辛酉鳳,趙 金*
(1.內蒙古醫科大學,內蒙古 呼和浩特 010000;2.內蒙古包鋼醫院,內蒙古 包頭 014000)
選擇健康人群對其進行血液的采集,其中參加研究的女性均不在月經期,采集血液的量為10 ml,將抽取的靜脈血放置在試管內,且保證試管內不含抗凝劑,立即以一定轉速離心。經過;離心處理后液體分為三層,其中最上層為不含細胞的血漿,最底層為紅細胞層,中間層即為PRF。大約97%的血小板和>50%的白細胞以一種特定的三維分布在PRF的纖維蛋白結構中[1]。血小板中含有30多種生長因子,如血小板衍生生長因子(platelet-derived growth factor,PDGF)、轉化生長因子-β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1)等[2]。這些生長因子還有其內的白細胞釋放白細胞介素(IL-1、IL-4)、腫瘤壞死生長因子-α(Tumor necrosis factor-α,TNF-α)和血管內皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)等,各因子之間發揮著協同作用,并對組織細胞有著調控作用,主要表現為對其增殖分化有影響,對炎癥因子有介導作用,能夠幫助創口快速愈合。盡管血小板生長因子在PRF中發揮重要作用,白細胞含量和纖維蛋白結構也是兩個關鍵參數[1]。
在制備PRF的時候最為重要的是選擇好離心處理的方法,離心方法受到相對離心力(relative centrifugal force,RCF)和離心時間的影響。PRF的纖維蛋白三維結構與其內的細胞分布取決于離心力[1]。血液中的細胞若是遭到了破壞,可能使離心力較高,且離心處理的時間較長。RCF受到離心轉速和離心半徑的影響,RCF=1.118×10-6×R×W2(其中R表示離心半徑,所用單位為cm,W表示離心轉速,所用單位為r/min)[2]。因此在RCF一定的情況下,由于不同品牌的離心機離心半徑不同,制備PRF的轉速應有所不同。(1)最早提出的PRF制備方案是Choukroun等在2001年提出。由于其內含有大量的白細胞,又被命名為L-PRF(leukocyte-PRF,L-PRF)。當時用于制備PRF的離心機是法國Nice公司的PC-02臺式離心機[3]。(2)Shahram Ghanaati等在2014年使用同樣的離心機制備了標準PRF(standard PRF,S-PRF):采集全血,采集量為9ml,將其放在不含有抗凝劑的塑料管中,且塑料管有無菌玻璃涂層,進行離心處理,轉速為2700 r/min,離心時間為12 min;改良型富血小板纖維蛋白(advance platelet-rich fibrin,A-PRF):采集全血,采集量為10 ml,將其放在無菌純玻璃管中,且其中不含有抗凝劑,進行離心處理,轉速為1500 r/min,離心時間為14 min。得出:與S-PRF相比,A-PRF的纖維蛋白三維結構更為松散,其內的細胞數量更多,分布更為均勻。A-PRF似乎是自體細胞(特別是中性粒細胞和巨噬細胞)的理想供給者[4]。(3)2017年,Xuzhu Wang等制備i-PRF(injectable-platelet-rich fibrin, i-PRF)的方法如下:采集全血,采集量為10 ml,將其放在不含抗凝劑的試管內,立即以700r/min(相對離心力大約60×g)離心3 min,上層的1 ml液體被稱為i-PRF(一種液體血小板濃縮物)。得出的結果為i-PRF對于更多的細胞有顯著的動員作用,能夠使得細胞進行遷移,產生更多的生長因子及纖維連接蛋白[5]。有實驗證明:A-PRF+(low-speed+time)將血液以1300r/min的速度離心8 min,與L-PRF相比,其內的生長因子含量較高,其生物相容及成纖維細胞遷移和增殖水平較高[6]。
(1)試管材質:李龍等證明用玻璃管制備的PRF比用塑料管制備的釋放VEGF含量高[7]。Mustafa等用鈦試管制備T-PRF(titanium-prepared,platelet-rich fibrin)。其血小板聚集與PRF在玻璃管內制備的情況有相似之處,其生物相容性更好。試管類型(干玻璃或玻璃涂層塑料管),似乎沒有影響這種自體生物材料的結構。(2)除水方式:對PRF凝膠進行脫水處理,按照速度的快慢分為緩慢脫水和快速脫水,在釋放生長因子的含量上差異不顯著[8]。(3)儲存方法:李龍等的實驗證明4℃比37℃培養條件下PRF釋放的VEGF含量更高。
雖然國內關于PRF生長因子含量的測定實驗有很多,但是其制備沒有一個標準的流程,導致生長因子含量不穩定,從而影響了其臨床療效。因此, 將離心轉速換算成相對離心力,能夠大幅度減小實驗誤差,為臨床工作提供更可靠的制備方法。