999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

H2O2對(duì)鹽脅迫下羽衣甘藍(lán)幼苗生長(zhǎng)的影響

2018-01-06 07:43:12李偉郭君潔李鴻雁
江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2017年22期

李偉+郭君潔+李鴻雁

摘要: 以羽衣甘藍(lán)名古屋品種(Brassica oleracea L. var. acephala f. tricolor Hort.)為研究材料,在100 mmol/L NaCl脅迫下,分別使用外源H2O2和H2O2清除劑二甲基硫脲處理。2 d后測(cè)定植物的生長(zhǎng)速率、干質(zhì)量、鮮質(zhì)量和相對(duì)含水量,6 h后測(cè)定植株體內(nèi)3個(gè)抗氧化酶超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)、抗壞血酸過(guò)氧化物酶(APX)的活性及基因的表達(dá)。結(jié)果顯示,鹽脅迫下加入0.05 mmol/L外源H2O2,羽衣甘藍(lán)幼苗生長(zhǎng)速率、干質(zhì)量、鮮質(zhì)量、相對(duì)含水量、3個(gè)抗氧化防護(hù)酶的活性和基因表達(dá)分別高于鹽脅迫下相關(guān)指標(biāo);清除內(nèi)源H2O2,則植物幼苗生長(zhǎng)速率、干質(zhì)量、鮮質(zhì)量和相對(duì)含水量、3個(gè)抗氧化防護(hù)酶的活性及基因表達(dá)分別低于鹽脅迫下相關(guān)指標(biāo)。由此推測(cè),在鹽脅迫條件下,H2O2參與了抗氧化防護(hù)基因表達(dá)的調(diào)控,它可能是鹽脅迫誘導(dǎo)的羽衣甘藍(lán)葉片抗氧化防護(hù)系統(tǒng)的重要調(diào)控因子。

關(guān)鍵詞: 羽衣甘藍(lán);H2O2;鹽脅迫;抗氧化酶;基因表達(dá)

中圖分類(lèi)號(hào): S635.901 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

文章編號(hào):1002-1302(2017)22-0149-04

鹽脅迫是造成作物嚴(yán)重減產(chǎn)最常見(jiàn)的逆境條件,提高植物對(duì)環(huán)境脅迫的抗性,尤其是對(duì)鹽脅迫的抗性,是穩(wěn)定植物生長(zhǎng)的首選目標(biāo),當(dāng)植物受到環(huán)境脅迫時(shí)會(huì)產(chǎn)生大量活性氧,包括過(guò)氧化(H2O2)、單線(xiàn)態(tài)氧(1O2)、羥自由基(·OH)、超氧陰離子(O-2[KG-*2]· )、脂質(zhì)過(guò)氧基(ROO·)等[1-4]。鹽脅迫能迅速誘導(dǎo)植物體內(nèi)活性氧的積累,對(duì)蛋白質(zhì)和脂類(lèi)引起氧化損傷[5]。而植物體內(nèi)有2種清除保護(hù)機(jī)制,即酶促系統(tǒng)和非酶促系統(tǒng),其中酶促系統(tǒng)包括超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)和抗壞血酸過(guò)氧化物酶(APX)等。研究表明,鹽脅迫能使植物體內(nèi)活性氧增高[6-8]。近年來(lái),許多試驗(yàn)表明,H2O2是一種重要的信號(hào)分子,當(dāng)植物細(xì)胞在響應(yīng)于各種脅迫反應(yīng)時(shí)能生成該物質(zhì),并進(jìn)一步調(diào)節(jié)應(yīng)激反應(yīng)的一系列信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)[9-14]。有證據(jù)顯示,逆境條件下內(nèi)源H2O2積累能增加植物的抗逆性,過(guò)量的H2O2等ROS能引起細(xì)胞內(nèi)大分子氧化損傷;Wahid等的研究表明,過(guò)氧化氫預(yù)處理可以使細(xì)胞膜系統(tǒng)保持完整,繼而提高小麥種子抗氧化能力,增強(qiáng)小麥在萌發(fā)過(guò)程中的耐鹽性[13]。在植物的抗鹽反應(yīng)中起到關(guān)鍵作用的SOS1(salt overly sensitive)是擬南芥Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)體,H2O2能調(diào)節(jié)其mRNA穩(wěn)定性。然而,在鹽脅迫誘導(dǎo)下,H2O2與氧化酶活性其表達(dá)機(jī)理尚不十分清楚。

本試驗(yàn)研究鹽脅迫下外源H2O2或者清除體內(nèi)H2O2對(duì)羽衣甘藍(lán)幼苗生長(zhǎng)特性、抗氧化酶活性及相關(guān)基因表達(dá)的影響,旨在揭示H2O2在植物抗鹽脅迫反應(yīng)中的作用機(jī)制。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)材料

試驗(yàn)于2015年8—10月在黃淮學(xué)院實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行。選用羽衣甘藍(lán)名古屋品種(Brassica oleracea L. var acephala f. tricolor Hort.) 為研究材料,由駐馬店市南海公園提供。H2O2供體為30% H2O2,H2O2清除劑為二甲基硫脲,均為國(guó)產(chǎn)分析純。

1.2 試驗(yàn)處理

把羽衣甘藍(lán)種子,消毒后,用蒸餾水沖洗數(shù)次,濾紙吸干。處理后的種子放入墊好濾紙的培養(yǎng)皿中,溫室培養(yǎng)[溫度:(24±2) ℃,光照—黑暗:16 h—8 h,光照度:2 000 lx]。待羽衣甘藍(lán)胚根長(zhǎng)3~5 mm時(shí),選取胚根整齊一致的幼苗,盆栽。待苗長(zhǎng)至10 cm左右,放入Hoagland溶液溫室預(yù)培養(yǎng)3 d。3 d 后,分4組進(jìn)行處理,分別是對(duì)照組(CK):Hoagland溶液;鹽處理組(N):100 mmol/L NaCl+Hoagland溶液;NaCl+H2O2組(N+H):100 mmol/L NaCl+0.05 mmol/L H2O2+Hoagland溶液;NaCl+DMTU組(N+DMTU):100 mmol/L NaCl+5 mmol/L DMTU+Hoagland溶液。處理6 h后,進(jìn)行SOD、CAT、APX活性分析與基因(SOD,GenBank:JQ321587.1;CAT,GenBank:JF720325.1;APX,GenBank:XM_013733887.1)表達(dá)測(cè)定。用異硫酸胍法提取葉片內(nèi)總RNA,ABI7700進(jìn)行定量PCR,以actin(GenBank登錄號(hào)AF111812.1)作為內(nèi)參(表1),方法參照文獻(xiàn)[15]進(jìn)行。每處理重復(fù)3次,為了保持處理一致性,處理期間每天更換處理液,處理48 h后,分別取羽衣甘藍(lán)幼苗測(cè)定生長(zhǎng)速率,取葉片分別測(cè)定干質(zhì)量、鮮質(zhì)量和相對(duì)含水量,測(cè)定方法參照文獻(xiàn)[16]進(jìn)行。

2 結(jié)果與分析

2.1 鹽脅迫下外源或清除內(nèi)源H2O2對(duì)羽衣甘藍(lán)幼苗生長(zhǎng)的影響

研究發(fā)現(xiàn),用50 mmol/L NaCl處理的羽衣甘藍(lán)幼苗與對(duì)照沒(méi)有顯著差異,僅有部分老葉枯萎。在100 mmol/L NaCl脅迫下,羽衣甘藍(lán)幼苗受傷害程度增加,上部部分葉片變黃,下部老葉萎蔫。當(dāng)NaCl濃度達(dá)到150、200 mmol/L時(shí),葉片嚴(yán)重失水,導(dǎo)致甘藍(lán)幼苗全株死亡。因此,在此后試驗(yàn)中,選擇100 mmol/L NaCl進(jìn)行處理。在此濃度下,羽衣甘藍(lán)幼苗表現(xiàn)出一定的鹽害癥狀,但不會(huì)導(dǎo)致植物死亡。預(yù)試驗(yàn)表明,H2O2濃度為0.05 mmol/L時(shí)對(duì)100 mmol/L NaCl脅迫下羽衣甘藍(lán)幼苗生長(zhǎng)的影響較為明顯,因此本試驗(yàn)H2O2濃度為005 mmol/L。

用100 mmol/L NaCl處理羽衣甘藍(lán)幼苗的生長(zhǎng)受到顯著抑制,植株生長(zhǎng)速率、植株地上部鮮質(zhì)量、干質(zhì)量和相對(duì)含水量與對(duì)照相比均下降,且有顯著差異。外源H2O2使鹽脅迫羽衣甘藍(lán)幼苗生長(zhǎng)速度、鮮質(zhì)量、干質(zhì)量和相對(duì)含水量與僅鹽脅迫處理顯著增加(圖1)。在鹽脅迫下,用H2O2清除劑DMTU處理,則葉片生長(zhǎng)速率、植株鮮質(zhì)量、干質(zhì)量和相對(duì)含水量與鹽脅迫下相比顯著下降,表明清除H2O2后,鹽脅迫下羽衣甘藍(lán)生長(zhǎng)受到抑制。endprint

2.2 鹽脅迫下外源H2O2或清除內(nèi)源H2O2對(duì)幾種抗氧化酶活性的影響

當(dāng)植物體處在脅迫環(huán)境中時(shí),抗氧化酶活性通常會(huì)增加,以加強(qiáng)對(duì)逆境的適應(yīng)。在100 mmol/L NaCl脅迫條件,羽衣甘藍(lán)幼苗SOD酶活性顯著上升,與對(duì)照相比有顯著差異,外源0.05 mmol/L H2O2處理與鹽脅迫相比可以顯著提高SOD酶活性(圖2)。說(shuō)明低濃度外源H2O2能增強(qiáng)抗氧化酶活性。CAT和APX與SOD類(lèi)似。

2.3 鹽脅迫下外源H2O2或清除內(nèi)源H2O2對(duì)幾種氧化酶基因表達(dá)的影響

與對(duì)照相比,鹽脅迫條件下,3個(gè)基因的表達(dá)均有所增加,且SOD、CAT、APX基因表達(dá)增加的趨勢(shì)相同。加入外源H2O2,3種基因表達(dá)量有所提高,與對(duì)照有顯著差異。當(dāng)用H2O2清除劑對(duì)鹽脅迫下羽衣甘藍(lán)的3個(gè)抗氧化防護(hù)基因表達(dá)進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果顯示,3種基因的表達(dá)量與鹽脅迫相比有所下降,差異顯著(圖3)。

3 討論

當(dāng)植物受到鹽脅迫時(shí),體內(nèi)活性氧代謝平衡失調(diào),積累的活性氧導(dǎo)致鹽害[17-18]。因此,本研究中,高濃度的H2O2處理,引起羽衣甘藍(lán)幼苗活性氧增加,對(duì)鹽脅迫適應(yīng)性下降,使植物受害加重,生長(zhǎng)受到嚴(yán)重抑制。近年研究表明,H2O2等活性氧在植物體內(nèi)也能起到信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)作用,微量過(guò)氧化氫等活性氧在調(diào)節(jié)某些生理現(xiàn)象方面起著重要作用,尤其是在細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)中的作用。本試驗(yàn)中采用的0.05 mmol/L濃度H2O2在羽衣甘藍(lán)響應(yīng)鹽脅迫過(guò)程中可能發(fā)揮了某種信號(hào)作用,參與或者影響了鹽脅迫信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過(guò)程,從而一定程度地緩解了鹽脅迫對(duì)羽衣甘藍(lán)幼苗生長(zhǎng)的抑制作用。

鹽脅迫能抑制植物的呼吸代謝,這個(gè)過(guò)程中細(xì)胞內(nèi)ROS大量增加(如H2O2等),對(duì)植物造成次生傷害,如細(xì)胞膜脂質(zhì)過(guò)氧化。植物為了清除體內(nèi)ROS,植物體內(nèi)的抗氧化酶活性會(huì)相應(yīng)提高,增加植物耐鹽能力[19-20]。鹽脅迫下,植物SOD、CAT和APX等抗氧化酶協(xié)同作用,清除過(guò)多的活性氧,使活性氧代謝處于平衡狀態(tài),保護(hù)生物膜的完整性,使其在一定范圍內(nèi)忍耐鹽脅迫。但是,當(dāng)活性氧的產(chǎn)生超過(guò)了抗氧化系統(tǒng)的消除能力時(shí),植物就會(huì)受到傷害[21]。SOD催化O-2發(fā)生歧化反應(yīng),從而避免O-2對(duì)細(xì)胞的毒性傷害,而歧化反應(yīng)過(guò)程中所產(chǎn)生的H2O2則由CAT、APX等來(lái)清除[22-23]。也有研究認(rèn)為,H2O2是活性氧信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中的一個(gè)重要內(nèi)源信號(hào)分子,在植物對(duì)生物和非生物脅迫的抗性中起著重要作用[24]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,在鹽脅迫下,3種抗氧化酶活性都比空白對(duì)照增強(qiáng)。但在高鹽脅迫下,適當(dāng)濃度的H2O2能夠提高羽衣甘藍(lán)葉片SOD、CAT以及APX的活性,而清除劑處理下,則3種抗氧化酶與僅鹽脅迫處理相比顯著下降。表明低濃度的H2O2鹽脅迫條件下有信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)作用。

H2O2作為信號(hào)分子也脅迫調(diào)節(jié)相關(guān)的基因表達(dá)。在一定條件下,H2O2作為一種信號(hào)分子,可以調(diào)節(jié)一系列相關(guān)基因的表達(dá)[25-26]。例如,當(dāng)植物被病原體感染時(shí),植物體內(nèi)的H2O2誘導(dǎo)PR-1和PAL 基因的表達(dá)[27]。有人把豆類(lèi)植物用 10 mmol/L H2O2處理,其免疫反應(yīng)中類(lèi)NOS活性提高近8.3倍。大豆(Glycine max L.)細(xì)胞用外源H2O2處理,細(xì)胞質(zhì)APX的轉(zhuǎn)錄水平顯著提高[28]。如果用APX抑制劑羥基脲或CAT抑制劑氨基三唑處理培養(yǎng)的水稻(Oryza sativa L.)細(xì)胞,H2O2的產(chǎn)量明顯增加,它使APX的轉(zhuǎn)錄水平大幅提高[29]。另有研究表明,H2O2激活促原分裂蛋白激酶(MAPK)進(jìn)一步增強(qiáng)抗氧化酶防御酶活性[30]。本研究結(jié)果表明,在鹽脅迫下,3種抗氧化酶的基因表達(dá)受過(guò)氧化氫正調(diào)控(圖3),表明抗氧化防御系統(tǒng)增加了植物對(duì)鹽脅迫的耐受性和內(nèi)源性過(guò)氧化氫的積累有關(guān)。

綜上所述,在鹽脅迫條件下,H2O2參與了羽衣甘藍(lán)抗氧化保護(hù)酶活性的調(diào)節(jié),同進(jìn)也參與了抗氧化酶基因表達(dá)調(diào)控,它可能是鹽脅迫誘導(dǎo)的羽衣甘藍(lán)葉片抗氧化防護(hù)系統(tǒng)的重要調(diào)控因子。

參考文獻(xiàn):

[1] Correa N S,Bandeira J D,Marini P,et al. Salt stress:antioxidant activity as a physiological adaptation of onion cultivars[J]. Acta Botanica Brasilica,2013,27(2):394-399.

[2]Harpreet K,Sirhindi G,Bhardwaj R. Alteration of antioxidant machinery by 28-homobrassinolide in Brassica juncea L. under salt stress[J]. Advances in Applied Science Research,2015,6(4):166-172.

[3]Egbichi I,Keyster M,Ludidi N. Effect of exogenous application of nitric oxide on salt stress responses of soybean[J]. South African Journal of Botany,2014,90(1):131-136.

[4]劉友良,汪良駒. 植物對(duì)鹽脅迫的反應(yīng)和耐鹽性[M]//余叔文,湯章城. 植物生理與分子生物學(xué). 2版.北京:科學(xué)出版社,1998:752-754.

[5]劉愛(ài)榮,張遠(yuǎn)兵,陳登科. 鹽脅迫對(duì)鹽芥(Thellungiella halophila)生長(zhǎng)和抗氧化酶活性的影響[J]. 植物研究,2006,26(2):216-221.

[6]Costa P,Neto A,Bezerra M,et al. Antioxidant-enzymatic system of two sorghum genotypes differing in salt tolerance[J]. Brazilian Journal of Plant Physiology,2005,17(4):353-362.endprint

[7]Hernández J A,F(xiàn)errer M A,Jiménez A,et al. Antioxidant systems and O-2[KG-*2]· / H2O2 production in the apoplast of pea leaves. Its relation with salt-induced necrotic lesions in minor veins[J]. Plant Physiology,2001,127(3):817-831.

[8]高永生,陳集雙. 鹽脅迫下鑭對(duì)小麥幼苗葉片抗氧化系統(tǒng)活性的影響[J]. 中國(guó)稀土學(xué)報(bào),2005,23(4):490-495.

[9]Anderson B E,Ward J M,Schroeder J I. Evidence for an extracellular reception site for abscisic acid in commelina guard cells[J]. Plant Physiology,1994,104(4):1177-1183.

[10] 苗雨晨,董發(fā)才,宋純鵬. 過(guò)氧化——植物體內(nèi)的一種信號(hào)分子[J]. 生物學(xué)雜志,2001,18(2):4-6.

[11]趙鳳云,王元秀. 植物體內(nèi)重要的信號(hào)分子——H2O2[J]. 西北植物學(xué)報(bào),2006,26(2):427-434.

[12]李師翁,薛林貴,馮虎元,等. 植物中的H2O2信號(hào)及其功能[J]. 中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2007,23(10):804-810.

[13]Wahid A,Perveen M,Gelani S,et al. Pretreatment of seed with H2O2 improves salt tolerance of wheat seedlings by alleviation of oxidative damage and expression of stress proteins[J]. Journal of Plant Physiology,2007,164(3):283-294.

[14]Chung J S,Zhu J K,Bressan R A,et al. Reactive oxygen species mediate Na+-induced SOS1 mRNA stability in Arabidopsis[J]. Plant Journal for Cell and Molecular Biology,2008,53(3):554-565.

[15]劉遵春,陳榮江,包東娥. 干旱脅迫對(duì)金光杏梅幼苗生長(zhǎng)及其生理生化指標(biāo)的影響[J]. 沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2008,39(1):100-103.

[16]Li D H,Liu H,Yang Y L,et al. Down-regulated expression of gene by RNA interference enhances drought tolerance in rice[J]. Rice Science,2008,16(1):14-20.

[17]張立軍,魏 穎,宋廣周,等. H2O2信號(hào)在植物理化脅迫反應(yīng)中的作用[J]. 遼寧農(nóng)業(yè)科學(xué),2008(2):33-37.

[18]Gong M,Chen B,Li Z G,et al. Heat-shock-induced cross adaptation to heat,chilling,drought and salt stress in maize seedlings and involvement of H2O2[J]. Journal of Plant Physiology,2001,158(9):1125-1130.

[19]毛桂蓮,許 興,米海莉,等. NaCl脅迫下枸杞愈傷組織活性氧產(chǎn)生與質(zhì)膜H+/Na+酶活性的關(guān)系[J]. 干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究,2003,21(3):110-113.

[20]Liu A R. Effects of salt stress on the growth and the antioxidant enzyme activity of Thellungiella halophila[J]. Bulletin of Botanical Research,2006,26(2):216-221.

[21]王國(guó)驕,唐 亮,范淑秀,等. 抗氧化機(jī)制在作物對(duì)非生物脅迫耐性中的作用[J]. 沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2012,43(6):719-724.

[22]孫衛(wèi)紅,王偉青,孟慶偉. 植物抗壞血酸過(guò)氧化物酶的作用機(jī)制、酶學(xué)及分子特性[J]. 植物生理學(xué)報(bào),2005,41(2):143-147.

[23]蔡妙珍,羅安程,林咸永,等. Ca2+對(duì)過(guò)量Fe2+脅迫下水稻保護(hù)酶活性及膜脂過(guò)氧化的影響[J]. 作物學(xué)報(bào),2003,29(3):447-451.

[24]梁國(guó)慶,孫靜文,周 衛(wèi),等. 鈣對(duì)蘋(píng)果果實(shí)超氧化物歧化酶、過(guò)氧化氫酶活性及其基因表達(dá)的影響[J]. 植物營(yíng)養(yǎng)與肥料學(xué)報(bào),2011,17(2):438-444.

[25]蔣景龍. H2O2與生長(zhǎng)素對(duì)山黧豆初生根發(fā)育的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,44(3):121-123.

[26]蔡鳳香,陳豆豆,楊 飛,等. H2O2對(duì)水稻幼苗生長(zhǎng)和生理的調(diào)節(jié)[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,44(3):74-77.

[27]Beligni M V,Lamattina L. Nitric oxide interferes with plant photo-oxidative stress by detoxifying reactive oxygen species[J]. Plant Cell & Environment,2002,25(6):737-748.

[28]Lee S C,Kang B G,Oh S E. Induction of ascorbate peroxidase by ethylene and hydrogen peroxide during growth of cultured soybean cells[J]. Molecules and Cells,1999,9(2):166-171.

[29]Morita S,Masumura T,Tanaka K,et al. Induction of rice cytosolic ascorbate peroxidase mRNA by oxidative stress; the involvement of hydrogen peroxide in oxidative stress signalling[J]. Plant & Cell Physiology,1999,40(4):417-422.

[30]Zhang A,Jiang M,Zhang J,et al. Nitric oxide induced by hydrogen peroxide mediates abscisic acid-induced activation of the mitogen-activated protein kinase cascade involved in antioxidant defense in maize leaves[J]. New Phytologist,2007,175(1):36-50.endprint

主站蜘蛛池模板: 亚洲欧美成人影院| 毛片网站在线播放| 国产高清在线观看| 国产精品99r8在线观看| 尤物国产在线| 亚洲熟女中文字幕男人总站 | 99ri国产在线| 在线中文字幕网| 在线免费不卡视频| 国内精品九九久久久精品| 99视频在线看| 无码中文字幕精品推荐| 永久免费无码成人网站| 久草视频一区| 全部无卡免费的毛片在线看| 正在播放久久| 亚洲中文字幕国产av| 久久香蕉国产线看观看精品蕉| 91精品最新国内在线播放| 国精品91人妻无码一区二区三区| 国产美女精品一区二区| 91无码国产视频| 久久精品丝袜| 免费a级毛片18以上观看精品| 久久久久人妻一区精品色奶水 | 99视频在线精品免费观看6| 国产91精品久久| 欧美伦理一区| 久久久久夜色精品波多野结衣| 欧美特级AAAAAA视频免费观看| 999国内精品久久免费视频| 亚洲欧美另类久久久精品播放的| 97综合久久| 国产小视频在线高清播放| 国产91九色在线播放| 国产va欧美va在线观看| 国产第三区| 99精品欧美一区| 国产女主播一区| 操操操综合网| 强乱中文字幕在线播放不卡| 国模在线视频一区二区三区| 国产精品无码AⅤ在线观看播放| 五月丁香伊人啪啪手机免费观看| 福利小视频在线播放| 国产 在线视频无码| 久草性视频| 亚洲一级毛片| 911亚洲精品| 亚洲一区二区三区香蕉| 97精品久久久大香线焦| 欧美综合成人| 亚洲欧美日韩精品专区| 亚洲日本www| 国内99精品激情视频精品| 国产成人h在线观看网站站| 亚洲无码视频图片| 久久久久亚洲AV成人网站软件| 亚洲综合九九| 国产成人1024精品| 国产尤物jk自慰制服喷水| 全午夜免费一级毛片| 亚洲精品无码AⅤ片青青在线观看| 国产一级视频在线观看网站| 亚洲一级毛片在线观播放| 高清欧美性猛交XXXX黑人猛交 | 全免费a级毛片免费看不卡| 这里只有精品免费视频| 一级毛片视频免费| 亚洲Av激情网五月天| 色综合a怡红院怡红院首页| 在线免费亚洲无码视频| 欧美第一页在线| 在线观看免费AV网| 无码网站免费观看| 青青极品在线| 成人在线天堂| 国产又粗又猛又爽视频| 亚洲swag精品自拍一区| 在线日韩一区二区| 国产亚洲欧美另类一区二区| 91网址在线播放|