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OsCRY基因融合蛋白的表達純化及多克隆抗體制備

2018-03-22 11:43:12莊春紅莊偉建
中文信息 2018年1期

莊春紅 莊偉建

摘 要:藍光受體隱花色素是主要的光受體之一,參與植物生長發育過程中一系列的生理生化及代謝反應。本研究克隆了OsCRY1a、OsCRY1b、OsCRY2全基因的末端400bp到600bp,構建了pET-29a(+)-OsCRY1a、pET-29a(+)-OsCRY1b、pET-29a(+)-OsCRY2基因高效表達載體,并在大腸桿菌中進行蛋白的誘導表達,分別獲得大約20-30kD的CRY融合蛋白,純化了CRY融合蛋白,并制備了多克隆抗體。

關鍵詞:隱花色素 融合蛋白 多克隆抗體

中圖分類號:Q78 文獻標識碼:A 文章編號:1003-9082(2018)01-0-02

光受體在植物的光形態建成中起重要作用,參與植物生長發育過程中一系列的生理生化及代謝反應[1]。隱花色素是在所有主要的演化譜系上基因表達光調節的藍光受體,但是其信號轉導的分子機制仍然還沒被完全揭示。光經過這些受體進行信號轉導,引起生理生化反應,抑制下胚軸伸長、調節開花時間、氣孔開放、刺激子葉擴展、引導晝夜節律時鐘和調節基因表達等[2],進而調節植物的生長發育,以更好適應外界環境。本研究克隆了OsCRY1a、OsCRY1b、OsCRY2三個隱花色素基因末端400bp到600bp,構建基因高效表達載體,在大腸桿菌中誘導蛋白表達,純化出融合蛋白,制備多克隆抗體,為后續隱花色素基因的利用和改造奠定基礎。

一、材料與方法

1.材料

1.1菌種、質粒和培養基

大腸桿菌( Escherichia coli)BL21和DH5α、質粒pET29a(+) 均由本實驗室保存。LB 培養基:10 g·L - 1蛋白胨, 5 g·L - 1 NaCl, 5 g·L - 1酵母粉,pH 7. 0; 120 ℃高壓滅菌20 min, 4 ℃保存備用。

1.2酶、生化試劑及試劑盒

Taq TM DNA聚合酶、膠回收試劑盒( PCR Fragment Recovery Kit)及相關PCR引物購自上海生工生物工程有限公司,限制性內切酶和T4 連接酶購自大連TaKaRa公司 ;Kan(卡那霉素) 、Amp (氨芐青霉素)、PMSF(苯甲基磺酰氟)來自美國AMERSCO公司;瓊脂糖(Biowest agarose) 、質粒提取試劑盒(MediBEST Plasmid Purification Kit )和Ni-NTA Superflow Cartridge購自Qiagen公司(上海) ;ECL檢測試劑盒、 NC (硝酸纖維膜) 轉印膜為GE 公司產品; IPTG(異丙基硫代半乳糖苷)購自廈門星隆達化學試劑有限公司;弗氏不完全佐劑、弗氏完全佐劑為北京鼎國公司產品;其余藥品為國產分析純生化試劑。

1.3實驗動物

3只大耳成人家兔,體重約2 kg。

2.方法

2.1日本晴水稻基因組DNA的提取

用CTAB法[3]提取日本晴水稻基因組DNA。

2.2表達載體構建

以含有CRY1a、CRY1b、CRY2粳稻日本晴基因組DNA模板,Oscry1acctpET-Nde1、Oscry1acctpET-Xho1、Oscry1bcctpET-Nde1、Oscry1bcctpET-Eag1、Oscry2cctpET-Nde1、Oscry2cctpET-Xho1為引物,PCR 擴增獲得目的片段,回收產物經Nde1和 Xho1、Nde1和Eag1、Nde1和Xho1雙酶切后連入pET29a(+)表達載體,轉入大腸桿菌DH5α,重組質粒鑒定后,送上海生工生物工程有限公司測序。引物序列如下:

Oscry1acctpET-Nde1: 5acta-CATATG-gactcct ccgacgtgcc gccgat 3

Oscry1acctpET-Xho1: 5acta-CTCGAG-GCCTTCTCTCCCAGTCCAGTTGCT 3

Oscry1bcctpET-Nde1: 5 Caac-CATATG-tcctcggag gttccaccaattg 3

Oscry1bcctpET-Eag1: 5Atta-CGGCCGa-CCAAACTGGGACTACGCCTC 3

Oscry2cctpET-Nde1: 5cgac-CATATGa-cagaatggat tcatcatcca tg 3

Oscry2cctpET-Xho1: 5 ctta-CTCGAG-TGCGGCTTTTCGTTGTCTTGA 3

2.3 融合蛋白的表達

將表達載體pET29a(+)-cry1a、pET29a(+)-cry1b、pET29a(+)-cry2轉化大腸桿菌BL21表達菌株[4],在平板(50 μg/mL Kan+)上篩選,挑取單克隆菌落,培養至對數生長期,測其OD值為0.5,加入IPTG誘導。4℃,5000rpm,離心10分鐘,收集菌體,棄上清。1 mL 菌液沉淀用100μL上樣緩沖液 (50mmol/Ltris-HCL(pH6.8)、 100mmol/L 二硫蘇糖醇、2%SDS (電泳級)0.1%溴酚藍、10%甘油) 重懸,煮沸4分鐘,離心后上清液,多克隆抗體在12%SDS-PAGE中分離檢測[5] 。

2.4融合蛋白的親和純化收集

100 mL 誘導表達后的菌體,離心收集沉淀。每克大腸桿菌中加3mlNPI-10(50mmol/L NaH2PO4、300mmol/L NaCl、10 mmol/L咪唑,pH8.0)或Buffer B(8mol/L尿素、100mmol/L NaH2PO4、100mmol/L Tris·Cl,pH8.0)重懸沉淀,低溫超聲破碎。每克菌加入8ul 50mmol/L苯甲基磺酰氟(PMSF)和8ul溶菌酶(10mg/ml),在4℃下20min內不時地進行攪拌。一邊繼續攪拌一邊在每克大腸桿菌中加入4mg去氧膽酸[6]。放置懸浮液于37℃并用玻棒不時地攪拌。當裂解物變粘稠時,在每克大腸桿菌中加入20ul 核酸酶(1mg/ml),室溫(25℃)貯藏直至裂解液不再粘稠。離心后,將上清載入Ni-NTA瓊脂糖親和層析柱,用5倍柱體積NPI-20(50mmol/L NaH2PO4、300mmol/L NaCl、20 mmol/L咪唑,pH8.0)或Buffer C(8mol/L尿素、100mmol/L NaH2PO4、100mmol/L Tris·Cl,pH6.3)沖洗3-5遍,再用NPI-250(50mmol/L NaH2PO4、300mmol/L NaCl、250 mmol/L咪唑,pH8.0)或Buffer E(8mol/L尿素、100mmol/L NaH2PO4、100mmol/L Tris·Cl,pH4.5)洗脫。最后收集洗脫組分,利用12%SDS-PAGE 進行分離檢測。

2.5多克隆抗體的制備

將100?g抗原/兔溶入1ml磷酸緩沖溶液中待用并加入1ml弗氏不完全佐劑溶液,劇烈震蕩使之充分乳化,用5ml注射器抽取該乳化液,接上25G針頭,排除注射器中的氣泡。將兔子放在平坦處,在4個不同的部位進行皮下注射,兩處在后背,兩處在大腿處[7]。在4個不同部位分別各注射約500?l抗原溶液。4-6周后再次注射抗原,并在注射后的7天-10天,每只兔子耳緣靜脈取血0.5~1 mL,分離抗血清。[8]

二、結果與分析

1.三個CRY基因PCR擴增

以日本晴基因組DNA為模板, Oscry1acctpET-Nde1、Oscry1acctpET-Xho1、Oscry1bcctpET-Nde1、Oscry1bcctpET-Eag1、Oscry2cctpET-Nde1、Oscry2cctpET-Xho1為引物進行PCR擴增,產物經1. 0%瓊脂糖凝膠電泳檢測為單一條帶,且大小與預測基因一致,用膠回收試劑盒回收目標條帶。

2.三個CRY基因表達載體的構建

質粒pET-29a(+)和目的片段酶切連接后,轉化大腸桿菌DH5α。挑選單克隆進行振蕩培養后,分別以Oscry1acctpET-Nde1、Oscry1acctpET-Xho1、Oscry1bcctpET-Nde1、Oscry1bcctpET-Eag1、Oscry2cctpET-Nde1、Oscry2cctpET-Xho1為引物進行PCR擴增,篩選正確的克隆子。提取PCR檢測陽性的克隆子重組質粒,以Nde1和 Xho1、Nde1和Eag1、Nde1和Xho1進行雙酶切驗證(圖1)。結果顯示,三個重組質粒的雙酶切產物經1. 0%瓊脂糖凝膠電泳檢測均有雙條帶,且大小與預期結果一致。重組質粒上海生工生物工程有限公司測序,測序結果與已報道序列一致。

3.重組質粒在大腸桿菌中的誘導表達

三個重組質粒轉化大腸桿菌BL21,轉化菌培養至細胞密度(OD600)為0.5-0.6,加入終濃度為0.7 mmol·L - 1 IPTG進行誘導培養3-4小時。誘導后的細菌細胞煮沸后12% SDS-PAGE電泳,顯示如圖2。誘導后融合蛋白大小均在20-30KD,連接6個His標簽。

4.融合蛋白的分離純化

利用Qiagen公司的Ni-NTA Sp in Column進行三個CRY融合蛋白的分離純化。用pH 7. 4的0. 05 mol·L - 1磷酸鹽緩沖液(含0 - 0. 5 mol·L - 1咪唑)的進行梯度洗脫[9],收集純化的重組CRY蛋白,經SDS-PAGE檢測 (圖3)。純化蛋白條帶單一,其純度高,可用于多克隆抗體的制備。

5.多克隆抗體特異性分析

將制備的多克隆抗體稀釋7500倍,以CRY1a、CRY1b、CRY2融合蛋白為抗原(100ng)進行包被,三種多克隆抗體分別作為一抗,ELISA檢測顯示三種多克隆抗體分別有反應,且有交叉反應。以CRY1a、CRY1b、CRY2融合蛋白作為抗原(100ng),用三種多克隆抗體(1:500,1:2000,1:2000)進行點雜交,發現融合蛋白只與對應多克隆抗體有反應,證明由此方法得出結果的多克隆抗體特異。

三、結論

本研究構建了pET-29a(+)-OsCRY1a、pET-29a(+)-OsCRY1b、pET-29a(+)-OsCRY2三個高效表達載體,并在大腸桿菌中His誘導融合蛋白表達,分別獲得大約20-30kD的CRY融合蛋白,并利用His標簽純化出特異的融合蛋白,免疫家兔后可獲得較為特異的多克隆抗體。本研究為隱花色素轉基因水稻的功能驗證奠定基礎,以期進一步深入了解水稻隱花色素基因各自的功能。

參考文獻

[1]李毓,莊春紅,莊偉建,等. OsCRY2基因抑制表達對水稻主要農藝性狀的影響[J].核農學報.2011,25(6):1094-1099.

[2]李毓,莊偉建,莊春紅,等.干擾隱花色素Cry1a與Cry1b基因的表達對水稻若干農藝性狀的影響[J].福建農林大學學報(自然科學版).2012,41(2) : 153-158.

[3]王關林,方宏筠主編.植物基因工程(第二版),2002年8月.北京:科學出版社.742-746.

[4]李立芹.煙草WRKY12基因的分離、表達與多克隆抗體的制備 [J].核農學報,2011,25(3):461-468.

[5]陳建飛,金先慶,丁雄輝,等.新耐藥基因HA117多克隆抗體的制備與鑒定 [J].第三軍醫大學學報,2011,33(11):1128-1131.

[6]單麗偉,唐如春,劉三陽,等.小麥種子過氧化物酶 WP1 基因的原核表達、 純化及多克隆抗體制備 [J].生物工程學報,2011,27(1):26-30

[7]CYP3A22 重組腺病毒載體構建與表達 [J].醫藥衛生,2016,05(29): 284-284.

[8]王雅英,郭麗,吳超,等. 人博卡病毒結構和非結構蛋白的原核表達 純化及多克隆抗體的制備 [J].中國生物制品學雜志,2011,24(5):497-501.

[9]俞俞,邢衛鋒,周茜,等. 擬南芥轉錄因子DYT1的原核表達與多克隆抗體制備 [J].西北植物學報,2011,31(2):0261-0266.

作者簡介:莊春紅,福建惠安,漢族,1988年2月出生,微生物學碩士研究生,主要研究方向微生物方向。

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