3、C4低于正常水平,見表2。

表2 73例SLE患者臨床資料
2.2 血液標本RNA健康對照組RNA濃度為(48.50±5.28)g/L,純度OD比值為(1.89±0.05),SLE組RNA濃度為(85.60±7.06)g/L,純度OD比值為(1.98±0.03),采用1%瓊脂糖凝膠電泳結果顯示18s和28s條帶清晰,28s的亮度是18s的2倍左右,說明完整性良好。
2.3 實時熒光定量PCR實時熒光定量RCR結果顯示擴增良好(圖1a);溶解曲線均為單峰(圖1b,左側為Usp46基因,右側為GAPDH基因),將PCR產物進行2.5%瓊脂糖電泳結果顯示條帶單一、大小正確(圖1c)。
2.4Usp46基因mRNA表達水平Real-timePCR結果顯示,兩組均表達Usp46基因mRNA,SLE組Usp46基因的表達水平4.22 (1.30,17.02)健康對照組1.00(0.84,1.11),兩組比較差異有統計學意義(Z=-6.98,P<0.01)。
2.5 相關性分析SLE患者Usp46基因的mRNA表達水平與ESR、IgG、IgM和ALT呈正相關(P<0.05),與SLEDAI評分、IgA、C3、C4無相關性。見圖2。

圖1 GAPDH和Usp46基因實時熒光定量PCR結果 a.擴增曲線;b.融解曲線;c.熒光定量PCR產物的瓊脂糖電泳結果

圖2 SLE患者Usp46基因表達水平與臨床指標的相關性
SLE是目前臨床上最常見的自身免疫性疾病,患者血清中常含有多種自身抗體,病變可以累及體內泌尿、神經、循環、運動、呼吸、血液、消化等多個系統,導致患者出現狼瘡性腎炎、狼瘡性腦病、狼瘡性心臟病等多種并發癥,嚴重影響患者的生存質量,如不控制甚至可以威脅患者的生命,然而SLE缺乏早期發現和早期診斷的分子標記物,病情往往進展到并發癥階段,有明顯臨床癥狀后才就醫,嚴重影響患者的預后及生活質量,因而尋找早期分子標記物是早診斷、早治療,提高患者生存質量的關鍵。
研究發現泛素-蛋白酶體通路[8]通過特異性地降解細胞內的蛋白質參與調控多種細胞進程,包括細胞周期[9]、腫瘤生長[10]及炎癥[11]等,而且還參與免疫反應的調控[12-13],去泛素化酶是該通路中重要的質量控制因子,通過對底物蛋白的去泛素化來調控蛋白質的壽命[14],去泛素化酶表達水平、基因突變及功能異常與多種自身免疫性疾病的發生發展有關,如腫瘤壞死因子α誘導蛋白3(TNFAIP3)基因突變與SLE、風濕性關節炎等自身免疫性疾病、淋巴瘤及哮喘等疾病[15-16],Usp18通過調控轉化生長因子β激活激酶 1(TAK1)及TAB(TAK1 結合蛋白1)在輔助性T細胞17(Th17)分化和自身免疫反應中發揮作用[17],另外Usp7表達水平增加及活性增強使多種抑癌基因P53、第10號染色體缺失的磷酸酶張力蛋白同源物(PTEN)穩定性下降[18],而且Usp7還參與調控核因子κB(NF-κB)信號通路[19-20]。
Usp46基因為人類100多種去泛素化酶[21]中的一種,屬于泛素特異性蛋白酶亞家族,Usp46基因的生理功能目前仍不明確,有研究表明Usp46基因為小鼠“行為抑郁”的責任基因[22-23],且通過去泛素化谷氨酸受體α-氨基-3 羥基-5 甲基-4 異惡唑受體(AMPAR)調控大腦的興奮性突觸傳遞[24],提示Usp46基因很可能參與神經系統疾病的發生發展。此外研究發現其在組蛋白H2A和H2B的去泛素化[25]和大腸癌細胞的Akt信號轉導[4, 26]等方面發揮重要作用,而且該基因與EB病毒核抗原3(EBNA3)家族中的EBNA3A和EBNA3C相互作用發揮著調控淋巴細胞的生長和分化的作用[5],提示該基因很可能在免疫系統中也發揮重要作用,然而其是否在SLE中發揮作用,仍無報道,本研究發現與健康人比較,SLE患者外周血中Usp46基因mRNA表達水平明顯升高,提示該基因可能與SLE的發病有關。
那么該基因能否作為SLE早期診斷的分子標記物呢?本研究發現該基因的表達水平與SLE患者多項臨床指標存在相關性。ESR是反應炎癥的非特異性指標,一般在風濕熱、類風濕關節炎、血管炎等結締組織病的活動期升高,可以作為判斷疾病活動及預后的指標,以往研究表明大多數活動期SLE患者ESR增高,而臨床緩解期SLE患者ESR基本正常,提示ESR檢測可以動態觀察SLE患者病情活動的變化[27]。本研究顯示Usp46基因mRNA與ESR呈正相關,提示該基因與SLE疾病進展有關。然而其與SLEDAI評分無相關性,可能是樣本量較少的原因。
此外,SLE患者早期或活動期會出現血清免疫球蛋白及補體的異常變化[28-30],當自身抗體與組織有免疫反應出現時,免疫復合物增多,補體系統活化并與免疫復合物結合,在此過程中補體消耗較多,血液中補體成分降低,下降程度與患者病情活動程度相符,因而免疫球蛋白和補體常與自身抗體一起被用于SLE的臨床診斷及病情療效評估。本研究發現Usp46基因的表達水平與IgG、IgM呈正相關,進一步提示Usp46基因可用于SLE患者的病情評價。本研究還發現Usp46基因表達水平與ALT呈正相關,該基因是否與狼瘡性肝損傷有關仍有待進一步研究。
總之,本研究發現Usp46基因mRNA表達水平在SLE患者中明顯升高,約為健康人群的4.22倍,提示Usp46基因可能與SLE的發病有關,而且與ESR、IgG、IgM呈正相關,進一步提示Usp46基因與SLE的病情進展有關,然而其是否能作為SLE輔助診斷的分子標記物,仍需要進一步擴大樣本量進行研究。
[1]ChoiJ,KimST,CraftJ.Thepathogenesisofsystemiclupuserythematosus-anupdate[J].CurrOpinImmunol,2012,24 (6): 651-657.
[2]O'NeillS,CerveraR.Systemiclupuserythematosus[J].BestPractResClinRheumatol,2010,24(6): 841-855.
[3]AnayaJM,ShoenfeldY,CerveraR.Systemiclupuserythematosus2014[J].AutoimmuneDis,2014,2014: 274323.
[4]LiX,StevensPD,YangH,etal.ThedeubiquitinationenzymeUSP46functionsasatumorsuppressorbycontrollingPHLPP-dependentattenuationofAktsignalingincoloncancer[J].Oncogene,2013,32(4): 471-478.
[5]OhashiM,HolthausAM,CalderwoodMA,etal.TheEBNA3familyofEpstein-BarrvirusnuclearproteinsassociateswiththeUSP46/USP12deubiquitinationcomplexestoregulatelymphoblastoidcelllinegrowth[J].PLoSPathog,2015,11(4):e1004822.
[6]SchmittgenTD,LivakKJ.Analyzingreal-timePCRdatabythecomparativeC(T)method[J].NatProtoc,2008,3(6):1101-1108.
[7]LivakKJ,SchmittgenTD.Analysisofrelativegeneexpressiondatausingreal-timequantitativePCRandthe2(-DeltaDeltaC(T))Method[J].Methods,2001,25(4):402-408.
[8]TaiHC,SchumanEM.Ubiquitin,theproteasomeandproteindegradationinneuronalfunctionanddysfunction[J].NatRevNeurosci,2008,9(11): 826-838.
[9]WalczakH.TNFandubiquitinatthecrossroadsofgeneactivation,celldeath,inflammation,andcancer[J].ImmunolRev,2011,244(1): 9-28.
[10]HussainS,ZhangY,GalardyPJ.DUBsandcancer:theroleofdeubiquitinatingenzymesasoncogenes,non-oncogenesandtumorsuppressors[J].CellCycle,2009,8(11): 1688-1697.
[11]TokunagaF,IwaiK.LUBAC,anovelubiquitinligaseforlinearubiquitination,iscrucialforinflammationandimmuneresponses[J].MicrobesInfect,2012,14(7-8):563-572.
[12]SimicekM,LievensS,LagaM,etal.ThedeubiquitylaseUSP33discriminatesbetweenRALBfunctionsinautophagyandinnateimmuneresponse[J].NatCellBiol,2013,15(10): 1220-1230.
[13]JiangX,ChenZJ.Theroleofubiquitylationinimmunedefenceandpathogenevasion[J].NatRevImmunol,2012,12(1): 35-48.
[14]LoveKR,CaticA,SchliekerC,etal.Mechanisms,biologyandinhibitorsofdeubiquitinatingenzymes[J].NatChemBiol,2007,3(11): 697-705.
[15]SchuijsMJ,WillartMA,VergoteK,etal.FarmdustandendotoxinprotectagainstallergythroughA20inductioninlungepithelialcells[J].Science,2015,349(6252): 1106-1110.
[16]MaA,MalynnBA.A20:linkingacomplexregulatorofubiquitylationtoimmunityandhumandisease[J].NatRevImmunol,2012,12(11): 774-785.
[17]LiuX,LiH,ZhongB,etal.USP18inhibitsNF-kappaBandNFATactivationduringTh17differentiationbydeubiquitinatingtheTAK1-TAB1complex[J].JExpMed,2013,210(8): 1575-1590.
[18]BrooksCL,LiM,HuM,etal.Thep53--Mdm2--HAUSPcomplexisinvolvedinp53stabilizationbyHAUSP[J].Oncogene,2007,26(51): 7262-7266.
[19]ColleranA,CollinsPE,O'CarrollC,etal.DeubiquitinationofNF-kappaBbyUbiquitin-SpecificProtease-7promotestranscription[J].ProcNatlAcadSciUSA,2013,110(2): 618-623.
[20]LiT,GuanJ,LiS,etal.HSCARGdownregulatesNF-kappaBsignalingbyinteractingwithUSP7andinhibitingNEMOubiquitination[J].CellDeathDis,2014,5:e1229.
[21]FraileJM,QuesadaV,RodríguezD,etal.Deubiquitinasesincancer:newfunctionsandtherapeuticoptions[J].Oncogene,2012,31(19): 2373-2388.
[22]TomidaS,MamiyaT,SakamakiH,etal.Usp46isaquantitativetraitgeneregulatingmouseimmobilebehaviorinthetailsuspensionandforcedswimmingtests[J].NatGenet,2009,41(6): 688-695.
[23]ImaiS,MamiyaT,TsukadaA,etal.Ubiquitin-specificpeptidase46 (Usp46)regulatesmouseimmobilebehaviorinthetailsuspensiontestthroughtheGABAergicsystem[J].PloSOne,2012,7(6):e39084.
[24]HuoY,KhatriN,HouQ,etal.ThedeubiquitinatingenzymeUSP46regulatesAMPAreceptorubiquitinationandtrafficking[J].JNeurochem,2015,134(6): 1067-1680.
[25]JooHY,JonesA,YangC,etal.RegulationofhistoneH2AandH2BdeubiquitinationandXenopusdevelopmentbyUSP12andUSP46[J].JBiolChem,2011,286(9): 7190-7201.
[26]WenYA,StevensPD,GasserML,etal.DownregulationofPHLPPexpressioncontributestohypoxia-inducedresistancetochemotherapyincoloncancercells[J].MolCellBiol,2013,33(22): 4594-4605.
[27] 裴秀云. 紅細胞沉降率檢測在系統性紅斑狼瘡患者中的意義探討[J]. 基層醫學論壇,2015,19(15): 2059-2060.
[28] 陳偉華,王薇.SLE患者血清免疫球蛋白及補體水平與自身抗體相關性研究[J]. 河北醫藥,2014,36(8): 1157-1158.
[29]Sj?wallC,OlinAI,SkoghT,etal.C-reactiveprotein,immunoglobulinGandcomplementco-localizeinrenalimmunedepositsofproliferativelupusnephritis[J].Autoimmunity,2013,46(3): 205-214.
[30] 孫家祥, 李艷, 劉利洪, 鄂建飛. 系統性紅斑狼瘡患者外周血T淋巴細胞亞群、免疫球蛋白及補體變化分析[J]. 臨床和實驗醫學雜志,2013,12(9): 654-655.
Roleofubiquitin-specificproteases46geneinbloodofpatientswithsystemiclupuserythematosus
ZhangWei1,WeiQun2a,GuoHuifang3,ZhengGuimin2b,ZhangLianzhi1,Pengyuanyuan1,LiuShuxia1
1.DepartmentofPathology,HebeiMedicalUniversity,Shijiazhuang050017,China; 2a.DepartmentofNosocomialInfectionControl;2b.DepartmentofRheumatology,HebeiGeneralHospital,Shijiazhuang050051,China; 3.DepartmentofRheumatology,theSecondHospitalofHebeiMedicalUniversity,Shijiazhuang050000,China
LiuShuxia,Email:susanliu1976@163.com
ObjectiveToinvestigatetheroleofubiquitin-specificproteases46 (Usp46)inthebloodofsystemiclupuserythematosus(SLE)patientsandhealthypopulation.MethodsRealtimepolymerasechainreactionanalysiswasusedtodeterminetheUsp46expressioninthebloodof73patientswithSLEand75healthycontrols.ResultsThemRNAexpressionlevelofUsp46wassignificantlyincreased,about4.22(1.30,17.02)folds,insamplesfromSLEpatientscomparedtohealthypopulation(Z=-6.98,P<0.01).Inaddition,therewassignificantlypositivecorrelationbetweentheexpressionlevelofUsp46andESR,IgG,IgMandALT(P<0.05).ConclusionThemRNAexpressionlevelofUsp46wassignificantlyhigherinSLEpatientsthaninhealthypopulation,whichindicatesthatUsp46mayparticipateinthedevelopmentofSLEprocess.
lupuserythematosus,systemic;genes;bloodsedimentation;ubiquitinspecificprotease46
河北省自然科學基金(H2015206449);河北省衛生廳重點科技研究計劃(ZD20140034);河北省大學生創新創業訓練計劃(201510089038)
劉淑霞,Email:susanliu1976@163.com
R
A
1004-583X(2017)08-0686-05
10.3969/j.issn.1004-583X.2017.08.010
2017-07-06 編輯:王秋紅