蔣海濤,王 紅
(遵義醫學院附屬醫院消化內科,貴州遵義 563003)
結直腸癌(CRC)是胃腸道最常見的惡性腫瘤之一,由于飲食結構與生活方式的改變,近年來其發病率呈明顯上升趨勢,高居惡性腫瘤第3位[1-2]。目前研究認為Notch信號通路及腫瘤干細胞(CSCs)在CRC的發生、發展中起至關重要的作用。CSCs是一類具有干細胞特性的細胞亞群,能產生異質性腫瘤細胞;CD133表達于多種腫瘤干細胞表面,是目前研究較為深入的CRC干細胞標志物之一。Notch信號通路在細胞的增殖、分化、凋亡中發揮著至關重要的作用,與CRC密切相關。研究表明在CRC中,Notch信號的異常表達可促使腫瘤干細胞發展為CRC,并且在促進CRC干細胞的自我更新、分化、選擇性吸收及分泌過程也起到重要作用。目前關于Notch信號通路與CD133在CRC中的研究很少,本研究利用免疫組織化學的方法檢測50份CRC標本中Notch3、DLL1、CD133的表達情況,結合患者臨床病理特征,旨在分析在CRC發生、發展的過程中上述指標的可能作用機制,探討其與CRC浸潤、轉移的關系。
1.1一般資料 選取本院病理科2013-2015年手術切除后存檔的50份結直腸腺癌標本,30例腺瘤標本(腺瘤組),并取12份正常結直腸黏膜標本(正常組)。每份標本臨床、病理資料完整,所有患者術前均未行任何抗腫瘤治療,術后病理類型均經病理診斷證實。結直腸腺癌標本中,結腸腺癌30份,直腸腺癌20份,其來源患者中男25例,女25例,年齡26~77歲,中位年齡60歲,腫瘤直徑大于或等于5 cm 35例,<5 cm 15例;高分化腺癌13例,中分化腺癌32例,低分化腺癌5例;19例伴淋巴結轉移,31例不伴淋巴結轉移;Dukes分級,A/B期標本28例,C/D期標本22例;浸潤深度為T1/T2期標本8例,T3/T4期標本42例。
1.2主要試劑 兔抗人多克隆抗體Notch3及DLL1購自美國Abcam公司,兔抗人CD133多克隆抗體購自武漢博士德生物有限公司,DAB顯色試劑盒購自上海基因科技有限公司。
1.3免疫組織化學法 所有蠟塊標本連續切片,厚度約4 μm,經二甲苯室溫下脫蠟、梯度乙醇水化、檸檬酸鈉緩沖液高壓修復等步驟后,使用免疫組織化學SP法染色,DAB顯色,具體操作步驟按試劑盒說明書進行。所用抗體濃度分別為:兔抗人Notch3多克隆抗體(1∶400),兔抗人DLL1多克隆抗體(1∶400),兔抗人CD133多克隆抗體(1∶200)。已知陽性切片作為陽性對照,PBS代替一抗作陰性對照。
1.4結果判斷 按照WOLFF等[3]及楊軍等[4]推薦標準,首先在低倍鏡下(放大100倍)閱覽整張切片,察看目的細胞(腺癌/腺瘤/正常結直腸細胞)中陽性細胞的分布情況,摒除背景著色及非特異染色,選擇高表達區域高倍鏡下(放大400倍)進一步觀察,計數5個高倍視野中細胞染色強度及陽性細胞數所占同類型細胞的百分比,根據染色結果,將染色強度分為4級。陰性:即無著色;弱陽性:小于10%的細胞出現不同程度的細胞質或細胞膜著色;陽性:10%~30%的細胞出現深棕褐色的細胞質或細胞膜著色,或小于或等于70%的細胞出現弱/中等強度的細胞質或細胞膜著色;強陽性:大于30%的細胞呈現強棕褐色的細胞質或細胞膜著色,或大于70%的細胞呈中等強度細胞質或細胞膜著色。
1.5統計學處理 使用SPSS17.0軟件進行統計學分析,計數資料用百分率表示,采用χ2檢驗,各指標間相關性分析采用Spearman相關分析法,以P<0.05為差異有統計學意義。
2.1Notch3、DLL1、CD133的表達情況 Notch3蛋白主要表達于細胞質,呈棕黃色顆粒;在正常組、腺瘤組、腺癌組的陽性表達率分別為8.3%(1/12)、26.7%(8/30)、64.0%(32/50),見圖1、表1。Notch3在腺癌組的陽性表達率顯著高于腺瘤組和正常組,差異有統計學意義(P<0.05);在腺瘤組與正常組的表達,差異無統計學意義(P>0.05)。DLL1蛋白主要表達于細胞膜和細胞質,呈棕黃色顆粒;在正常組、腺瘤組、腺癌組的陽性表達率分別為16.7%(2/12)、33.3%(10/30)、68.0%(34/50),見圖2、表1。DLL1在腺癌組的陽性表達率顯著高腺瘤組和正常組,差異有統計學意義(P<0.05);在腺瘤組與正常組的表達,差異無統計學意義(P>0.05)。CD133蛋白主要表達于細胞質和細胞膜,亦呈棕黃色顆粒;在正常組、腺瘤組、腺癌組陽性表達率分別為8.3%(1/12)、36.7%(11/30)、54.0%(27/50),見圖3、表1。CD133在腺癌組的陽性表達率亦顯著高于腺瘤組和正常組,差異有統計學意義(P<0.05);在腺瘤組及正常組的表達差異無統計學意義(P>0.05)。
2.2Notch3、DLL1、CD133蛋白的表達與結直腸腺癌患者臨床病理特征的關系 Notch3的表達與患者年齡、性別、腫瘤發生部位、分化程度、浸潤深度、腫瘤大小無關(P>0.05);分別與Dukes分期和淋巴結轉移有關(P<0.05);伴有淋巴結轉移組陽性表達率明顯高于無淋巴結轉移組,Dukes分期越高陽性率越高。DLL1的表達與腫瘤Dukes分期、浸潤深度、淋巴結轉移情況有關(P<0.05),腫瘤的Dukes分期越高、浸潤深度越深陽性率越高,伴有淋巴結轉移組陽性表達率明顯高于無淋巴結轉移組;與患者年齡、性別、腫瘤發生部位、分化程度及腫瘤大小無關(P>0.05)。CD133的表達與腫瘤的淋巴結轉移情況有關(P<0.05),伴淋巴結轉移組陽性率顯著高于不伴淋巴結轉移組;而與年齡、分化程度等其他臨床病理資料無關(P>0.05),見表2。

A:正常組;B:腺瘤組;C:腺癌組
圖1 Notch在3組中的表達(×200)

A:正常組;B:腺瘤組;C:腺癌組
圖2 DLL1在3組中的表達(×200)

A:正常組;B:腺瘤組;C:腺癌組

圖3 CD133在3組中的表達(×200)
2.3Notch3、DLL1、CD133表達的相關性 在Notch3蛋白陽性表達的32份結直腸腺癌組織標本中,CD133蛋白的陽性表達率為85.2%(23/27);在Notch3蛋白陰性表達的18份結直腸腺癌組織標本中,CD133蛋白的陽性表達率為22.2%(4/18);Spearman相關分析法統計分析顯示,在結直腸癌中Notch3與CD133表達呈正相關關系(r=0.478,P=0.000)。Notch3與DLL1及DLL1與CD133表達均無明顯相關性,見表3。

表2 Notch3、DLL1、CD133蛋白表達與結直腸腺癌患者臨床病理特征的關系(n)

續表2 Notch3、DLL1、CD133蛋白表達與結直腸腺癌患者臨床病理特征的關系(n)

表3 Notch3與CD133蛋白在結直腸腺癌中表達的相關性
Notch信號通路和腫瘤干細胞是目前腫瘤研究的熱點。Notch信號通路主要由5種Notch配體、4種Notch受體及轉錄因子CSL構成,5種Notch配體分別為DLL1、DLL3、DLL4以及Jagged1和Jagged2,4種Notch受體分別為Notch1、Notch2、Notch3及Notch4。經典的Notch信號轉導活化需經歷3次裂解(S1、S2、S3),產生Notch的活化片段NIC,NIC進入細胞核內并與轉錄因子CSL結合,共同形成轉錄活化復合體,從而調控下游基因的轉錄與表達。
Notch通路與多種實體腫瘤密切相關,大量研究表明,在CRC中Notch基因常出現異常表達。Notch3是Notch通路的受體之一,定位于19q12染色體;DLL1基因定位于6q27染色體,是Notch通路的配體之一。目前Notch3的研究主要集中在肺癌和卵巢癌,DLL1主要在神經系統疾病方面研究較多,在CRC中的研究均較少。研究指出激活Notch3信號通路可促進CRC細胞的生長及遷移[5-6],而miR-206通過下調Notch3基因的表達使腫瘤的增殖與轉移受到抑制[7]。本研究發現Notch3在正常結直腸黏膜組、腺瘤組、腺癌組中的表達呈逐漸遞增趨勢,表明高表達的Notch3與結直腸癌的發生、發展密切相關,且Notch3的表達與Dukes分期及淋巴結轉移相關,提示Notch3與腫瘤的轉移有關,與文獻報道相符。DLL1在結腸癌、肺癌、肝癌、乳腺癌、胰腺癌中均高表達,在結腸癌中DLL1的陽性表達率約58%[8];而本課題組前期的研究也發現,在結腸癌細胞HT-29中DLL1蛋白高表達,加用Notch信號通路阻斷劑DAPT作用于該細胞后,其陽性強度和陽性表達率均明顯下降[9],進一步證實了DLL1的表達與CRC密切相關。本試驗中DLL1在正常組織、腺瘤、腺癌中表達率逐漸升高,在腺癌中陽性表達率達68.0%,與既往文獻報道相符,結合臨床病理特征發現,DLL1的表達與腫瘤浸潤深度、淋巴結轉移及Dukes分期有關,提示其可能參與了CRC的發展及轉移。對Notch3和DLL1的相關性分析發現,二者在結直腸腺癌中的表達并無明顯相關性,提示在結直腸腺癌中Notch3和DLL1基因可能扮演致癌/促癌基因的角色,同時二者又互相獨立,并無相互作用。通過圖1及圖2可以發現,與正常結直腸腺管比較,結直腸腺癌的腺管明顯增粗,且細胞核排列紊亂、大小不一,提示Notch3和DLL1的高表達可能導致正常結直腸腺上皮過度增殖,并進一步導致CRC的發生。此外結合患者臨床病理資料分析,Notch3和DLL1的異常表達可能與結直腸腺癌的發展、轉移存在著某種關系,將有望成為新的腫瘤標記物推測結直腸癌患者的預后。
腫瘤干細胞是目前研究的熱點,腫瘤干細胞學說認為,CSCs是腫瘤組織中具有干細胞特性的一類細胞亞群,能產生異質性腫瘤細胞,不僅具有自我更新與無限增殖能力,還具有多向分化潛能,是惡性腫瘤的起源。CD133表達于多種腫瘤干細胞表面,是目前研究較為深入的結直腸癌干細胞標志物之一。與癌旁正常組織相比,CD133在CRC中的表達明顯升高[10],且與淋巴結轉移相關[11],與本研究結果一致。HONG等[12]研究指出,CD133的表達與CRC患者臨床病理分期及預后均密切相關。本研究發現,CD133在CRC組織中的陽性表達率明顯高于腺瘤組及正常組,結合臨床病理資料進一步分析,CD133在CRC中的表達與淋巴結轉移有關,伴有淋巴結轉移組陽性表達率顯著高于無淋巴結轉移組,說明CD133蛋白表達陽性的患者更易出現淋巴結轉移,與文獻報道相符。
Notch通路與CSCs關系密切,Notch信號在維持CSCs特性中發揮關鍵作用,Notch信號通路激活后有利于CSCs的自我更新和存活,刺激CSCs增殖,最終形成腫瘤。在髓母細胞瘤中,阻斷Notch信號通路后,CD133表達陽性的細胞數量降低了5倍[13]。在CRC中,眾多腫瘤干細胞標志物(如:CD133、CD44、LGR5、Hes1、MUSASHI-1等)的表達與Notch信號通路明顯相關[14-15]。APOSTOLOU等[16]發現Notch受體在結腸癌干細胞中高表達,敲除不同的Notch受體對干細胞轉錄因子(Sox2,Oct4,Nanog)、CD44、Met原癌基因及二肽基肽酶-4均有不同程度的影響。本研究中,Notch3和CD133在CRC組織中均高表達,相關性分析顯示,二者在結直腸腺癌組織中的表達呈明顯正相關關系(r=0.478,P=0.000),提示Notch3和CD133基因之間也許存在某種關聯,Notch3信號通路是否通過對CSCs的調控而影響CRC的發生、發展,值得進一步研究。
綜上所述,Notch3、DLL1、CD133的異常表達參與了CRC的發生、發展過程,了解Notch3、DLL1、CD133蛋白的表達情況,對于評估CRC的發展及預后具有重要意義。Notch3與CD133的表達存在正相關關系,提示CRC的形成可能是由于Notch信號通路對CSCs的調控失調所致,進一步深入研究對闡明CRC的發生機制及靶向治療具有重要意義。
[1]GRIZZI F,CELESTI G,BASSO G,et al.Tumor budding as a potential histopathological biomarker in colorectal cancer:hype or hope?[J].World J Gastroenterol,2012,18(45):6532-6536.
[2]顧晉.結直腸癌規范外科治療的問題與對策[J].中華消化外科雜志,2015,14(6):441-444.
[3]WOLFF A C,HAMMOND M E,HICKS D G,et al.Recommendations for human epidermal growth factor receptor 2 testing in breast cancer:American Society of Clinical Oncology/College of American Pathologists clinical practice guideline update[J].J Clin Oncol,2013,31(31):3997-4013.
[4]楊軍,康安靜,蘇寶山,等.免疫組織化學檢測結果判讀進展[J/CD].中華臨床醫師雜志(電子版),2014,8(20):3699-3703.
[5]SERAFIN V,PERSANO L,MOSERLE L,et al.Notch3 signalling promotes tumour growth in colorectal cancer[J].J Pathol,2011,224(4):448-460.
[6]FURUKAWA S,KAWASAKI Y,MIYAMOTO M,et al.The miR-1-NOTCH3-Asef pathway is important for colorectal tumor cell migration[J].PLoS One,2013,8(11):e80609.
[7]WANG X W,XI X Q,WU J,et al.MicroRNA-206 attenuates tumor proliferation and migration involving the downregulation of NOTCH3 in colorectal cancer[J].Oncol Rep,2015,33(3):1402-1410.
[8]YANAI H,NAKAMURA K,HIJIOKA S,et al.Dlk-1,a cell surface antigen on foetal hepatic stem/progenitor cells,is expressed in hepatocellular,colon,pancreas and breast carcinomas at a high frequency[J].J Biochem,2010,148(1):85-92.
[9]趙小芳.DAPT對結腸癌細胞株HT-29中Notch4、DLL1及ALDH1的影響[D].遵義:遵義醫學院,2015.
[10]NOSRATI A,NAGHSHVAR F,MALEKI I,et al.Cancer stem cells CD133 and CD24 in colorectal cancers in Northern Iran[J].Gastroenterol Hepatol Bed Bench,2016,9(2):132-139.
[11]SILINSKY J,GRIMES C,DRISCOLL T,et al.CD133+and CXCR4+ colon cancer cells as a marker for lymph node metastasis[J].J Surg Res,2013,185(1):113-118.
[12]HONG I,HONG S W,CHANG Y G,et al.Expression of the cancer stem cell markers CD44 and CD133 in colorectal cancer:an immunohistochemical staining analysis[J].Ann Coloproctol,2015,31(3):84-91.
[13]FAN X,MATSUI W,KHAKI L,et al.Notch pathway inhibition depletes stem-like cells and blocks engraftment in embryonal brain tumors[J].Cancer Res,2006,66(15):7445-7452.
[14]HIRSCH D,BARKER N,MCNEIL N,et al.LGR5 positivity defines stem-like cells in colorectal cancer[J].Carcinogenesis,2014,35(4):849-858.
[15]PASTO A,SERAFIN V,PILOTTO G,et al.NOTCH3 signaling regulates MUSASHI-1 expression in metastatic colorectal cancer cells[J].Cancer Res,2014,74(7):2106-2118.
[16]APOSTOLOU P,TOLOUDI M,IOANNOU E,et al.Study of the interaction among Notch pathway receptors,correlation with stemness,as well as their interaction with CD44,dipeptidyl peptidase-Ⅳ,hepatocyte growth factor receptor and the SETMAR transferase,in colon cancer stem cells[J].J Recept Signal Transduct Res,2013,33(6):353-358.