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姜黃素對活化肝星狀細胞內脂質水平的影響及其機制

2018-02-14 07:17:42韓曉群林劍國楊婧
解放軍醫學雜志 2018年12期
關鍵詞:小鼠

韓曉群,林劍國,楊婧

肝纖維化是因膠原纖維生成和溶解失衡造成的大量細胞外基質蛋白沉積在肝臟內形成瘢痕組織的過程。肝星狀細胞(hepatic stellate cells,HSCs)是肝纖維化的主要效應細胞,其活化是肝纖維化發生發展過程中的一個重要事件。姜黃素是從姜黃根莖中提取的一種活性成分,具有抗氧化、抗炎、抗腫瘤等功能,并具有抗纖維化作用,目前對HSCs機制的研究主要集中在抑制HSCs增殖、誘導HSCs凋亡等方面[1-3]。本研究聚焦于姜黃素能否通過調節HSCs脂質水平抑制HSCs活化,從而發揮其抗纖維化作用機制,希望通過探討姜黃素對活化HSCs脂質水平的影響及其可能機制,為臨床抗纖維化治療提供參考。

1 材料與方法

1.1 主要試劑 姜黃素、油紅O染色試劑盒、TRI試劑購自美國Sigma公司;甘油三酯(triglyceride,TG)和游離脂肪酸(free fatty acid,FFA)ELISA試劑盒購于中生北控生物科技有限公司;高效RNA-cDNA 試劑盒購于美國Applied Biosystems公司;2×SYBR Green Real-time PCR Master Mix購于上海欣百諾公司。

1.2 小鼠HSCs的分離、鑒定、培養及藥物干預C57/B6小鼠購于武漢大學實驗動物中心。向小鼠門靜脈灌注鏈霉蛋白酶和膠原酶,采用梯度離心法分離HSCs。將分離所得HSCs以含20%胎牛血清(FBS)的DMEM懸浮,臺盼藍法計算細胞數及存活率。在倒置顯微鏡下觀察,新分離的HSCs在培養液中懸浮,呈球形,折光性強。熒光顯微鏡下觀察,新分離的HSCs在328nm紫外光激發下發出藍綠色的自發熒光。細胞以1×106/cm2密度接種于6孔培養板,48h后純度大于95%;3d后以含10% FBS的DMEM常規傳代培養。取第4~9代細胞用于實驗。同時常規培養小鼠肝細胞AML12,作為對照。實驗前以不含FBS的DMEM培養HSCs或AML12細胞24h后,再采用凋亡抑制因子存活素(survivin,1nmol/L)預處理細胞24h,之后分別以濃度為5、10、20μmol/L姜黃素干預細胞24h。

1.3 HSCs內脂滴的觀察 采用油紅O染色法。將油紅O溶于60%異丙醇,以4%甲醛固定細胞15min,加入油紅O溶液染色10min,60%異丙醇漂洗2min除去多余染料,蘇木素復染,40倍顯微鏡下觀察HSCs內脂滴。靜止狀態下HSCs內脂滴油紅O染色呈暗紅色。

1.4 ELISA法檢測細胞內TG和FFA含量 按照TG或FFA檢測試劑盒說明書,采用ELISA方法檢測細胞內的TG和FFA含量。

1.5 脂質代謝相關基因表達的檢測 采用RTqPCR檢測脂質代謝相關基因的表達。使用TRI試劑提取HSCs細胞總RNA,用高效RNA-cDNA 試劑盒合成第一條互補DNA鏈;用2×SYBR Green Realtime PCR Master Mix試劑盒檢測脂質代謝相關基因固醇調節元件結合蛋白1c(sterol regulatory element binding protein-1c,SREBP-1c)、脂肪酸合成酶(fatty acid synthetase,FAS)、自水解酶域包含蛋白5(abhydrolase domain containing 5,abhd5)、脂肪甘油三酯脂肪酶(adipose triglyceride lipase,ATGL)的mRNA水平。引物序列如表1所示。以GAPDH為內參照,采用2–ΔΔCt法計算mRNA相對表達量。

表1 Real-time PCR引物序列Tab.1 Primer sequences in real-time PCR

1.6 脂質代謝相關蛋白表達的Western blotting檢測收集并裂解細胞,提取總蛋白,按常規操作進行SREBP1c、FAS、abdh5、ATGL的Western blotting檢測,蛋白條帶通過化學發光顯影,目標蛋白表達量通過β-actin進行校正。

1.7 統計學處理 采用SPSS 17.0軟件進行統計分析。所有數據均以表示,多組間比較采用Oneway ANOVA分析,進一步兩兩比較采用post hoc檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。

2 結 果

2.1 姜黃素對HSCs內脂滴的影響 以5、10、20μmol/L姜黃素干預活化HSCs和AML12細胞后,鏡下可見隨著姜黃素濃度增加,HSCs內暗紅色脂滴數量逐漸增多,表明姜黃素可恢復小鼠HSCs內脂滴水平,作用呈劑量依賴性;而姜黃素對AML12細胞內脂滴無明顯影響(圖1)。

圖1 姜黃素對肝星狀細胞內脂滴水平的影響(×40)Fig.1 Effect of curcumin on HSCs' lipid droplet levels (×40)

2.2 姜黃素對小鼠HSCs脂質水平的影響 ELISA檢測結果顯示,采用5、10、20μmol/L濃度姜黃素干預細胞后,小鼠肝星狀細胞內TG含量[分別為(1.495±0.230)nmol/mg protein、(3.758±0.717)nmol/mg protein、(4.490±0.360)nmol/mg protein]與對照組[(1.176±0.343)nmol/mg protein]比較明顯升高(P<0.01);FFA含量[分別為(57.250±1.463)nmol/mg protein、(78.425±1.030)nmol/mg protein、(111.150±2.350)nmol/mg protein]與對照組[(28.750±2.433)nmol/mg protein]比較明顯升高(P<0.01),且作用呈劑量依賴性。使用凋亡抑制因子survivin抑制細胞凋亡后,細胞內TG和FFA含量與未使用survinvin時比較無明顯變化(圖2)。

圖2 姜黃素對肝星狀細胞甘油三酯和游離脂肪酸的影響(n=3)Fig.2 Effects of curcumin on TG and FFA levels in HSCs (n=3)

2.3 姜黃素對小鼠肝星狀細胞脂質代謝相關基因mRNA及蛋白表達的影響 RT-qPCR和Western blotting檢測結果顯示,姜黃素明顯上調了FAS和SREBP-1c基因的mRNA和蛋白的表達(P<0.01),明顯下調了ATGL基因及蛋白的表達(P<0.05),但對abhd5基因表達無明顯影響(P>0.05,圖3)。

圖3 姜黃素對肝星狀細胞脂質代謝相關基因SREBP-1C、FAS、ATGL、abhd5表達的影響(n=3)Fig.3 Effects of curcumin on the expression of genes related to the lipid metabolism of activated HSCs (n=3)

3 討 論

研究表明,盡管不同原因導致的肝臟疾病表現出不同的病理變化,但HSCs活化是肝纖維化發生發展過程中的一個重要事件和共同途徑,是肝纖維化的細胞基礎。HSCs胞質內的脂滴并非細胞內一個簡單的能量貯存器,而是一個復雜、活動旺盛、動態變化的多功能細胞器,它參與了脂類代謝與存儲、膜轉運、蛋白降解,以及某些信號傳導。多種代謝性疾病,如肥胖、脂肪肝、心血管疾病及糖尿病,往往都伴隨著脂滴的異常[4]。肝臟損傷過程中,靜止的HSCs發生明顯的表型變化,包括細胞增殖分化、細胞內脂滴丟失及α-平滑肌肌動蛋白的重新表達、細胞外基質的過度沉積等,這一過程即為HSCs活化。激活的HSCs通過增生和分泌過多的細胞外基質引起肝纖維化的形成。鑒于此,從抑制HSCs活性入手來減少細胞外基質的產生已成為目前治療肝纖維化的研究熱點[5]。HSCs脂滴消失是細胞活化的特征之一,細胞內脂質聚集能夠有效抑制HSCs的活化[6]。

細胞脂滴內脂肪的來源除從細胞外攝入與轉運外,主要依賴內源性的脂肪合成。肝臟脂肪生成在轉錄水平受到一系列調節蛋白調控,這些調節蛋白包括SREBP-1c、過氧化物酶體增殖物激活型受體γ(peroxisome proliferator-activated receptor γ,PPARγ)、肝X受體α(liver X receptor α,LXRα)等。SREBP-1是SREBP家族成員之一,SREBP-1有兩種亞型,即SREBP-1a和SREBP-1c;在肝臟中SREBP-1a和SREBP-1c的mRNA表達比例為1:9,在HSCs中其比例為1:4;SREBP-1a主要促進脂肪酸和膽固醇的合成,而SREBP-1c則在甘油三酯和磷脂形成中發揮重要作用[7]。有研究表明,地骨皮甲素能夠通過下調SREBP-1c 的表達而抑制脂肪肝的形成[8];而Lee等[9]研究發現,SREBP-1能夠調節FAS、硬脂酰輔酶A去飽和酶-1(stearyl coenzyme A desaturase -1,SCD-1)、乙酰輔酶A羧化酶1(acetyl-CoA carboxylase 1,ACC1)等促進FFA及TG合成的基因表達,發揮促進HSCs脂滴堆積的作用。

另外,脂質分解在維持脂質平衡方面的作用亦不容忽視。脂質分解受ATGL、激素敏感性脂肪酶及單酰基甘油酯酶調節,其中ATGL是脂肪分解的限速酶。AGTL活化須與abhd5相關聯活化后才能發揮催化作用。abhd5是ATGL的輔助活化因子,協助ATGL催化TG分解生成甘油二酯和FFA[10]。ATGL和abdh5之間的關聯關系被打破,或任何一方發生突變都會影響ATGL的活性,從而導致異位脂質堆積。

在正常肝組織內,HSCs處于靜止狀態,細胞內存在大量脂滴;而在纖維化過程中,HSCs激活,產生大量細胞外基質的同時,細胞內脂滴丟失[6,11]。有研究表明,激活的HSCs內恢復脂滴形成后,細胞就會返回到靜止狀態,并明顯抑制產生膠原蛋白的能力[12]。

本研究采用不同濃度的姜黃素對HSCs進行干預,結果顯示,姜黃素呈劑量依賴地增加了HSCs內脂滴形成及脂肪水平,但對肝細胞AML12內脂肪水平沒有影響,說明姜黃素只對HSCs起作用;進一步針對脂質代謝相關分子的研究表明,姜黃素通過增加脂肪的合成及抑制脂肪的分解來達到積累脂肪的目的。有研究發現,姜黃素在一定濃度下可抑制HSCs的增殖,并促進其凋亡。為證實HSCs細胞內脂滴的變化不是HSCs促進凋亡的結果,本研究采用凋亡抑制因子survivin(1nmol/L)處理細胞,未發現姜黃素的作用受到明顯影響,表明恢復HSCs脂質水平可能是姜黃素抑制HSCs活化的機制之一。

另有研究證實,姜黃素可通過調節瘦素及瘦素受體表達而在抗肝臟脂肪變性及抗肝纖維化中發揮作用[13-14],但其通過調節HSCs內脂滴水平發揮抗纖維化的作用是否與瘦素受體相關,尚須進一步研究。

綜上所述,姜黃素可通過調節脂質代謝相關基因的表達促進HSCs脂滴堆積,且對肝實質細胞脂滴水平無明顯影響,提示姜黃素在肝纖維化的治療中具有一定的應用潛力。

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