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五氯酚對土壤跳蟲代謝轉(zhuǎn)化酶基因和蛻皮相關(guān)基因表達(dá)的影響

2018-01-29 09:11:25張倩倩喬敏
生態(tài)毒理學(xué)報 2017年5期
關(guān)鍵詞:水平研究

張倩倩,喬敏,*

1. 中國科學(xué)院生態(tài)環(huán)境研究中心城市與區(qū)域生態(tài)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100085 2. 中國科學(xué)院大學(xué),北京 100049

五氯酚(pentachlorophenol, PCP)是一種含氯有機(jī)物,被廣泛用作農(nóng)藥和木材防腐劑等;在我國,PCP及其鈉鹽常被用于殺滅血吸蟲的中間宿主——釘螺,以防治血吸蟲病[1]。PCP的廣泛使用,引起了嚴(yán)重的污染問題,在水、沉積物和土壤等環(huán)境介質(zhì)中以及一些生物體內(nèi)都有檢出[1-4]。PCP具有致癌性、免疫毒性、神經(jīng)毒性、生殖毒性和內(nèi)分泌干擾效應(yīng)等[5-6]。目前,對PCP毒理效應(yīng)的研究主要集中在大鼠、斑馬魚、大型溞等生物上[5, 7-8],對土壤無脊椎動物的研究較少。

在土壤生態(tài)毒理學(xué)的研究中,跳蟲是一種常用的模式生物[9]。跳蟲的存活率、繁殖和回避行為等指標(biāo),可被用于指示污染物的毒性[10-11]。Crouau等[11]研究了PCP對跳蟲的繁殖毒性,在暴露時間為33~34 d時,繁殖抑制EC50為87 mg·kg-1。此外,跳蟲分子水平上的指標(biāo),也越來越多地被用于生態(tài)毒理學(xué)的研究中[12-15]。與存活率、繁殖等毒性終點(diǎn)相比,分子水平上的指標(biāo)一般更敏感,反應(yīng)更快。

細(xì)胞色素P450(Cytochrome P450, CYP450)和谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(Glutathione-S Transferase, GST)等是常用的分子生物標(biāo)志物。CYP450和GST都是代謝轉(zhuǎn)化酶,CYP450是一相代謝酶,GST是二相代謝酶,它們在外源物質(zhì)的代謝和解毒方面起重要作用[13-14, 16-17]。 有研究報道,菲能誘導(dǎo)跳蟲CYP450和GST基因的表達(dá)[13-14]。PCP能被人的CYP450 3A4轉(zhuǎn)化為四氯對苯二酚[18];四氯對苯二酚能消耗谷胱甘肽,造成氧化損傷[19]。在PCP降解菌中,PCP被氧化為四氯對苯二酚后,會被GST轉(zhuǎn)化為2,6-二氯對苯二酚,再經(jīng)其他氧化還原酶作用轉(zhuǎn)化為3-氧代己二酸[20]。

內(nèi)分泌干擾物能影響生物的內(nèi)分泌系統(tǒng),從而影響生物的生長、發(fā)育和繁殖等。已有一些研究表明PCP具有內(nèi)分泌干擾效應(yīng)[5-6, 21-22],但少有PCP對土壤無脊椎動物內(nèi)分泌干擾效應(yīng)的研究。跳蟲作為一種節(jié)肢動物,在其整個生命過程中持續(xù)蛻皮[23]。節(jié)肢動物的蛻皮是由激素控制的,目前對節(jié)肢動物蛻皮過程已有一些研究,發(fā)現(xiàn)一些蛻皮相關(guān)基因,但對跳蟲蛻皮相關(guān)基因表達(dá)的研究很少,內(nèi)分泌干擾物暴露下跳蟲蛻皮相關(guān)基因表達(dá)變化更鮮有報道。

本文以人工土壤為暴露介質(zhì),研究了不同濃度PCP暴露下,跳蟲蛻皮相關(guān)基因、CYP450和GST基因表達(dá)水平的變化,以期為PCP等內(nèi)分泌干擾物的生態(tài)毒性和生態(tài)風(fēng)險評價提供科學(xué)依據(jù)。

1 材料與方法(Materials and methods)

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

供試生物為白符跳(Folsomiacandida),來自挪威國家農(nóng)業(yè)與環(huán)境研究所(Bioforsk),在本實(shí)驗(yàn)室持續(xù)培養(yǎng)。培養(yǎng)方法如下:跳蟲飼養(yǎng)于培養(yǎng)皿中,底部有0.5 cm厚的培養(yǎng)基,培養(yǎng)基由熟石膏、活性炭和蒸餾水(質(zhì)量比為9:1:7)混合后制成。培養(yǎng)皿放在人工氣候箱(寧波江南RXZ-380D)中,控制溫度為(20±1) ℃,濕度為(70%±5%),黑暗培養(yǎng)。每周補(bǔ)充蒸餾水以保持培養(yǎng)基濕潤,并加入少量干酵母作為跳蟲食物。實(shí)驗(yàn)中選用的跳蟲需經(jīng)過同齡化培養(yǎng),同齡化方法如下:挑選50~60只活躍成蟲至新培養(yǎng)基中,加入少量干酵母,待成蟲產(chǎn)卵(約2 d)后,移去成蟲,每天觀察,當(dāng)觀察到有幼蟲孵出后,將幼蟲轉(zhuǎn)移到新培養(yǎng)基中培養(yǎng)。跳蟲培養(yǎng)到23 d大時即可用于實(shí)驗(yàn)。

主要試劑為PCP(純度98%,ULTRA scientific, USA)和丙酮(色譜純,F(xiàn)isher Chemical, USA),石英砂(Sigma-Aldrich),高嶺土(化學(xué)純,滬試),泥炭(德國Klasmann泥炭土876型)等。

1.2 暴露方法

本實(shí)驗(yàn)中的暴露介質(zhì)為人工土壤,配制方法為:將泥炭、高嶺土和石英砂按照1:2:7的質(zhì)量比混合均勻,用CaCO3調(diào)節(jié)pH至(6.0±0.5)。配制不同濃度的PCP的丙酮溶液,加入到人工土壤中,攪拌混合均勻,使各處理組中PCP濃度分別為0、30、60、120和240 mg·kg-1干土,每個處理組做3個重復(fù)。加入一定量蒸餾水調(diào)節(jié)土壤含水量至土壤最大持水量的50%,分裝至100 mL燒杯中(每個燒杯放入30 g濕土)。每個燒杯中加入30只23 d大的跳蟲,用封口膜將燒杯封口,2 d后,用水浮法取出跳蟲,放入離心管中,用液氮速凍后轉(zhuǎn)入-80 ℃冰箱儲存。

1.3 基因表達(dá)水平測定

跳蟲RNA的提取利用微量樣品總RNA提取試劑盒(天根),操作按試劑盒的說明書進(jìn)行。利用瓊脂糖凝膠電泳檢測提取的RNA的完整性,利用Nanodrop測定RNA濃度,提取的RNA的OD260/OD280值在1.8~2.1范圍內(nèi)。利用FastQuant cDNA第一鏈合成試劑盒(天根)進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,然后將各個cDNA樣本稀釋10倍備用。定量PCR反應(yīng)在iCycle IQ2(Bio-rad, USA)儀器上進(jìn)行,使用SuperRealPreMix Plus試劑盒(天根)。反應(yīng)體系為20 μL,包括:10 μL的2×SuperReal PreMix Plus,2 μL的cDNA模板,6.8 μL的ddH2O,正向引物和反向引物各0.6 μL。反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性15 min;95 ℃變性10 s,60 ℃退火20 s,72 ℃延伸30 s并采集熒光信號,40個循環(huán);并設(shè)置溶解曲線以檢測擴(kuò)增產(chǎn)物的特異性。基因表達(dá)水平采用2-ΔΔCT法計算[24]。

待測的基因及其引物如表1所示。部分基因的引物序列來自于已發(fā)表文獻(xiàn)。對于基因Fcc04073和Fcc01306,根據(jù)其EST序列,利用Beacon Designer 8設(shè)計引物。對新設(shè)計的引物進(jìn)行PCR反應(yīng),使用2×Taq PCR MasterMix(天根),反應(yīng)體系為50 μL,包括:25 μL的2×Taq PCR MasterMix,5 μL的cDNA模板,16 μL的ddH2O,正向引物和反向引物各2 μL。反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性30 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,30個循環(huán);72 ℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)切膠純化后,進(jìn)行TA克隆,再進(jìn)行測序,測序結(jié)果與目的基因片段比對后確認(rèn)為需要的目的基因。各對引物qPCR擴(kuò)增效率利用標(biāo)準(zhǔn)曲線法測定,從各個cDNA樣本中取出一部分混合作為模板,進(jìn)行5倍梯度稀釋,共5個梯度。

1.4 數(shù)據(jù)處理

在數(shù)據(jù)滿足(或經(jīng)數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)換后滿足)正態(tài)性(Shapiro-Wilk檢驗(yàn))和方差齊性(Levene檢驗(yàn))的前提下,進(jìn)行單因素方差分析(One-Way ANOVA),利用Dunnett's t 檢驗(yàn)進(jìn)行多重比較,P<0.05表示差異顯著。若數(shù)據(jù)不滿足正態(tài)性和方差齊性,則利用Kruskal-Wallis單因素方差分析。數(shù)據(jù)分析和繪圖利用SPSS 20.0和Origin 8.5完成。

2 結(jié)果(Results)

表1 qPCR中各個基因的引物Table 1 Primers used in the qPCR analysis

注:a根據(jù)Blastx和interPro注釋結(jié)果,獲得基因功能;bFcc02512(YWHAZ)被用作內(nèi)參基因。

Note:aFunction is derived from the annotation results of Blastx and interPro;bFcc02512(YWHAZ) is used as reference gene.

圖1 PCP暴露對跳蟲基因表達(dá)的影響(“*”)指該處理組與對照組相比差異顯著,P<0.05)Fig. 1 Effects of PCP on gene expression of F. candida (“*”) denotes significant difference between treated and control groups, P<0.05)

PCP對跳蟲的CYP450、GST基因和蛻皮相關(guān)基因的表達(dá)水平的影響如圖1所示。CYP450基因Fcc01651、Fcc02155和Fcc03650的表達(dá)水平和PCP暴露濃度之間的效應(yīng)-劑量關(guān)系不顯著(P>0.05)。隨著PCP濃度的增加,F(xiàn)cc01651的表達(dá)水平先上下波動,后有逐漸增加的趨勢;Fcc02155的表達(dá)水平先增加,后上下波動;Fcc03650的表達(dá)水平整體上呈現(xiàn)逐漸降低的趨勢;但這些變化都不顯著(P>0.05)。

跳蟲GST基因Fcc04073和Fcc05260的表達(dá)水平與PCP暴露濃度之間的效應(yīng)-劑量關(guān)系不顯著(P>0.05)。在PCP濃度較高時,F(xiàn)cc04073(120 mg·kg-1)和Fcc05260(120 mg·kg-1和240 mg·kg-1)的表達(dá)水平高于對照組,但并不顯著(P>0.05)。在PCP濃度為30、60和120 mg·kg-1時,F(xiàn)cc00494的表達(dá)水平與對照組相近;在PCP濃度為240 mg·kg-1時,GST基因Fcc00494的表達(dá)受到顯著誘導(dǎo)(P<0.05),為對照組的2.18倍。

在PCP濃度為30 mg·kg-1和60 mg·kg-1時,幾丁質(zhì)酶基因Fcc00881的表達(dá)水平略有降低;在PCP濃度為120 mg·kg-1和240 mg·kg-1時,F(xiàn)cc00881的表達(dá)受到顯著抑制,分別為對照組的40.95%和28.89%(P<0.05)。隨著PCP濃度的增加,幾丁質(zhì)結(jié)合蛋白基因Fcc01306的表達(dá)水平逐漸下降;在PCP濃度為120 mg·kg-1和240 mg·kg-1時,F(xiàn)cc01306的表達(dá)受到顯著抑制,分別為對照組的13.11%和4.20%(P<0.05)。

3 討論(Discussion)

CYP450是一相代謝酶,它是一類含血紅素的依賴NADPH的單加氧酶,催化許多物質(zhì)的氧化代謝[29]。菲暴露2 d和7 d均發(fā)現(xiàn)能顯著誘導(dǎo)跳蟲CYP450基因的表達(dá)[13-14]。在本實(shí)驗(yàn)條件下,跳蟲CYP450基因Fcc01651、Fcc02155和Fcc03650并未受到PCP的顯著影響。基因表達(dá)會受暴露時間等的影響,本實(shí)驗(yàn)的暴露時間為2 d,這些CYP450基因的表達(dá)未發(fā)生顯著變化,可能因?yàn)楸┞稌r間較短。

GST是二相代謝酶,它廣泛存在于各種好氧生物體內(nèi),在抗氧化、外源物質(zhì)的代謝和解毒方面起著重要的作用[30]。GST可以通過促進(jìn)還原脫氯化氫作用或與還原性谷胱甘肽的結(jié)合反應(yīng),將疏水性的有毒物質(zhì)轉(zhuǎn)化為具有親水性的物質(zhì),從而更易于排出體外;此外,在有毒物質(zhì)的代謝過程中可能產(chǎn)生氧自由基,GST在氧自由基的去除過程中起重要作用[31]。有研究報道,Cd[32]、吡蟲啉[12]和菲[13-14]等顯著誘導(dǎo)了跳蟲GST基因的表達(dá)。PCP能對背角無齒蚌(Anodontawoodiana)產(chǎn)生氧化脅迫,誘導(dǎo)GST基因的表達(dá)[33-34]。本研究結(jié)果表明,PCP顯著誘導(dǎo)了跳蟲GST基因Fcc00494的表達(dá),可能是因?yàn)镚ST參與了PCP的代謝,或者PCP引發(fā)了氧自由基的產(chǎn)生,GST參與了氧自由基的去除。跳蟲GST基因Fcc04073和Fcc05260有被PCP誘導(dǎo)表達(dá)的趨勢,但并不顯著(P>0.05),PCP對不同跳蟲GST基因(Fcc00494、Fcc04073和Fcc05260)作用不同,這可能是因?yàn)椴煌珿ST之間存在著差異,具有不同的特異性和親和性[30-31]。Nota等[13]利用基因芯片研究菲暴露下跳蟲基因表達(dá)譜的變化,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,在暴露于濃度為24.95 mg·kg-1(干土)的菲時,跳蟲GST基因Fcc00494、Fcc04073和Fcc05260都顯著上調(diào),但上調(diào)的程度不同。

蛻皮是跳蟲重要的生命過程,影響著跳蟲的生長和繁殖。跳蟲在其一生中持續(xù)蛻皮,每次蛻皮會更新其表皮和中腸上皮,圍食膜是中腸上皮的一部分[35-38]。跳蟲表皮和圍食膜的主要成分是幾丁質(zhì)和蛋白質(zhì)[35-37, 39]。幾丁質(zhì)酶在蛻皮過程中起著降解幾丁質(zhì)的作用[40]。有研究報道,在干旱脅迫下,跳蟲停止蛻皮,幾丁質(zhì)酶基因Fcc00881的表達(dá)顯著下調(diào),在補(bǔ)水后,跳蟲恢復(fù)蛻皮,幾丁質(zhì)酶基因Fcc00881的表達(dá)顯著上調(diào)[28]。幾丁質(zhì)結(jié)合域是一些圍食膜蛋白質(zhì)和幾丁質(zhì)酶的組成部分[41-44]。本研究結(jié)果表明,PCP顯著抑制了跳蟲幾丁質(zhì)酶基因Fcc00881和幾丁質(zhì)結(jié)合域基因Fcc01306的表達(dá),說明PCP可能抑制了跳蟲的蛻皮。已有報道表明PCP對水生節(jié)肢動物大型溞(Daphniamagna)的蛻皮有抑制作用[7],且雌二醇、乙烯雌酚和4-壬基酚等內(nèi)分泌干擾物也會抑制大型溞的蛻皮[45]。蛻皮又主要是由蛻皮激素調(diào)控的,PCP對蛻皮的抑制可能是通過干擾蛻皮激素進(jìn)行調(diào)控。有研究表明,PCP 能誘導(dǎo)搖蚊(Chironomusriparius)蛻皮激素受體基因和蛻皮激素應(yīng)答基因E74的表達(dá)[46]。

近期,跳蟲的基因組信息進(jìn)一步完善,從中找到與蛻皮激素緊密相關(guān)的基因(如蛻皮激素受體基因),研究PCP暴露下這些基因的表達(dá)變化,將能進(jìn)一步闡明PCP對跳蟲內(nèi)分泌系統(tǒng)的影響。生物體內(nèi)含有多種CYP450和GST,找到跳蟲其他的CYP450和GST基因開展相關(guān)研究,將能進(jìn)一步了解PCP對跳蟲代謝轉(zhuǎn)化酶的影響。此外,基因表達(dá)會隨著時間的變化而變化,而且不同基因的響應(yīng)速度不同,本實(shí)驗(yàn)的暴露時間為2 d,測定不同時間暴露下的基因表達(dá),將能進(jìn)一步了解PCP對跳蟲基因表達(dá)的影響。自然土壤和人工土壤的性質(zhì)存在著差異,而土壤性質(zhì)能影響污染物的毒性,本實(shí)驗(yàn)使用的土壤是人工土壤,應(yīng)進(jìn)一步對具有代表性的自然土壤開展相關(guān)研究。

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