一種利用體外轉錄制備dsRNA的方法介紹*

劉海濤 舒端陽

（1 淮南師范學院生物工程學院 安徽淮南 232038 2 廣東省梅州市豐順中學 廣東梅州 514300）

RNAi（RNA interference）是由dsRNA（double strand RNA）在細胞內被切割成siRNA（small interference RNA），從而引起的同源mRNA 特異性降解，針對性地關閉某個基因的表達，為人們研究具體某個基因的功能打開一扇窗戶，所以被廣泛用于生物學、醫學等眾多領域。然而要對某個基因進行有效的沉默需要制備與此基因mRNA 同源的dsRNA，怎樣才能獲得此dsRNA？ 目前應用比較廣泛的方法有化學合成法、體外轉錄法、構建載體體內轉錄法等，本實驗通過構建一個雙啟動子的表達載體，再體外轉錄制備dsRNA。

本實驗以鱗翅目昆蟲細胞色素c 基因片段為靶基因制備dsRNA，細胞色素c（cytochrome c，cyt c）是呼吸鏈中一種重要的蛋白質，正常細胞在受到凋亡因子（例如紫外線）刺激時cyt c 就會從線粒體中釋放，激活caspase 家族蛋白酶，引起一系列的通訊級聯，最終導致細胞凋亡。若將一個正常細胞的cyt c 的表達抑制后，用紫外線處理細胞還會發生凋亡，或者凋亡程度會不會減弱？這時即可用RNAi技術沉默cyt c 基因的表達。本實驗以鱗翅目昆蟲斜紋夜蛾（Spodoptera litura）的離體細胞株Sl-1 為研究材料［1］，制備其cyt c 基因的一段dsRNA。

1 實驗材料

PBS緩沖液、Sl-1細胞株、提取總RNA 的Tri-zol 試劑盒、逆轉錄酶M-MLV、DNA 連接酶、限制酶BamH I 和EcoR I、Taq 酶、RNA聚合酶、PCR 儀、帶有T7 雙啟動子的質粒Litmus28i（圖1）、微量移液器、EP 管、培養皿、4 種核糖核苷酸（NTP）、4 種脫氧核苷酸（dNTP）、冷凍離心機、焦炭酸二乙酯（DEPC）。

2 實驗方法

2.1 提取總RNA［2］

1）取1 瓶對數期細胞（細胞數量約1.5×106個），用PBS 洗滌后加入1 mL TRIzol；室溫靜置5 min 后移入1.5 mL 離心管中。

2）加入0.2 mL 氯仿，輕微振蕩15 s，冰上靜置2 min。

3）12000g/15 min，4℃離心后取上層水相，保留中間相和有機相（其中含有DNA 和蛋白質）。

4）加入0.5 mL 異丙醇，輕輕混勻，冰上靜置10 min。

5）12000g/10 min，4℃離心，棄上清液。

6）加入1 mL 75%乙醇，輕輕洗滌沉淀；7 500 g/5 min，4℃離心后棄上清液。

7）加入50 μL DEPC處理過的超純水溶解沉淀后取10 μL 用于瓊脂糖凝膠電泳，電泳結果顯示所提取RNA樣品中28S rRNA 亮度約為18S rRNA的2 倍，說明RNA 質量較好（如圖2所示）。

2.2 體外轉錄載體的構建

1）用微量移液器取5 μL 總RNA 為模板，加入1 μL M-MLV 逆轉錄酶、1 mg dNTP，16℃條件下對總RNA 進行逆轉錄，制備cDNA。

2）以cDNA 為模板，設計cyt c 基因片段（長度為248 bp）的引物：

上游5′-GAATTCTGCCACACTGTTGAAGCCGGT3′

下游5′-GGATCCGATCTGCACGCTCGTTTGCCT3′

引物兩頭分別加上EcoR I 和BamH I 的酶切位點，PCR 反應（圖3）。

3）PCR 產物測序正確后，電泳切膠回收。

4）37℃條件下加入EcoRⅠ和BamH Ⅰ對純化后的片段和質粒Litmus28i 同時進行酶切反應3 h。

5）分別將雙酶切后的片段和質粒純化后進行連接反應，4℃，10h 得到重組DNA 分子（圖4）。

6）為保證重組DNA 分子插入正確，用EcoR Ⅰ和BamH Ⅰ同時進行雙酶切驗證，電泳檢測插入正確（圖5）。

2.3 體外轉錄

1）將重組DNA 分子分為2 份，分別用BamHⅠ和EcoR Ⅰ進行酶切，作為體外轉錄模板（圖6）。

2）加入1 μL RNA 聚合酶、NTP 2 mg 及緩沖液，37℃水浴使轉錄持續進行4 h 后，65℃加熱變性5 min 后迅速冰浴使2 種互補的單鏈RNA 退火形成dsRNA，電泳檢測（圖7）。

此時的dsRNA 序列與斜紋夜蛾cyt c 基因的一段是完全同源的，可以利用脂質體轉染Sl-1 細胞，進行RNAi 的相關實驗。

3 討論及意義

體外轉錄實驗能否成功主要取決于的限制酶選擇，只有選擇切口為5′-突出末端（5′-overhang）或平末端（blunt-end）限制酶才能成功進行體外轉錄，本實驗選用的限制酶EcoR I 和BamH I 都屬于5′-突出末端；若所采用的限制酶（如Pst I）切出的切口為3′-突出末端（3′-overhang），則RNA聚合酶在體外轉錄結束后無法與模板脫離，導致轉錄失敗。

RNA 干擾現象廣泛存在于多種生物，有效地組織外源病毒的侵染、參與機體發育、調節基因的表達等，因此研究RNAi 具有重要的意義。然而研究RNAi 的前提就是如何高效地制備相應的dsRNA。

最初研究人員是通過化學合成的方法直接合成siRNA 用于實驗，這種方法最為簡單，客戶只要知道相應目的基因的堿基序列，生物公司就會根據其要求提供高質量的siRNA，不過價格十分昂貴，且需要在靶基因中事先篩選出一段最有效的序列再進行化學合成，因此定制周期較長。

2002年，Novina CD 等［3］開發出一種利用腺病毒感染的方法將靶基因帶入受體細胞，達到了較高的轉染率且能持續穩定地在細胞內轉錄出siRNA，因此利用病毒載體是目前唯一一種可以長期研究RNAi 的方法，而且相比于化學合成這種方法的成本低。但是病毒載體只能轉染原代培養的哺乳動物細胞，對于果蠅、線蟲和斑馬魚這類生物則無能為力。

然而，通過構建表達載體在體外進行轉錄合成dsRNA 的費用相比于化學合成法要低得多，也能較快地得到dsRNA。一旦得到靶基因的模板序列，只要48 h 就可以RNAi 實驗，通常一次體外轉錄得到的dsRNA 可以進行上百次的RNAi 實驗。利用脂質體可以將dsRNA 導入受體細胞，雖然轉染效率略低于病毒載體，但是脂質體包裹著這些siRNA 可以與哺乳動物、線蟲、魚類、果蠅和各種植物的細胞發生融合，因此體外轉錄是目前進行RNAi 最有效的手段。