王光函,孫小玲,鄒桂欣,尤獻民,辛旭陽,劉 晶,李國信**
(1.遼寧省中醫藥研究院 沈陽 110034;2.遼寧省藥品檢驗檢測院 沈陽 110023)
射干,始載于《神農本草經》[1],其味苦、辛,性寒,微毒,歸肺、肝經。具有祛痰利咽、消癖散結、清熱解毒、消腫止痛的功效,臨床常用于治療感受風熱或痰熱壅盛引起的咽喉腫痛、痰涎壅盛,及咳嗽氣喘等癥,是中醫治療喉痹咽痛之要藥。綜合分析古典醫籍及現代文獻[2-6],確定射干臨床上用于治療發熱、惡寒、咳嗽、咯痰、口渴、胸痛或悶、氣短等癥狀,癥常見于急性氣管-支氣管炎、感染后咳嗽(PIC)、慢性阻塞性肺疾病急性加重、支氣管哮喘合并感染等氣道感染性疾病。
呼吸道合胞病毒(RSV)屬副粘液病毒科,肺炎病毒屬,是PIC發病及感染的重要感染病原之一,也是醫院交叉感染的主要病原。現代醫學[7]認為病毒感染導致了氣道變應性炎癥、氣道上皮損傷、氣道高反應等。本研究基于射干臨床病種篩選試驗結果,確定了感染后咳嗽為射干臨床治療病種后,擬采用RSV感染豚鼠咳嗽模型[8],通過對感染后豚鼠肺組織形態學影響,肺泡灌洗液中白細胞總數及分類計數變化,細胞因子白介素-4(IL-4)、干擾素-γ(IFN-γ)、白三烯-4(LTC4)表達影響,來研究射干提取物對RSV感染后咳嗽模型抗炎作用。
雄性純白SPF級豚鼠30只,250-300 g(北京實驗動物中心);呼吸道合胞病毒(武漢病毒研究所贈予);Hep-2細胞(江蘇齊氏生物科技有限公司)。
射干提取物(實驗室自制);DMEM高糖培養基、胎牛血清(CORNING);胰酶(碧云天生物技術有限公司);枸櫞酸(沈陽市試劑一廠);IFN-γ、IL-4、LTC4 ELISA試劑盒(南京建成生物工程研究所有限公司);ELX800型酶標儀(BioTek,美國);石蠟切片機(萊卡);BX53顯微鏡(奧林巴斯)。
射干藥材1 kg,加70%乙醇提取2次,合并提取液,濃縮至無醇味,用乙醇調整至含醇量為30%,上于D101大孔吸附柱上,用3倍量30%乙醇除雜,繼用80%乙醇洗脫,收集洗脫液,干燥至干,即得(每1 g提取物含20.7 g射干藥材)。
Hep-2細胞使用DMEM培養液(含有10%胎牛血清,100 U·mL-1青霉素,100 g·L-1鏈霉素),37℃,5%CO2培養箱中常規培養。生長狀態良好的細胞每2-3天傳代。
Hep-2細胞在培養瓶中長至70-80%融合,吸出培養液,PBS洗2次,加入1 mL無血清培養液,取病毒懸液100μL接種于細胞上,每15 min搖動1次,吸附2 h后倒出病毒液,加入含5%胎牛血清培養液,于第2-3天開始出現細胞病變(CPE),待病變達60-70%時收獲病毒,將細胞反復凍融2-3次后,1 000 r·min-1,離心5 min,去除細胞碎片,收集上清分裝后,-80℃保存。
取對數生長期Hep-2細胞接種96孔板(1×104cells/well),5%CO2、37℃培養箱培養24 h,細胞貼壁并形成均勻單層時吸棄培養液。梯度稀釋病毒至10-3-10-(8病毒液用維持液10倍系列稀釋)6個梯度,每孔加100 μL,每列一個稀釋度,共6列。其余6列加入培養液,作空白對照。37℃、5%CO2吸附2 h,吸棄病毒液,每孔加維持液100 μL,置培養箱中繼續培養,逐日觀察病變程度并記錄。以最高稀釋度不再出現新病變時為終點,結果只記錄最后一天病變情況即可。用Reed-Muench公式計算病毒半數細胞感染量(TCID50)。本次實驗病毒半數細胞感染量(TCID50)為7×105TCID50。
健康豚鼠,常規飼養,一周后開始正式試驗。試驗分空白組,RSV感染模型組、射干提取物給藥組(600 mg·kg-1·日-1),每組10只。
RSV感染模型制備:除空白組外,將其余各組豚鼠放入自制450 mm×450 mm×900 mm熏籠中,每5只一籠,以鋸末50 g+10支香煙點燃煙熏,每次30 min,每日1次,連續10天,自由進食吸水,從第5天開始將豚鼠乙醚淺麻后鼻腔滴注100TCID50的RSV懸液100μL(每天滴鼻2次,早晚各1次,空白組給予相同劑量的5%DMEM培養液),連續給藥1周。滴入量以體重1μL·g-1計算。給藥組自第5天開始給藥。
于末次給藥45 min時,將動物置于5 L大燒杯中,底部加少量墊料,燒杯口用保鮮膜封,以4.5 mol·L-1枸櫞酸溶液霧化吸入激發,每次30 s,觀察5 min內豚鼠咳嗽次數。
將豚鼠用2%戊巴比妥(25 mg·kg-1)麻醉后仰臥固定于操作臺,打開胸腔,暴露氣管和雙肺,結扎右主支氣管,在隆突上用套管針穿刺至左肺,氣管上段剪開插入灌流管,將預溫至37℃的生理鹽水經氣管插管注入肺內,每次灌入2-3 mL,停留30 s,回吸液體,反復3次,灌洗液回收率為70-85%。2 000 r·min-1,4℃離心10 min,上清液分裝保存于-20℃冰箱,備用。細胞沉淀用磷酸鹽緩沖液(PBS)溶解,在全自動模塊式血液體液分析儀上測定白細胞總數、淋巴細胞計數、單核細胞計數及中性粒細胞計數。
按照試劑盒要求測定各組豚鼠支氣管肺泡灌洗液中IL-4、IFN-γ、LTC4的含量。
結扎右主支氣管,采用4%多聚甲醛固定右肺中葉,常規蘇木素-伊紅(HE)染色,光鏡觀察肺組織形態結構。
數據處理采用SPSS18.0統計軟件,結果Xˉ±S表示,采用單因素方差分析,P<0.05表示有顯著性差異,P<0.01有極顯著差異。
模型組5 min內咳嗽次數顯著高于空白組,提示造模成功;而咳嗽潛伏期無顯著差異。給藥組中,射干提取物對模型動物5 min內咳嗽有顯著抑制作用。結果見表1。
表1 射干提取物對枸櫞酸引起咳嗽的影響結果(ˉ±S,n=10)

表1 射干提取物對枸櫞酸引起咳嗽的影響結果(ˉ±S,n=10)
注:與空白組比較,**P<0.01;與模型組比較,#P<0.05。

圖1 射干提取物對RSV感染豚鼠BALF中IL-4、IFN-γ表達的影響

圖2 射干提取物對RSV感染豚鼠肺泡灌洗液中LTC4表達的影響
模型BALF中白細胞總數、淋巴細胞、單核細胞和中性粒細胞明顯高于空白組(P<0.05),說明模型建立成功。給藥組與模型組相比,BALF中白細胞總數、淋巴細胞、單核細胞和中性粒細胞顯著降低(P<0.05)。見表2。
RSV感染豚鼠后,模型組中IL-4水平明顯高于空白組(P<0.05),而IFN-γ水平明顯低于空白組(P<0.05)。給藥后,豚鼠BALF中IL-4水平明顯降低(P<0.05),IFN-γ水平明顯增高(P<0.05)結果見圖1、表3。
RSV感染豚鼠后,模型組中LTC4水平明顯高于空白組(P<0.05),給藥后LTC4水平明顯低于模型組(P<0.05)。結果見圖2、表3。
RSV感染豚鼠后,模型組與空白組相比,可見肺泡壁增厚,有炎性細胞出現,形態變形,并有充血。給藥組所有癥狀均有減輕。
《普濟方》數據庫管理系統[9]可以對任何一味中藥進行跨病種檢索,檢索結果可得此藥復方配伍用于所有病證的構成、各病證配伍此藥頻數。基于《普濟方》數據庫古方配伍應用考證結果表明,含射干復方所治疾病以喉痹咽痛、咳嗽、咳喘、咽干、痰熱壅盛諸病與2015年版《藥典》[10]一部所記功能主治完全吻合。現代文獻學研究表明,射干具有抗炎、抗病毒、抗菌、抗氧化等藥理作用。結合傳統中醫藥理論研究結果,考慮急性氣管-支氣管炎(風邪犯肺證)及感染后咳嗽(余熱未清證)在炎性表現方面一急一慢,發病方面風熱犯肺表現在前期,后期入里化熱、余熱未清,頗具代表性,故選擇此二證為射干臨床應用試驗病征。前期臨床研究結果表明:射干清咳片組與對照組(肺寧片組)治療后比較雖然沒有統計學意義,但從日間、夜間咳嗽、咯痰、痰量評分數值變化可看出,射干清咳片改善明顯,證明其治療感染后咳嗽及急性氣管-支氣管炎臨床療效確切。

表2 射干提取物對RSV感染豚鼠肺泡灌洗液中細胞學的影響

表3 射干提取物對RSV感染豚鼠BALF中LTC4、IL-4、IFN-γ表達的影響

圖3 射干提取物對RSV感染豚鼠肺組織病理切片圖
根據臨床兩個證型的試驗結論,結合感染后咳嗽在患病人群中更為常見,患者量較大,患者長期咳嗽不愈,易給患者造成很大心理負擔,精神上形成緊張,嚴重影響患者生活質量,反復檢查易造成醫療成本過大,且從疾病角度出發感染后咳嗽在臨床上沒有更為有效的治療手段,而急性氣管-支氣管炎目前臨床治療藥品頗為豐富如:抗感解毒沖劑、止咳平喘的川貝批把膏等,所以我們首先選擇了感染后咳嗽作為射干作用機制研究的動物模型。
感冒后咳嗽絕大部分由呼吸道病毒感染后引起,又稱為感染后咳嗽,目前有關感染后咳嗽的機制知之甚少,缺乏滿意的治療[11]。感染后咳嗽雖然最終大多可以自愈,但過程中可能會嚴重影響患者的工作和生活,因此,進行病毒感染引起的咳嗽,尤其是感染后咳嗽發病機制的探討將具有重要的意義。現代醫學認為感冒后咳嗽的發病與病毒感染后所產生的變應性炎癥、氣道上皮損傷、氣道神經末梢暴露、神經源性炎癥反應及其導致的氣道高反應有關[12,13]。
呼吸道變應性炎癥產生與Th1/Th2類細胞因子失衡有關,Th1/Th2比例降低是呼吸道變應性炎癥發生主要因素,且Th2類細胞因子優勢表達是其形成及進展的關鍵機制[14]。Th1細胞分泌的細胞因子IFN-γ及Th2細胞分泌的細胞因子IL-4與呼吸道變應性炎性反應關系密切,IFN-γ能促進細胞表達MHC-Ⅰ類和MHC-Ⅱ類分子,并抑制Th2細胞的增殖;直接通過氣道給予IFN-γ,可抑制抗原激發小鼠特應性氣道炎癥。白三烯(LTS)是花生四稀酸(Aracliidonic Acid,AA)經5-脂氧酶途徑合成代謝產生并具有多種生物活性的脂肪酸,包括LTB4和LTC4等,LTS是引起和加重氣道炎癥的重要炎癥介質,從而導致氣道上皮損傷,使咳嗽感受器暴露過多,引起咳嗽敏感性增高[15]。因此對肺泡灌洗液中的IL-4、IFN-γ及LTC4進行測定。
實驗結果表明,采用RSV感染豚鼠模型,BALF細胞學及肺組織病理學檢查支持氣道炎癥改變,表明感染后咳嗽模型成功。射干提取物給藥組能減少豚鼠咳嗽次數,降低BALF中IL-4含量,升高IFN-γ含量,使IL-4/IFN-γ的比值降低,調節Th1/Th2免疫失衡;并且射干提取物能降低BALF中LTC4水平,顯著減少炎性細胞數量,抑制炎性細胞浸潤,說明射干提取物可能通過調節Th1/Th2平衡、抑制LTC4表達而抑制炎性介質的釋放和聚集,從而減輕氣道炎癥。
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