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Abraxne對Lewis肺癌小鼠Per2基因及SIRT1因子表達的影響

2018-10-18 09:03:20趙雪峰范娟楊玲麟傅少志陳瓊英
中國現代醫學雜志 2018年29期
關鍵詞:紫杉醇肺癌小鼠

趙雪峰,范娟,楊玲麟,傅少志,陳瓊英

(1.西南醫科大學附屬醫院 腫瘤科,四川 瀘州 646099;2.四川省自貢市第三人民醫院 放射科,四川 自貢 643020)

肺癌是發病率和死亡率均居首位的惡性腫瘤,大部分患者確診時已為中、晚期,放化療聯合靶向藥物治療成為主要治療手段[1-3]。Periods基因是近日節律調節系統的核心基因,沉默信息調節因子1(silent information regulator 1, SIRT1)是聯系晝夜節律和能量代謝的能量傳感器[4-5]。白蛋白結合型紫杉醇(albumin-bound paclitaxel, Abraxne)能加快紫杉醇進入腫瘤細胞,避免合成溶劑可能造成的毒副作用[6]。本研究探究Abraxne對Lewis肺癌小鼠生物鐘基因Per2、SIRT1表達的影響,以期為臨床治療肺癌提供理論指導。

1 材料與方法

1.1 實驗動物與試劑

1.1.1 實驗動物 6~8周齡清潔級C57BL/6雌性小鼠60只,體重18~20 g,購自北京維通利華實驗動物技術有限公司。

1.1.2 主要試劑及材料 小鼠Lewis肺癌細胞(lewis lung cancer cells, LLC)由本實驗室保存。Abraxne注射用混懸液,規格:5 ml:100 mg/瓶,購自美國Celgene公司,紫素(溶劑型紫杉醇注射液)規格:5 ml:30 mg。購自北京協和藥廠。Trizol RAN提取試劑(美國Invitrogen公司),RNA逆轉錄試劑盒、SYBR Green熒光定量檢測試劑盒購自日本TaKaRa公司,組織蛋白提取試劑(南京凱基生物科技發展公司),兔抗鼠Per2一抗、兔抗鼠SIRT1一抗、堿性磷酸酶標記山羊抗兔IgG溶液購自美國Sigma公司。

1.2 動物模型的復制

取本實驗室凍存的LLC細胞進行復蘇,用含10%胎牛血清的RPMI 1640培養基,在37℃、5%二氧化碳CO2孵箱中常規培養、傳代,傳代期間采用MTT法檢測細胞活力,確認細胞活力正常且傳代3次后即可使用。取對數生長期細胞用0.25%胰酶消化,制成單細胞懸液,1 000 r/min離心5 min,倒掉培養基,用生理鹽水將細胞濃度稀釋至5×106個/L。在C57BL/6小鼠右腋部背側皮下接種0.2 ml LLC細胞懸液(約1×106個細胞),接種后觀察小鼠腋下變化,第2~5天皮下可觸摸到腫瘤結節。若腋下腫瘤長勢良好,在接種5 d后體積可>100 mm3,則提示Lewis肺癌小鼠模型復制成功。

1.3 實驗分組

將接種后的45只Lewis肺癌小鼠隨機分為模型組、紫素組和Abraxne組,用剪耳法標記,各15只,其余15只小鼠不做任何處理作為正常對照組。接種后第5天開始給藥,連續治療10 d。將瓶裝Abraxne和紫素用生理鹽水稀釋為3 g/L,配好的溶液應在8 h內使用。Abraxne組從尾靜脈緩慢注入Abraxne 30 mg/(kg·d);紫素組從尾靜脈緩慢注入紫素 30 mg/(kg·d);模型組尾靜脈注入等量生理鹽水。

1.4 小鼠生存狀態觀察

接種后第5天起,各組小鼠每天同一時間稱重,觀察小鼠活動、飲食狀態和死亡情況,并做好記錄。

1.5 腫瘤體積動態變化

接種后第5天起,每天同一時間用游標卡尺(精確到0.1 mm)測定腫瘤最長徑(a)和最短徑(b),計算腫瘤體積(V):V=ab2/2。統計各組小鼠腫瘤平均體積,繪制腫瘤生長曲線。

1.6 實時熒光定量聚合酶鏈反應

接種后第15天將小鼠斷頭處死,完整剝離腫瘤結節組織于液氮中凍存。采用Trizol法提取各組小鼠腫瘤組織的總RNA,并通過逆轉錄試劑盒將其逆轉錄為cDNA,采用SYBR熒光定量檢測試劑盒對腫瘤組織中的Per2和SIRT1 mRNA進行相對定量分析。引物序列由上海生工生物工程有限公司合成,采用美國ABI公司的7500系統進行實時熒光定量聚合酶鏈反應(quantitative real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR)。反應條件:95℃預變性10 min,95℃變性15 s,72℃退火15 s,共40個循環。最終以β-actin作為內參,采用2-ΔΔCt法計算mRNA相對表達量。引物序列見表1。

表1 引物序列

1.7 Western blot檢測

取每組小鼠腫瘤組織充分研磨,用組織蛋白提取試劑常規提取蛋白。每組取4μl蛋白樣品,用BCA法進行蛋白定量,調節好蛋白濃度。將蛋白樣品與等體積2×SDS緩沖液混合后加熱變性,通過SDSPAGE電泳分離上清液,把分離的蛋白質轉印到硝酸纖維素膜上。將膜洗滌后在5%牛血清蛋白溶液中室溫封閉1 h,洗滌后將膜置于一抗稀釋液(兔抗鼠Per2或SIRT1一抗溶液1∶100)中,4℃孵育過夜。次日早晨將膜快速清洗后,轉移到二抗稀釋液(堿磷酶標記山羊抗兔IgG溶液1∶1 000)中,室溫孵育2 h,清洗后用新配制的顯色液進行顯色,待出現清晰的條帶后終止反應,最后使用GIS-2020數碼圖像分析系統掃描并分析蛋白雜交條帶。

1.8 統計學方法

數據分析采用SPSS 20.0統計軟件,計量資料以均數±標準差(±s)表示,比較用單因素方差分析或重復測量設計的方差分析,兩兩比較用LSD-t法,P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 各組小鼠一般情況

模型組接種后第10天1只小鼠死亡。紫素組給藥后第6天1只小鼠死亡,給藥后第9天2只小鼠死亡。Abraxne組小鼠給藥后無小鼠死亡。模型組、紫素組小鼠整體生長情況較差,活動、進食狀態不佳,紫素組小鼠較模型組、Abraxne組明顯消瘦;Abraxne組小鼠生長情況強于模型組、紫素組,狀態最佳。

2.2 Abraxne對Lewis肺癌小鼠體重的影響

正常對照組、模型組、紫素組、Abraxne組小鼠在接種LLC細胞前、接種后第5天、給藥后第5和10天的體重變化比較,采用重復測量設計的方差分析,結果:①不同時間點體重有差別(F=17.703,P=0.000);②4組大鼠體重有差別(F=7.976,P=0.000);③4組大鼠體重變化趨勢有差別(F=21.641,P=0.000)。見表 2。

表2 Abraxne對Lewis肺癌小鼠體重的影響 (g,±s)

表2 Abraxne對Lewis肺癌小鼠體重的影響 (g,±s)

注:1)與正常對照組比較,P <0.05;2)與模型組比較,P <0.05;3)與紫素組比較,P <0.05。

組別 接種前 接種后第5 d 給藥后第5 d 給藥后第10 d正常對照組(n =15) 18.62±1.25 18.94±1.38 19.10±1.45 19.13±1.27模型組(n =14) 18.53±1.34 18.25±1.42 18.02±1.281) 17.75±1.031)紫素組(n =12) 18.64±1.29 18.31±1.08 17.74±0.961) 17.08±0.681)2)Abraxne組(n =15) 18.57±1.17 18.28±1.02 18.23±0.98 18.19±0.951)3)F值 0.021 1.043 3.389 9.688 P值 0.996 0.382 0.025 0.000

2.3 Abraxne對Lewis肺癌小鼠腫瘤體積的影響

模型組、紫素組、Abraxne組Lewis肺癌小鼠給予 Abraxne治療后第 0、2、4、6、8和 10天的腫瘤體積比較,采用重復測量設計的方差分析,結果:①不同時間點的腫瘤體積有差別(F=35.128,P=0.000);②3組小鼠腫瘤體積有差別(F=8.376,P=0.000);③3組小鼠腫瘤體積變化趨勢有差別(F=43.624,P=0.000)。見表 3和圖 1。

表3 Abraxne對Lewis肺癌小鼠腫瘤體積的影響 (mm3,±s)

表3 Abraxne對Lewis肺癌小鼠腫瘤體積的影響 (mm3,±s)

注:1)與模型組比較,P <0.05;2)與紫素組比較,P <0.05。

組別 第0 d 第2 d 第4 d 第6 d 第8 d 第10 d模型組(n =14) 103.12±8.13 108.15±9.12 120.26±9.25 133.25±10.15 143.76±10.36 149.23±11.39紫素組(n =12) 102.33±8.22 106.26±8.02 114.33±9.271) 123.12±9.251) 127.29±9.171) 131.15±9.381)Abraxne 組(n =15) 103.25±7.12 105.43±8.16 107.56±8.291)2) 112.35±9.051)2) 115.65±8.921)2) 117.12±9.351)2)

圖1 Abraxne對Lewis肺癌小鼠腫瘤體積的影響 (±s)

2.4 Abraxne對Lewis肺癌小鼠腫瘤組織中Per2和SIRT1 mRNA表達的影響

模型組、紫素組、Abraxne組小鼠給藥后腫瘤組織中Per2 mRNA相對表達量分別為(0.20±0.02)、(0.31±0.04)和(0.42±0.16),經單因素方差分析,差異有統計學意義(F=17.475,P=0.000)。模型組、紫素組、Abraxne組SIRT1 mRNA相對表達量分別為(0.14±0.04)、(0.23±0.05)和(0.30±0.08),經單因素方差分析,差異有統計學意義(F=25.603,P=0.000)。見圖2。

圖2 Lewis肺癌小鼠腫瘤組織中Per2和SIRT1 mRNA表達水平比較 (±s)

2.5 Abraxne對Lewis肺癌小鼠腫瘤組織中Per2和SIRT1蛋白表達的影響

模型組、紫素組、Abraxne組小鼠給藥后腫瘤組織中Per2和SIRT1蛋白表達水平比較,經單因素方差分析,差異有統計學意義(P<0.05)。進一步兩兩比較經LSD-t檢驗,與模型組比較,紫素組、Abraxne組小鼠腫瘤組織中Per2和SIRT1蛋白表達水平升高(P<0.05)。見表 4和圖 3。

表4 Abraxne對Lewis肺癌小鼠腫瘤組織中Per2和SIRT1蛋白表達的影響 (±s)

表4 Abraxne對Lewis肺癌小鼠腫瘤組織中Per2和SIRT1蛋白表達的影響 (±s)

注:1)與模型組比較,P <0.05;2)與紫素組比較,P <0.05。

組別 Per2蛋白 SIRT1蛋白模型組 0.126±0.012 0.134±0.015紫素組 0.182±0.0171) 0.193±0.0181)Abraxne 組 0.257±0.0241)2) 0.232±0.0211)2)F值 181.732 105.299 P值 0.000 0.000

圖3 Lewis肺癌小鼠腫瘤組織中Per2和SIRT1蛋白的表達

3 討論

隨著人口老齡化步伐加快和環境污染不斷加劇,中國肺癌的發病率、死亡率高居不下。盡管肺癌的治療手段不斷進步,但是中、晚期肺癌的術后5年生存率僅為20%。肺癌的發生是一個多基因調控的復雜過程,致癌基因激活、抑癌基因失活或缺失與腫瘤的形成關系密切[7-9]。因此,深入挖掘腫瘤發生機制為肺癌患者的根治性治療帶來了希望。

紫杉醇是一種從紅豆杉樹皮中獲得的廣譜抗癌藥物,其作用機制為抑制微管解聚,但其難溶于水,其制藥溶媒為聚氧乙烯蓖麻油和無水乙醇混合物,然而該溶媒在體內降解生成的組胺可引起嚴重過敏反應,限制了溶劑型紫杉醇,如紫素,在臨床上的應用[10-11]。Abraxne是把人血白蛋白和紫杉醇通過高壓振動技術制成納米微粒粉劑,使用時加入生理鹽水溶解成120~150 nm大小的納米粒Abraxne混懸液,即可靜脈滴注。Abraxne不含助溶劑,可有效提高紫杉醇劑量,且臨床用藥時不必預防過敏反應[12]。白蛋白是人體內自然存在的疏水性載體,可與一些物質,如脂肪酸、脂溶性維生素、性激素等,通過可逆性共價方式結合[13-14]。白蛋白與內皮細胞膜受體gp60結合后,可激活小窩蛋白-1。小窩蛋白-1為膜表面糖基蛋白,直接協助藥物跨膜運輸。白蛋白藥物復合體依次經過血管內皮細胞、組織、組織間隙,最終蓄積在腫瘤細胞內。此外,腫瘤組織分泌的富含半胱氨酸酸性分泌蛋白,其作用類似于白蛋白受體,可特異吸附白蛋白,因此白蛋白藥物復合體可在腫瘤細胞周圍聚集,提高局部藥物濃度,增強抑瘤能力[15-17]。本研究通過Lewis肺癌模型小鼠實驗發現,紫素干預后小鼠整體生長情況較差,活動、進食狀態不佳,較模型組、Abraxne組明顯消瘦,腫瘤生長速度較模型組減緩,但仍快于Abraxne組。同時通過對小鼠體重進行分析顯示,各組小鼠在接種LLC細胞前、接種后第5天、給藥后第5和10天均隨著時間變化而變化。給予Abraxne治療后第0、2、4、6、8和10天各組小鼠腫瘤體積大小也隨著時間變化而變化。說明紫素能夠抑制腫瘤生長,但易產生毒副作用。Abraxne組小鼠給藥后無死亡,生長狀況明顯強于模型組和紫素組,Abraxne干預后腫瘤生長明顯受到抑制,腫瘤生長速度明顯小于模型組和紫素組,說明Abraxne較紫素更能抑制腫瘤生長,且不會產生毒副作用,臨床使用更加安全。

生物鐘是機體自我產生、不受外界因素控制的時間節律性,與衰老、代謝紊亂、腫瘤形成等現象息息相關。生物節律是生物鐘的外在體現,包括亞日節律、近日節律、超日節律等。生物體通過近日節律調控腫瘤相關基因表達,生物鐘基因異常表達可能會造成近日節律失調,導致腫瘤形成的風險上升。生物鐘基因主要包括Periods(Per1-3)、Crystals(Cry1-2)、Bmal1、Clock、Ck1和Timeless[18-19]。Per2基因是近日節律系統的重要成員,參與多個信號通路,調節細胞周期及新陳代謝。研究發現,乳腺癌、卵巢癌、子宮內膜癌及肺癌組織中Per2蛋白普遍異常或缺失,Per2基因在癌旁組織中的表達水平明顯強于腫瘤組織[20-22]。淋巴瘤和白血病組織中Per2蛋白表達水平明顯低于正常組織,誘導Per2高度表達后,腫瘤細胞呈現出細胞周期停滯、增殖能力降低、凋亡速度加快等情況,這些結果暗示Per2在抑制腫瘤生長方面扮演重要角色。哺乳動物SIRT1基因是煙酰胺腺嘌呤二核苷酸依賴性組蛋白3脫乙酰酶,與酵母染色質沉默因子2最為同源,具有調節生物體新陳代謝、控制壽命長短等功能。SIRT1能通過去乙酰化與Per2發生作用,SIRT1被激活后,可使Per2去乙酰化,去乙?;腜er2可被磷酸化后降解,如此周而復始[23-25]。研究發現,SIRT1在腫瘤形成過程中兼具致癌和抑癌基因的功能,其作用關鍵在于維持致癌和抑癌基因的平衡關系[26-27]。本研究中qRT-PCR和Western blot檢測結果顯示,紫素組、Abraxne組Lewis肺癌小鼠腫瘤組織中Per2、SIRT1 mRNA和蛋白表達水平較模型組升高;Abraxne組Lewis肺癌小鼠腫瘤組織中Per2、SIRT1 mRNA和蛋白表達水平較紫素組更高,推測紫杉醇抑制Lewis肺癌小鼠腫瘤生長的作用機制可能與生物鐘基因Per2、SIRT1表達被激活有關,且Abraxne較紫素更能促進腫瘤組織中Per2和SIRT1蛋白的表達,Abraxne在臨床上治療肺癌的效果可能會更好。本研究的不足之處在于未闡明Per2基因的具體抑癌機制,在后續的研究中將對此進一步深入探究。

綜上所述,本研究通過右腋部背側皮下接種LLC復制Lewis肺癌小鼠模型,Abraxne干預后小鼠生長狀況明顯優于紫素組,腫瘤生長明顯受到抑制,腫瘤組織中Per2、SIRT1 mRNA和蛋白表達水平較模型組、紫素組升高,說明Abraxne治療肺癌的效果更好、更安全,其作用機制可能與生物鐘基因Per2、SIRT1表達被強化有關。然而,肺癌發生、發展的相關因素很多,相關機制復雜,臨床治療肺癌的相關作用機制還需繼續深入探究。

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