袁義杭 張鶴華 游韓莉 張凌云
(北京林業大學 省部共建森林培育與保護教育部重點實驗室,北京 100083)
轉錄因子是植物應對各種逆境的重要調控手段,通過與目標基因啟動子區的順式作用元件結合,調控靶基因的轉錄水平[1]。NAC轉錄因子是植物特有的一類轉錄因子,其名稱是矮牽牛(Petunia hybrida)的NAM基因、擬南芥(Arabidopsisthaliana)的ATAF1/2基因和CUC2基因的首字母縮寫[2]。NAC轉錄因子典型的結構模型由兩部分組成:存在于N端的高度保守的NAC結構域和存在于C端的高度多樣的轉錄調控區[3]。N端的NAC結構域由150-160個氨基酸殘基組成,分為A-E這5個亞結構域。其中,亞結構域C、D高度保守,含有核定位信號,與DNA結合[4]。C端的轉錄調控區由重復出現的簡單氨基酸組成,并富含谷氨酸、脯氨酸、絲氨酸、蘇氨酸等,具有激活或抑制轉錄的功能[5]。
NAC轉錄因子不僅參與植物生長發育的調控,還在植物應對環境脅迫時發揮了重要的作用[6]。擬南芥ORE1(ANAC092)與葉綠體發育關鍵基因GLK1/2互作,加速了葉綠體退化,促使葉片衰老[7]。酵母雙雜實驗證實香蕉(Musa acuminata)MaNAC1/2與乙烯信號組件的MaEIL5蛋白互作,推測MaNAC1/2基因通過乙烯信號通路參與香蕉果實的成熟調控[8]。擬南芥nac019突變體對高溫敏感,而過表達該基因增強了植物對高溫的抗性[9]。RhNAC3通過ABA依賴型途徑參與了月季(Rosa hybrida)對干旱脅迫的響應[10]。小麥(Triticum aestivum)的基因表達譜顯示TaNAC2響應干旱、鹽害、冷害和ABA處理,在擬南芥中過表達TaNAC2提高了植株對干旱、鹽和冷脅迫的耐受力[11]。
青杄(Picea wilsoniiMast.)為松科(Pinaceae)云杉屬(Picea)常綠喬木,是我國特有的木本針葉樹種,對干旱等惡劣環境具有非常強的適應能力,是進行抗逆基因研究的理想樹種。本文從轉錄組數據中獲得PwNAC42基因的cDNA全長序列,并對其進行生物信息學分析,預測理化性質及其蛋白結構等。采用實時熒光定量PCR檢測基因在青杄各組織中的表達量,以及在干旱、鹽害、冷脅迫和脫落酸(Abscisic Acid,ABA)處理下的表達模式。以期為研究木本植物中NAC轉錄因子的功能提供理論基礎,為林木遺傳育種提供分子依據。
青杄球果、種子、花粉采集于中國科學院植物研究所和北京植物園,三年生青杄的根、莖和針葉用于組織特異性表達實驗。青杄種子在4℃春化后,放置于濕潤濾紙上,待其萌發后移植到營養土:蛭石:珍珠巖為2:1:1(V/V/V)的培養基質中培養。溫室光周期為16 h日照,溫度為21℃,相對濕度55%-65%,生長到8周的青杄幼苗用于逆境響應實驗。植物材料采集后用液氮處理,保存于-80℃備用。
1.2.1 青杄PwNAC42基因編碼區的克隆 青杄cDNA文庫由Invitrogen(上海)公司利用Gateway技術構建[12]。以實驗室前期構建的均一化cDNA文庫為模板,設計引物NAC42-F和NAC42-R(表1)擴增PwNAC42的編碼區序列,膠回收后連接到pEASY-T1載體上,獲得PwNAC42單克隆。

表1 CDS克隆和RT-qPCR引物序列
1.2.2 生物信息學分析 將PwNAC42的cDNA序列導入DNAMAN軟件中,通過翻譯功能獲得其ORF序列及氨基酸序列。ProtParam在線工具(http://web.expasy.org/protparam/)用于預測蛋白分子質量、等電點、分子式及不穩定指數。ProtScale工具(http://web.expasy.org/protscale/)用于分析蛋白親/疏水性。NetPhos 3.1工具(http://www.cbs.dtu.dk/services/NetPhos/)用于預測蛋白可能存在的磷酸化位點。SignalP 4.1(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)用于預測蛋白是否存在信號肽結構域。TMHMM 2.0(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/)用于預測蛋白的跨膜區域。FoldUnfold工具(http://bioinfo.protres.ru/ogu/)用于預測蛋白無序化特征。GOR4在線工具(https://npsa-prabi.ibcp.fr/cgi-bin/npsa_automat.pl?page=npsa_gor4.html)用于預測蛋白二級結構,SWISS-MODEL在 線 工 具(https://www.swissmodel.expasy.org/)用于預測蛋白三級結構。
通過 NCBI網站(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)的BLAST功能搜索PwNAC42氨基酸序列的同源序列,利用ClustalX軟件進行多序列比對分析,并用MEGA5軟件選擇鄰位相連法(Neighbour-joining)構建系統發育樹(bootstap檢測次數為1 000)。
1.2.3 組織特異性表達 利用北京艾德萊(Aidlab)公司的EASYspin Plus植物RNA快速提取試劑盒提取青杄球果、種子、花粉、根、莖和針葉的RNA,通過天根生化科技(北京)有限公司的FastQuant cDNA第一鏈合成試劑盒反轉錄成單鏈cDNA。cDNA模版濃度調成一致之后通過天根公司的熒光定量PCR試劑盒(SYBR)在StepOnePlusTMReal-Time PCR System(ABI公司)上進行RT-qPCR實驗,檢測PwNAC42在不同組織中的相對表達量。用于熒光定量PCR的引物為NAC42-RT-F和NAC42-RT-R,以青杄EF1-α作為內參基因,序列見表1[13]。試驗設置3次重復。
1.2.4 逆境響應分析 逆境響應試驗的處理方法參考周燕妮等[14],選取長勢相對一致的八周大的青杄幼苗。幼苗置于4℃處理0、3、6、12 h;再置于吸水紙上處理0、3、6、12 h;用200 mmol/L NaCl溶液處理0、3、6、12 h;用100 μmol/L脫落酸處理0、3、6、12 h。對照組為正常生長的植株。試驗設置3次重復,處理后的青杄幼苗液氮速凍,于-80℃備用。
通過轉錄組數據獲得PwNAC42的cDNA序列全長,通過DNAMAN軟件推導其編碼的蛋白序列。PwNAC42基因cDNA序列全長共1 749 bp,其中編碼區1 140 bp,共編碼379個氨基酸。在91 bp處為起始密碼子ATG,1 228 bp處為終止密碼子TGA,1 741 bp處為Poly(A)9尾巴(圖1)。

圖1 PwNAC42全長cDNA的核苷酸序列及推導的氨基酸序列
2.2.1 功能結構域 用NCBI網站上的BLAST功能對PwNAC42蛋白進行功能域分析,結果(圖2-A)顯示PwNAC42蛋白有典型NAM(No apical meristem)結構域。
2.2.2 氨基酸組成及理化性質 ProtParam預測結果顯示,PwNAC42分子質量為42.92 kD,理論等電點為6.53,分子式為C1919H2934N522O582S9,其中絲氨酸(Ser)含量最高,為10.8%,其次為脯氨酸(Pro),含量為9.0%,并帶有負電殘基(Asp+Glu)48個,帶有正電氨基酸殘基(Arg+ Lys)46個,預測其半衰期約為30 h,不穩定指數46.78,預測蛋白不穩定。
PwNAC42蛋白疏水性分析結果顯示,76位精氨酸(Arg)分值最小,為-2.789,親水性最強,41位纈氨酸(Val)分值最大,為1.978,親水性最弱,預測蛋白為親水性蛋白(圖2-B)。磷酸化位點預測結果顯示,PwNAC42有31個絲氨酸磷酸化位點,有11個蘇氨酸磷酸化位點,有5個酪氨酸磷酸化位點(圖2-C)。SignalP 4.1預測發現該蛋白沒有信號肽結構域(結果未顯示)。蛋白跨膜結構域預測結果顯示,PwNAC42整條多肽鏈都位于細胞膜外,不存在跨膜結構域(圖2-D)。蛋白無序化特征預測結果顯 示,PwNAC42在 1-12、76-87、168-229、295-318處的氨基酸處于無序化區域(圖2-E)。

圖2 PwNAC42蛋白結構域及理化性質分析
2.2.3 蛋白質二級結構和三級結構 PwNAC42蛋白的二級結構預測結果(圖3-A)發現,α-螺旋含量為16.89%,延伸鏈為12.14%,無β-轉角結構,無規則卷曲結構含量達到70.98%。PwNAC42蛋白三級結構預測結果(圖3-B)顯示,蛋白無規則卷曲結構較多。
2.2.4 多序列比對和系統進化 在NCBI網站上用BLAST功能對PwNAC42進行同源蛋白搜索,尋找到下列物種的同源蛋白:黑云杉(Picea mariana,PmNAC,AAC32123.1)、北美云杉(Piceasitchensis,PsNAC,ABK26029.1)、 油 棕(Elaeis guineensis,EgNAC,XP_010922868.1)、海棗(Phoenix dactylifera,PdNAC,XP_008792531.1)、 鳳 梨(Ananas comosus,AcNAC,OAY70955.1)、 石 刁 柏(Asparagus officinalis,AoNAC,XP_020254522.1)、蓮(Nelumbo nucifera,NnNAC,XP_010257746.1)、水稻(Oryza sativa,OsNAC,BAA89798.1)、小果野蕉(Musa acuminata,MaNAC,XP_009394855.1)、小 蘭 嶼 蝴 蝶 蘭(Phalaenopsis equestris,PeNAC,XP_020578930.1)、 鐵 皮 石 斛(Dendrobiumcatenatum,DcNAC,XP_020673301.1)、玉米(Zea mays,ZmNAC,ADK25055.1)、短花藥野生稻(Oryza brachyantha,ObNAC,XP_015693359.1)、 擬 南 芥(AtNAC,AT1G01720.1)。利用 ClustalX工具進行多序列比對,發現PwNAC42與其它物種的NACs在N端相似性較高,在C端則僅與同為云杉屬的黑云杉和北美云杉相似性較高(圖4-A)。用MEGA5鄰接法構建系統進化樹,結果(圖4-B)顯示,PwNAC42與云杉屬NACs聚為一類,擬南芥和其它植物則為另兩類。

圖3 PwNAC42蛋白二級結構及三級結構分析
PwNAC42在各個組織器官中均有表達,但主要在球果中表達,球果中的表達量約為花粉中表達 量 的 41倍( 圖 5)。PwNAC42對 NaCl、 干 旱、4℃、ABA均有響應。200 mmol/L NaCl溶液處理下,PwNAC42表達量隨著時間增加顯著,在12 h時表達水平達到了對照組的88倍左右(圖6-A)。在干旱條件下,PwNAC42表達量變化顯著,6 h前呈現上升的趨勢,6 h和12 h的表達量則沒有顯著差異(圖6-B)。4℃處理下,PwNAC42表達量呈現上升的趨勢,在處理12 h時基因的表達水平達到了對照組表達量的18倍(圖6-C)。ABA處理也顯著提高了PwNAC42的表達量,表達量隨時間持續上升,表達水平在12 h時約為對照組的14倍(圖6-D)。
NAC轉錄因子最早從矮牽牛中發現,被命名為NAM[15],之后越來越多的NAC轉錄因子被分離鑒定出來。全基因組分析發現,在擬南芥、水稻、煙 草(Nicotiana tabacum)、 大 豆(Glycine max)、楊樹(Populus trichocarpa)和中國白菜(Brassica campestris)等植物中分別有至少117、151、152、152、163和 188個 NAC 轉錄因子家族成員[16-17]。本試驗從青杄中克隆得到PwNAC42基因,通過BLAST工具顯示,PwNAC42的N端存在典型的NAM結構域。多序列比對發現,PwNAC42與其它物種的NACs在N端相似性較高,而C端序列僅與云杉屬NACs的相似性較高,與其它草本、木本植物相似性較低(圖4)。從而推測PwNAC42的C端序列在進化上較為保守。
前人的研究表明,NAC轉錄因子參與了植物果實成熟的調控過程。香蕉中的MaNAC1/2通過與乙烯信號組件相互作用,可能參與了香蕉果實的成熟調控[8]。番茄(Solanum lycopersicum)SlNAC3基因在果實的綠熟期和破色期中表達量較高,而干涉該基因表達后,類胡蘿卜素的合成受到抑制,果實成熟的進程明顯延遲[18]。本研究的組織特異性表達試驗發現,青杄PwNAC42主要在球果中表達,推測其可能與球果成熟有關,但具體調控植物果實成熟的途徑仍有待研究。

圖4 PwNAC42蛋白多序列比對(A)及系統進化樹分析(B)

圖5 PwNAC42在青杄各組織中的表達量

圖6 PwNAC42在逆境處理下表達量的變化
以往的研究發現,NAC轉錄因子在模式植物擬南芥和小麥、水稻、玉米、番茄等作物類植物響應逆境脅迫中發揮了重要功能[9、11、19-21]。本研究結果顯示,鹽脅迫、冷脅迫及干旱脅迫處理后PwNAC42表達量隨時間變化而明顯上升(圖6),推測其可能在植物響應這些逆境的過程中發揮了作用。ABA信號轉導途徑是植物響應逆境脅迫的重要途徑之一,NAC轉錄因子既依賴于ABA途徑發揮作用,也獨立于ABA信號途徑。Zhu等[21]研究了番茄中的SlNAC4基因,發現該基因的沉默能提高植物對鹽和干旱的抗性,但基因的表達受到MeJA(Methyl Jasmonate)而不是ABA的誘導,從而推測SlNAC4可能通過不依賴ABA的途徑參與植物對逆境的響應。前人對陸地棉(Gossypium hirsutum)中NACs進行了研究,發現GhNAC7響應乙烯、ABA、干旱、鹽分、低溫等多種處理,其啟動子區存在ABREs(ABA response cis-element)元件,進而推斷GhNAC7通過ABA信號通路參與了陸地棉對逆境的響應[22]。在本實驗中,外源施加ABA時PwNAC42表達量顯著上升,因此推測PwNAC42可能依賴于ABA信號通路響應環境脅迫,但具體的調控機制仍有待研究。
從青杄cDNA文庫中克隆了一個NAC家族的轉錄因子PwNAC42。組織特異性表達結果表明PwNAC42主要在球果中表達。逆境響應實驗結果發現,該基因響應多種非生物脅迫處理包括NaCl、干旱、低溫及ABA,說明其參與了青杄對逆境脅迫的響應。
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