桑露倩,李 娜,王 映,都小晗,路顏娟,路太英
鄭州大學第一附屬醫院腫瘤科 鄭州 450052
食管癌是世界上最常見的惡性腫瘤之一,居世界癌癥相關死亡原因的第6位,在中國排名第4位[1-2]。目前食管癌的治療包括手術切除、放療和化療,但其總生存率<10%,5 a生存率仍<25%[3]。復發轉移是導致死亡的主要原因,然而轉移性擴散的分子機制尚不清楚。研究[4-5]表明,惡性腫瘤的侵襲轉移主要與腫瘤新生微血管和淋巴管的形成有關。Notch信號通路在血管發生發展的多個方面起重要調控功能[6],DLL4-Notch信號通路在調控血管生成、發育過程中扮演著重要角色[7]。血管內皮生長因子-C(VEGF-C)是首先被發現的淋巴管生成因子,通過與血管內皮生長因子受體(VEGFR)3結合,刺激淋巴管內皮細胞的增殖和遷移,促進實體瘤內淋巴管的新生以及腫瘤細胞通過淋巴系統向全身擴散[8-9]。全反式維甲酸(all-trans retinoic acid,ATRA)是一種天然的維生素A衍生物,不僅參與胚胎發育和細胞生長分化,而且與腫瘤細胞的增殖、分化、凋亡和血管生成等密切相關,已用于多種腫瘤的治療[10]。這一過程必須依賴于ATRA與其特異性受體相結合。維甲酸受體β(retinoic acid receptor β, RARβ)是最重要的維甲酸類受體,其作為腫瘤抑制基因,在食管鱗癌的發生發展過程發揮重要作用[11]。該研究觀察了ATRA單獨及聯合 RARβ激動劑CD2314或抑制劑LE135對食管癌KYSE70細胞增殖、遷移以及Notch1、DLL4、VEGF-C蛋白表達的影響,探索ATRA抗食管癌微血管和淋巴管生成的可能機制,為食管癌的抗微血管和淋巴管治療提供理論依據。
1.1材料KYSE70細胞由鄭州大學基礎醫學院腫瘤實驗室贈送。RPMI 1640培養基、DMSO為北京索萊寶科技有限公司產品。胎牛血清為杭州四季青公司產品。ATRA(用無水乙醇制成1 mmol/L的儲備液,4 ℃避光保存)、LE135(用無水乙醇制成10 mmol/L的儲備液,-20 ℃保存)均購自Sigma公司,CD2314(用無水乙醇制成10 mmol/L的儲備液,-20 ℃保存)購自Apexbio公司,CCK-8試劑為日本同仁公司產品。兔抗人Notch1、DLL4、β-actin抗體購自美國Abcam公司,兔抗人VEGF-C抗體購自武漢三鷹生物技術有限公司。
1.2細胞培養及分組KYSE70細胞單層貼壁生長于含體積分數10%胎牛血清的RPMI 1640培養液中,于37 ℃、體積分數5% CO2培養箱中常規培養。將KYSE70細胞分為4組:ATRA組(ATRA終濃度為10 μmol/L)、ATRA+CD2314組(ATRA終濃度為10 μmol/L、CD2314終濃度為1 μmol/L)、ATRA+LE135組(ATRA終濃度為10 μmol/L、LE135終濃度為1 μmol/L)和對照組(不加藥物處理)。
1.3CCK-8法檢測各組細胞的增殖將KYSE70細胞接種于96孔板,每孔5 000個,過夜培養,待貼壁后,按1.2分組培養,同時設調零孔(只有培養液),每組設6個平行孔。分別培養24、48、72 h后,CCK-8法測細胞增殖情況。每孔加入CCK-8試劑(5 g/L)10 μL,孵育1~2 h后,選擇450 nm波長,在酶聯免疫檢測儀上測定光密度(OD)值。然后按[(OD對照組-OD實驗組)/(OD對照組-OD調零孔)]×100%計算細胞增殖抑制率。實驗重復3次。
1.4劃痕實驗檢測各組細胞的遷移能力KYSE70細胞接種于6孔板中,5×105個/孔,每孔加2 mL含體積分數10%胎牛血清的RPMI 1640培養液,培養24 h,用無菌槍頭沿孔板中央劃一條直線,按1.2分組培養,每組設3個平行孔。分別在0、24 h 拍照,用圖像處理軟件測量劃痕寬度,遷移率=(0 h的劃痕寬度-24 h的劃痕寬度)/0 h的劃痕寬度×100%。實驗重復3次。
1.5Westernblot檢測各組細胞中Notch1、DLL4及VEGF-C蛋白的表達KYSE70細胞接種于6孔板,過夜培養后,按1.2分組培養48 h,提取各組細胞總蛋白,BCA法測定蛋白濃度。配制體積分數為10%的分離膠和體積分數為5%的濃縮膠,上樣,蛋白電泳、轉膜、封閉,加入兔抗人Notch1、DLL4及VEGF-C 抗體一抗(按11 000稀釋)及β-actin單克隆一抗(按11 000稀釋),4 ℃孵育過夜。次日取出膜片,于TBST溶液中洗滌3次,每次5 min,分別加入HRP標記的二抗(按12 000稀釋)室溫、水平搖床上孵育1 h,暗室ECL發光液發光、顯影及定影。以目的蛋白與內參條帶灰度值的比值為目的蛋白的相對表達量。實驗重復3次。
1.6統計學處理采用GraphPad Prism6進行數據分析。采用單因素方差分析比較各組細胞增殖抑制率,遷移率及Notch1、DLL4、VEGF-C蛋白表達的差異。檢驗水準α=0.05。
2.1各組細胞增殖能力比較見表1。隨著藥物作用時間的延長,3個藥物組細胞增殖抑制率均逐漸上升;與ATRA組相比,ATRA+CD2314組細胞增殖抑制率升高,ATRA+LE135組細胞增殖抑制率降低。

表1 各組KYSE70細胞的增殖抑制率(n=3) %
#:與ATRA組相比,P<0.05
2.2各組細胞遷移能力的變化各組處理24 h后細胞遷移情況見表2。可知,ATRA組細胞遷移能力低于對照組;ATRA+CD2314組低于ATRA組,而ATRA+LE135組高于ATRA組。

表2 各組細胞遷移率及Notch1、DLL4、VEGF-C蛋白表達的比較(n=3)
*:與對照組相比,P<0.05;#:與ATRA組相比,P<0.05
2.3各組細胞中Notch1、DLL4、VEGF-C蛋白表達的比較見表2、圖1。藥物處理48 h后,ATRA組細胞Notch1蛋白表達量高于對照組,而DLL4和VEGF-C蛋白表達量低于對照組;ATRA+CD2314組細胞Notch1蛋白表達量高于ATRA組,而DLL4和VEGF-C蛋白表達量低于ATRA組;ATRA+LE135組細胞Notch1蛋白表達量低于ATRA組,DLL4和VEGF-C蛋白表達量高于ATRA組。

1:對照組;2:ATRA+LE135組:3:ATRA組;4:ATRA+CD2314組
圖1各組細胞中Notch1、DLL4、VEGF-C蛋白表達的比較
微血管和淋巴管的生成是惡性腫瘤侵襲轉移的重要機制之一。血管生成為腫瘤提供氧和營養物質,更為腫瘤的血行轉移提供了條件。研究[6]發現,在血管生成中起重要作用的DLL4-Notch信號通路是有希望的腫瘤治療新靶點之一。Notch信號通路是一種高度保守的信號傳導途徑[6],與Shh、Wnt、Ras、EGFR、VEGF等信號通路共同調節腫瘤的發生、發展[12]。由于細胞環境的變化,Notch信號通路在腫瘤的調節過程中具有致癌作用或抑癌作用的“雙刃劍”效應[13]。研究[14-16]表明,Notch受體和配體的異常表達以及Notch信號的異常激活與多種惡性腫瘤的發生密切相關;其中Notch1作用顯著,且在腫瘤相關試驗中被廣泛研究。有研究[17]顯示Notch1通路在食管鱗癌中是腫瘤抑制因子。DLL4作為內皮細胞中Notch唯一的特異性配體對于胚胎血管發育和動脈調節的發育十分重要[18]。實驗[19]表明在腫瘤中DLL4的上調與微血管和淋巴管生成密切相關。
VEGF-C是腫瘤血管生成、浸潤和轉移的關鍵因子,具有增強淋巴管生成的特殊功能[20],與其受體VEGFR3結合后能誘導血管及淋巴管內皮細胞生長,促進腫瘤轉移。研究[21]已證實VEGF-C過表達的食管癌患者預后不良。
ATRA作為目前研究最為深入、作用最強的分化誘導劑,通過誘導腫瘤細胞分化,逆轉腫瘤細胞的生物學特征,已被用于多種腫瘤尤其是急性早幼粒細胞性白血病的治療[22]。已有研究[23-26]表明,ATRA不僅可激活細胞的凋亡信號通路,抑制食管癌細胞的增殖和遷移,而且可降低食管癌細胞VEGF、PI3K、MMP-2等的表達以及VEGF信號轉導途徑中CD31、CD34和CD105的表達,并下調Ang-1、Ang-2、Tie-2、Flt-1和KDR等基因的表達水平,從而影響食管癌細胞中新生血管的生成。
ATRA主要與視黃酸受體結合形成復合物,作用于相應的靶基因,發揮抗腫瘤作用。RARβ是甲狀腺/類固醇受體超家族成員的核轉錄調控因子。據報道[27-28],RARβ基因的失活與多種實體腫瘤的發生密切相關。我們之前的研究[29]已證明RARβ在正常食管黏膜中的表達高于食管癌組織;在食管鱗癌的發生過程中RARβ丟失明顯,說明RARβ在食管黏膜癌變過程中起重要作用。因此,增加RARβ的表達可能會增強ATRA的抗腫瘤作用,甚至是逆轉腫瘤分化的一個潛在的途徑。
本實驗結果表明:與對照相比,ATRA可抑制食管癌細胞增殖、降低細胞遷移能力,同時增強Notch1蛋白的表達,抑制DLL4和VEGF-C蛋白的表達。相比單藥ATRA,ATRA聯合RARβ激動劑CD2314對食管癌細胞增殖和遷移能力的抑制作用更加顯著;ATRA聯合RARβ抑制劑LE135對食管癌細胞的抑制能力則較單藥ATRA減弱。
綜上所述,ATRA抑制KYSE70細胞增殖和遷移的作用可能是通過上調Notch1蛋白,下調DLL4、VEGF-C蛋白的表達來調節的,增強RARβ的表達可進一步增強這一作用。該研究為探索ATRA抗腫瘤新生微血管和淋巴管的作用機制奠定了一定的理論基礎,為ATRA的臨床應用提供更充分的理論依據。