武玉婷 石嶺 張建中 賈建宇 云利俊
摘要 [目的]建立光葉山楂高效再生體系。[方法]以光葉山楂莖尖為外植體,通過植物生長調節劑和培養基配比,建立光葉山楂高效再生體系。[結果]光葉山楂初代培養最適宜的培養基配方為1/4MS+ BA 0.1 mg/L;愈傷組織形成最適培養基配方為1/2MS+NAA 0.1 mg/L+CPPU 0.01 mg/L;繼代培養最適宜的培養基配方為MS+BA1.0 mg/L和MS+BA1.5 mg/L+IAA0.1 mg/L;生根培養最適培養基為1/4MS+IAA1.0 mg/L;100 mg/L BA浸蘸嫩莖基部30 min,外植體的生根效果最好。[結論]該研究可為光葉山楂的開發利用提供參考。
關鍵詞 光葉山楂;再生體系;培養基;植物生長調節劑
中圖分類號 S661.5 文獻標識碼 A 文章編號 0517-6611(2018)18-0079-04
Establishment of Efficient Regeneration System of Crataegus dahurica Koehne
WU Yuting1,SHI Ling1,ZHANG Jianzhong2 et al
(1.College of Agronomy,Inner Mongolia Agricultural University,Hohhot,Inner Mongolia 010019;2.Hohhot Science and Technology Bureau,Hohhot,Inner Mongolia 010000)
Abstract [Objective]To establish the efficient regeneration system of Crataegus dahurica Koehne.[Method]This test used stem tip of C. dahurica Koehne as explant to establish the efficient regeneration system of C. dahurica Koehne through plant growth regulator and medium ratio.[Result]The optimal primary medium was 1/4MS + BA0.1 mg/L, the suitable medium for callus was 1/2MS + NAA0.1 mg/L + CPPU 0.01 mg/L,the optimal subculture medium was MS + BA1.0 mg/L and MS + BA1.5 mg/L + IAA0.1 mg/L, the suitable rooting medium was 1/4MS + IAA1.0 mg/L,the explants got the best rooting effect at 100 mg/L BA dipped in the base of young stem 30 min.[Conclusion]This study can provide reference for the development and utilization of C. dahurica Koehne.
Key words Crataegus dahurica Koehne;Regeneration system; Medium; Plant growth regulator
山楂屬(Crataegus L.)植物屬于薔薇科(Rosaceae)植物,廣泛分布于亞洲、歐洲、中北美洲及南美洲的北部,主要集中于北美洲,世界上共有該屬植物1 000余種[1]。山楂在我國栽培利用有悠久的歷史,《中國植物志》記載了我國山植屬植物有17種2個變種[2]。光葉山楂(C.dahurica Koehne)是山楂屬植物的一個種,主要分布于黑龍江、內蒙古以及西伯利亞和蒙古北部等地區。光葉山楂屬落葉喬木或灌木,花色純白,果實顏色較淺,果近球形或長圓形,具24小核,葉片大部分呈菱狀卵形,通常兩面無毛[3];耐庇蔭、耐寒、耐旱能力強,適應性廣,常散生于河岸、山麓的興安落葉松白樺混交林中[4]。
光葉山楂具有營養、保健、藥理、生態等多方面的利用價值,對光葉山楂進行全面研究和開發利用尤為重要。雖然各國研究人員對山楂屬植物進行了較為廣泛的研究,但在深度上遠不如其他薔薇科果樹[5]。利用組織培養技術對光葉山楂進行離體快繁,可在短期內生產大量優質原材料,緩解山楂種子萌發難、苗木繁殖慢的問題,為其深入研究提供材料;利用組織培養技術對光葉山楂進行抗性育種,可從根本上利用光葉山楂的優點進行品種改良,提高光葉山楂果實和苗木的利用率,對光葉山楂的開發利用有重要意義。
1 材料與方法
1.1 材料
光葉山楂莖尖以及經組織培養獲得的光葉山楂莖段。
1.2 方法
1.2.1 初代培養。
1.2.1.1
BA濃度及MS培養基對光葉山楂的影響。采用不同濃度BA(0.1、1.0 mg/L)及不同類型培養基(MS、1/2MS、1/4MS、1/8MS、1/16MS)組合共10個處理對光葉山楂進行培養,記為A1~A10,每瓶接種4個,每處理5瓶,重復3次,培養周期為90 d。
1.2.1.2
NAA及CPPU濃度對光葉山楂的影響。以1/2MS為基礎培養基,分別添加不同濃度NAA(0、0.01、0.10 mg/L)與不同濃度CPPU(0.01、0.10 mg/L)組合共6個處理,記為A11~A16,每瓶接種4個,每處理5瓶,重復3次,培養周期為30 d。
1.2.2 繼代培養。
1.2.2.1 BA濃度及MS培養基對光葉山楂的影響。剪取無菌苗帶節莖段,接種于MS和1/2MS培養基上,分別添加不同濃度BA(0.1、0.5、1.0 mg/L),共6個處理,記為B1~B6,每瓶接種4個,每處理5瓶,重復3次,培養周期為30 d。
1.2.2.2 IAA及BA濃度對光葉山楂的影響。剪取無菌苗帶節莖段,接種于MS基礎培養基上,添加不同濃度IAA(0.1、0.5 mg/L)和BA(1.0、1.5、2.0 mg/L),共6個處理,記為B7~B12,每瓶接種4個,每處理5瓶,重復3次,培養周期為30 d。
1.2.3 生根培養。
1.2.3.1
生長素種類、濃度及培養基對光葉山楂的影響。選取繼代培養后生長一致的光葉山楂無根苗,接種于含有不同濃度IAA(0.5、1.0、1.5 mg/L)以及IBA(0.5、1.0、1.5 mg/L)的2種培養基(1/2MS、1/4MS)上,共12種處理,記為C1~C12,每瓶接種4個外植體,每處理5瓶,重復3次,培養周期為90 d。
1.2.3.2
BA浸蘸時間對光葉山楂的影響。用100 mg/L BA浸蘸光葉山楂嫩莖基部,浸蘸時間分別為30、60 min,記為C13~C14,浸蘸后接種于不含任何植物生長調節劑的1/2MS培養基上,培養周期為90 d。
1.3 培養基及培養條件
各試驗培養基均含有蔗糖3%、瓊脂0.7%,用1 mol/L NaOH和1 mol/L HCl調pH至5.8~60,經121 ℃高壓蒸汽滅菌20 min后凝固備用;外植體接種后,置于光照培養箱中培養,培養溫度為(25±2) ℃,光照強度為1 500~3 000 lx,光照時數均為16 h/d。
2 結果與分析
2.1 初代培養
2.1.1 BA濃度及MS培養基對光葉山楂初代培養的影響。
由表1可知,在A2~A5處理下,光葉山楂莖尖生存率和平均株高均高于A7~A10處理,其中A4處理對光葉山楂莖尖生存率效果最佳為91.6%,A3處理嫩莖的平均高度最高達24.3 mm,在A1、A6和A10處理下,光葉山楂外植體均無嫩莖形成,A3~A5處理光葉山楂嫩莖形成率均高于A8~A10處理,其中A3處理是最利于嫩莖形成的處理組合,在A4和A8處理下,培養所得嫩莖增殖倍數相同且最高達2.0。
2.1.2 NAA及CPPU濃度對光葉山楂初代培養的影響。
由表2可知,A13、A15和A16處理下,光葉山楂莖尖生存率均達100%,A11和A14處理下,外植體無愈傷組織形成,A12和A13處理愈傷組織形成率均高于A15和A16處理,其中A13處理愈傷組織形成率達100%,A13和A16處理下,愈傷組織大小一致,均為6.2 mm。
2.2 繼代培養
2.2.1 BA濃度及MS培養基對光葉山楂繼代培養的影響。
由表3可知,6種處理下光葉山楂的生存率以及嫩莖形成率都很高,其中B1~B3以及B6處理下,生存率均為100%,除B3處理外,其他處理嫩莖形成率均為100%,B4處理下光葉山楂平均株高最大為30.1 mm,B2和B5處理下增殖倍數相同,B6處理下增殖倍數最大為3.6。
2.2.2 IAA及BA濃度對光葉山楂繼代培養的影響。
由表4可知,6種處理均誘導形成嫩莖,其中B11處理下嫩莖形成率最高為83.6%,平均株高為13.4~18.1 mm,B8處理平均株高為18.1 mm,B8處理下光葉山楂嫩莖增殖倍數最大為2.4。
2.3 生根培養
2.3.1 培養基及生長調節劑對光葉山楂生根的影響。
由表5可知,IAA和IBA的濃度過高或過低均不利于光葉山楂無菌苗生根;在同一培養基下,同種濃度的IAA比IBA更利于無菌苗生根培養;當生長調節劑種類和濃度相同時,1/4MS培養基較1/2MS培養基更利于外植體生根。綜合分析表明,C8處理是最利于光葉山楂生根的培養基及生長調節劑組合,外植體生根數11條、生根率55%、平均根長36.4 mm。
2.3.2 BA浸蘸嫩莖對光葉山楂生根的影響。
由表6可知,浸蘸BA均可誘導外植體生根,C13處理下,外植體生根數9條、生根率45%、平均根長50.1 mm,C14處理下外植體生根數僅1條、生根率僅有5%、平均根長12.2 mm,因此誘導生根較好的處理時間是30 min。
3 結論與討論
3.1 初代培養
通過對光葉山楂初代培養進行研究,結果表明,在同一BA濃度下,光葉山楂外植體的生存率、嫩莖形成率、嫩莖增殖倍數及平均株高均隨著MS培養基中大量元素含量的降低呈現先升高后降低的趨勢,說明MS培養基中大量元素過高或過低均不利于光葉山楂的初代培養,在1/4MS培養基下,外植體初代培養的效果最好,因此,最利于光葉山楂莖尖初代培養的配方為1/4MS+BA 0.1 mg/L。
愈傷組織誘導是通過細胞內特定基因的激活和表達,形成特定的蛋白來調控的,其中起重要作用的是激素種類及配比[6]。該試驗中,當CPPU濃度一定,NAA濃度為0時,外植體可以存活,但無愈傷組織形成;隨著NAA濃度的增加,光葉山楂外植體生存率、愈傷組織形成率、愈傷組織大小均增大,說明在一定的濃度范圍內,NAA可促進光葉山楂外植體的愈傷組織形成;當NAA濃度一定時,高濃度CPPU可促進愈傷組織生長,但愈傷組織形成率較小,說明CPPU抑制愈傷組織的形成但不抑制其生長,同時也證明了CPPU是一種非常有效的細胞分裂素[7]。因此,適宜光葉山楂愈傷組織形成的最適培養基配方為1/2MS+NAA 0.1 mg/L+CPPU 0.01 mg/L。
3.2 繼代培養
通過研究不同濃度BA及培養基類型對光葉山楂外植體繼代培養影響,結果表明,在1/2MS培養基中,外植體增殖倍數隨BA濃度增大呈先增大后降低的趨勢,說明BA濃度過大或過小都抑制外植體的增殖生長,在MS培養基中,增殖倍數隨BA濃度增大而增大,當BA濃度一定時,MS培養基中外植體增殖倍數大于1/2MS培養基,由此可見,培養基中大量元素濃度越高越能促進外植體的增殖生長。當IAA濃度為0.1 mg/L時,外植體增殖倍數隨BA濃度的增大呈先增大后降低的趨勢,當IAA濃度為1.0 mg/L時,外植體增殖倍數隨BA濃度的增大逐漸降低,可見外植體增殖倍數受BA與IAA共同調控。綜合考慮,適宜光葉山楂繼代培養的培養基配方為MS+BA1.0 mg/L和MS+BA 1.5 mg/L+IAA0.1 mg/L。
3.3 生根培養
對于實際生產來說,植物具有發達的根系才能吸收土壤中的水分和養分,因此組織培養中無菌苗的生根是組織培養快繁的關鍵[8]。該研究結果表明,1/2MS和1/4MS培養基中外植體生根率隨IAA濃度的增大表現為先上升后下降的趨勢,IAA濃度過高或過低均不利于外植體生根;同一濃度下IAA比IBA更利于生根;添加同種濃度的IAA下,1/4MS培養基外植體生根率高于1/2MS培養基,證明低濃度無機鹽培養基更利于外植體生根,生根培養最適培養基為1/4MS+IAA1.0 mg/L。
用100 mg/L的BA浸蘸光葉山楂嫩莖基部后接種于不含植物生長調節物質的1/2MS培養基中,探索兩步生根法對外植體生根率的影響,結果表明,BA浸蘸30 min外植體生根效果較好,BA浸蘸60 min抑制外植體的生根。
參考文獻
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[5] 李浚明.植物組織培養教程[M].北京:中國農業大學出版社,2004.
[6] 李浚明.植物組織培養教程[Z].北京:中國農業大學出版社,2004.
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