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EMS誘變不同基因型花生品種的響應條件分析

2018-08-17 03:16:12楊秀麗寧東賢趙玉坤
山西農業科學 2018年8期
關鍵詞:劑量

楊秀麗,寧東賢,趙玉坤

(山西省農業科學院小麥研究所,山西 臨汾 041000)

目前,國內市場絕大多數推廣品種的親本是伏花生和獅頭企,或者是含有它們的血緣[1]。然而,過多使用遺傳背景相同或相似的親本材料,導致了栽培種花生基因的大量流失,其遺傳基礎日益狹窄、遺傳變異率低,使得有性雜交重組中無法創造新的基因變異,優異性狀的產生受到限制,無法獲得在農藝性狀和品質上突出的花生品種[2-3]。因此,在花生遺傳育種工程中,需要一種有效方法來解決這些問題,創制出農藝性狀優良、適應性強、配合力高和遺傳基礎廣泛的優異新種質[4-5]。

通過化學劑誘導植物變異,短時間內可以獲得大量變異性狀,再經過選擇育成新材料或新品種,這種方法產生了一般常規方法難以獲得的新性狀和新基因,具有獨特的優勢[6-7]。EMS(Ethyl Methane Sulfonate,甲基磺酸乙酯)是一種高效、穩定和良好的化學誘變劑,目前在誘變育種中應用最為廣泛,效果也最好[8-9]。前人利用EMS在花生種質創新上取得了一些成果。SIVARAM[10]、朱保葛等[11]用EMS處理花生種子,均選育出高產品系。FANG等[12]通過EMS誘變處理花生種子,篩選出了1個油酸含量高達60%以上的弗吉尼亞型花生突變體e2-4-83-12。殷冬梅等[13]選擇1片子葉但保留完整的胚作為種子外植體進行EMS誘變,確定了不同品種的適宜誘變組合。王傳堂等[14]將EMS直接注入花生開放花朵的龍骨瓣內,獲得了超大果和超小果的突變體,種子的蛋白質含量和粗脂肪含量有明顯提高,油亞比也發生了改變。魯花12號是用EMS處理雜交組合的F1果針誘變育成的[15]。

本試驗利用EMS處理不同基因型花生品種的種子,以半致死劑量作為可遺傳變異的選擇依據,研究不同基因型對EMS的響應條件,以期獲得最佳誘變劑量(濃度×時間)[16-17],為后續處理大批量種子提供適宜的誘變條件。

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 供試花生種子 供試花生材料為山西省3個主栽花生品種:普通型品種晉花8號,多粒型品種紅四粒和珍珠豆型品種白沙1016,由山西省農業科學院小麥研究所花生課題組提供。

1.1.2 供試藥劑 誘變劑EMS(甲基磺酸乙酯),由美國Sigma公司生產,為無色液體。

1.2 方法

1.2.1 試劑配制 配制pH值為7.0的0.1 mol/L磷酸鹽緩沖液 1 000 mL:取 Na2HPO4·12H2O35.82 g定容 1 000 mL,NaH2PO4·2H2O 15.61 g定容 1 000 mL,從 1 000 mLNa2HPO4·12H2O中取 610 mL,1 000 mL NaH2PO4·2H2O中取390 mL,配制成 1 000 mL的磷酸緩沖液,用pH儀調pH值為7.0,備用。

配制0.5 mol/L硫代硫酸鈉溶液1 000 mL:取Na2S2O3·5H2O124 g定容 1 000 mL,備用。

用蒸餾水浸泡種子9 h,以磷酸緩沖液作為溶劑,配制0.6%和0.9%等2個濃度的EMS溶液。

1.2.2 EMS誘變 試驗設3個因素,分別是:A.品種(3個);B.誘變濃度(2個水平);C.處理時間(3個)。每個品種有6個處理劑量,分別是 B1C1,B1C2,B1C3,B2C1,B2C2,B2C3。試驗因素及水平如表 1 所示。試驗共18個處理,3次重復,以不添加任何溶液為對照(CK)。每份材料選取飽滿種子350粒,每50粒裝一瓶,在通風櫥中按處理對每瓶進行浸種,標記。每個處理浸種結束后,在通風櫥中加入0.5 mol/L的硫代硫酸鈉,輕搖10 min,倒掉廢液;流水清洗1 h;將種子平鋪在濕潤的濾紙上,保持種子透氣。誘變處理第2天,把M0種子按小區種植,小區面積3.0 m2,株距0.2 m,行距0.4 m,每穴1粒。田間種植采用3因素完全隨機區組設計,重復3次。

表1 試驗因素及水平

1.3 測定項目及方法

播種后5 d觀察植株出苗情況,每天早上記錄出苗數,15 d后計算出苗勢和出苗率。

出苗勢=第7天出苗數/種子總數×100%;出苗率=第14天出苗數/種子總數×100%。

1.4 數據處理

采用Excel軟件對初始數據進行平均數計算,采用SPSS 24.0統計軟件對數據進行方差分析和多重比較。

2 結果與分析

2.1 EMS誘變對花生出苗的影響

經EMS誘變的花生種子在播種后出苗受到明顯的抑制。圖1顯示,3個品種經誘變處理后,出苗起始和終止時間與對照相比均出現了延遲,出苗數也都明顯降低。不同處理下各個品種的出苗趨勢是不一致的,A1和A2在相同的濃度0.6%和浸泡時間5 h誘變處理(B1C1)下,最終的出苗數均超過了總數的1/2,說明在此條件下,植株的損傷程度和產生的變異程度相對較小,而之后的濃度與時間組合條件下,出苗數均沒達到1/2,致死率較大,植株的受損率較高,后代產生的變異隨之可能會較大。A3在不同的處理下,最后的出苗數均沒有達到1/2,說明該品種在已有的試驗條件下對EMS誘變響應條件敏感,容易受到損傷。

表2 3個基因型品種在不同誘變濃度和浸種時間組合下的出苗勢情況 %

表3 3個基因型品種在不同誘變濃度和浸種時間組合下的出苗率情況 %

3個品種在不同誘變劑量下的出苗勢和出苗率具體情況如表2,3所示。從表2可以看出,種子經誘變后其出苗勢受到很大的影響,種子活力受損,萌發受到抑制。A1(晉花8號)在B2C1(濃度0.9%,時間5 h)的處理下,出苗勢相對較強;A2(紅四粒)和A3(白沙1016)在B1C1(濃度0.6%,時間5 h)的處理下,出苗勢相對較強。從表3可以看出,在B1C1(濃度0.6%,時間5 h)的處理下,3個品種的出苗率均最高,A1和A2的出苗率>50%,說明種子活力受損小,而A3的出苗率為40%,致死率相對高,說明A3對誘變劑反應敏感[18]。

2.2 品種、EMS濃度和處理時間對花生出苗影響的差異分析

本試驗為3因素完全隨機試驗設計,為了研究這3個因素對出苗影響的差異性,對其進行了方差分析和多重比較。由表4可知,對于2個出苗指標來說,A因素、B因素、C因素、A因素×B因素、A因素×B因素×C因素的F值均達到顯著水平(P<0.05),說明每個因素對出苗勢和出苗率的影響都是顯著的。另外,不同濃度和浸種時間存在交互作用,不同品種、濃度和時間也存在交互作用,說明在同一濃度條件下,不同的浸種時間對出苗率的影響顯著不同,而不同基因型的品種,在同樣的濃度和時間水平下出苗率也是顯著變化的。可見,不同基因型的花生品種對誘變劑的響應是不同的,而誘變劑濃度和浸種時間是否適宜對誘變效果影響非常大。

表4 3個因素對花生出苗率和出苗勢影響的主體間效應檢驗

由表5可知,2個誘變劑濃度之間差異性極顯著(P<0.01),說明濃度越高,植株出苗率越低。當EMS濃度增高,植株受到的生理損傷也加大,致死率增大。表6顯示,出苗率在3個時間水平下的表現是 C1>C2>C3,之間存在極顯著差異(P<0.01),說明浸泡時間越長,出苗率越低。

表5 比較2個誘變劑濃度水平對出苗率的影響

表6 比較3個浸種時間水平對出苗率的影響

從表7可以看出,不同基因型花生品種對誘變劑的響應存在極顯著差異(P<0.01),A1(晉花8號)是普通型品種,A2(紅四粒)是多粒型品種,A3(白沙1016)是珍珠豆型品種,它們對EMS的敏感反應呈遞增趨勢。因此,不同的基因型品種有自身相應的最佳誘變劑量。

表7 比較3個不同基因型對出苗率的影響

2.3 確定EMS誘變的最佳劑量

不同的基因型品種具有不同的適宜劑量,確定最佳的誘變劑量是誘變育種成功的關鍵,在適宜劑量下,植株會產生更多新的變異,并保持自身的優良性狀。通常把誘變處理后植株存活50%的劑量(半致死劑量,LD50)作為可遺傳變異的選擇依據,即最佳誘變劑量[19]。由表2,3可知,A1(晉花8號)在EMS濃度0.9%,浸泡時間5 h時,出苗率為38.6%,且出苗勢最強;A2(紅四粒)在EMS誘變劑量為B1C1(0.6%,5 h)時,出苗勢最強,但出苗率為71.3%,沒有達到半致死效果,而在EMS誘變劑量為B1C2(0.6%,7 h)時,出苗率為39.3%,出苗勢僅次于B1C1處理;A3(白沙1016)在EMS濃度0.6%,浸泡時間5 h時,出苗率為40.0%,且出苗勢最強。基于以上考慮,確定A1,A2,A3這3個品種的最佳誘變劑量分別為 0.9%,5 h;0.6%,7 h;0.6%,5 h。這可以作為之后大批量處理種子的誘變條件。

3 討論

本研究利用EMS處理花生種子,以不同的基因型品種為試材,設計2個誘變濃度水平和3個浸泡時間水平,分析出苗勢和出苗率。結果表明,EMS誘變劑損傷種子活力,抑制萌發;誘變濃度越高,出苗率越低,而浸泡時間越長,出苗率也越低;同一濃度水平上,浸泡時間越長,出苗率越低,而同一時間水平上,誘變濃度越高,出苗率也越低;不同基因型品種具有不同的誘變適宜濃度。誘變劑的濃度越高,對植株生理損傷越大,而長時間浸種導致種子種皮透性增強,使誘變劑與花生種子種皮內部結構接觸充分,增強了抑制性。

化學誘變育種中最佳的誘變劑量既可以保證一定數量的突變體產生,又可產生更多的可遺傳變異,因此,篩選適宜的誘變劑量是化學誘變育種的關鍵環節,一般以半致死劑量作為選擇依據。本研究中,確定了晉花8號、紅四粒和白沙1016的最佳誘變劑量分別是 0.9%,5 h;0.6%,7 h;0.6%,5 h。

利用篩選出的適宜劑量處理大批花生種子,經田間種植后,要對后代進行突變體篩選,需要通過對表型數據分析或利用分子生物學手段,建立突變體庫,獲得優異突變體,作為下一步選育或雜合的材料,最終選育出優異品種[20]。

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