劉雪紅, 宋 平, 孫進健
(大連市獸藥飼料監察所,遼寧大連 116037)
目前,飼料中喹乙醇與喹烯酮的檢測方法主要有酶聯免疫分析法(趙春保等,2008)、高效液相色譜法(劉發全等,2008)、高效液相色譜-串聯質譜法 (2349號公告-6,2015;2086號公告-5,2014)。免疫分析法樣品前處理簡單、檢測速度快,但容易產生假陽性或假陰性的結果;液相色譜法靈敏度較低,檢出限較高;液相色譜—串聯質譜法是應用較廣泛的檢測飼料中喹 啉類藥物的方法。文獻報道較多的是采用HLB固相萃取柱凈化,樣品前處理需配制多種試劑,操作步驟多,而且凈化所用固相萃取柱使用前需活化,備用液過柱后,需淋洗。整個前處理過程較長,費時費力。本文采用PRiME HLB固相萃取柱凈化,Atlantis T3色譜柱分離,僅需配制1種試劑,無需氮吹,且所用的固相萃取柱無需活化和淋洗,分析速度快、回收率高,能滿足定性、定量的要求。
1.1 儀器與設備 電子天平RD-200,德國Sartorius公司;超聲波清洗器 KQ-250B,昆山市超聲儀器有限公司;立式低溫高速離心機CF16RN,日立公司;數顯強力渦旋混合器 MS3,德國 IKA公司;液相色譜質譜聯用儀UPLC XEVO TQ-S,美國Waters公司;色譜柱 Atlantis T3(2.1 mm×150 mm 5μm),美國Waters公司;色譜柱 ACQUITY UPLC BEH C18 (2.1mm×50mm 1.7μm),美國Waters公司;固相萃取柱 Oasis PRiME(HLB 3 mL 60 mg)。
1.2 藥品與試劑
1.2.1 標準品 喹乙醇批號H0061103,含量99.5%;喹烯酮 批號H0561305,含量99.6%,均來自中國獸醫藥品監察所。
1.2.2 供試品
1.2.2.1 空白樣品 乳豬配合飼料:遼寧禾豐牧業股份有限公司,經檢測不含喹乙醇和喹烯酮。
1.2.2.2 空白添加樣品 分別按照0.2、0.4、2 mg/kg的比例在空白樣品中添加喹乙醇和喹烯酮標準品,混勻。
1.2.3 試劑 甲醇、乙腈、甲酸色譜純,水為符合GB/T 6682規定的一級水。
0.1%甲酸溶液:量取1.0 mL甲酸與1000 mL水,混勻。 0.1%甲酸-乙腈(2+8)溶液:量取200 mL 0.1%甲酸溶液與800 mL乙腈,混勻。0.1%甲酸-乙腈(8+2)溶液:量取 800 mL 0.1%甲酸中溶液與200 mL乙腈,混勻。
1.2.4 混合標準貯備液(1000 μg/mL) 分別準確稱取喹乙醇和喹烯酮對照品各10 mg,于10 mL棕色容量瓶中,加2 mL二甲亞砜溶解,并用甲醇定容。-20℃密封避光保存,有效期為3個月。
1.2.5 混合標準工作液配制(10 μg/mL) 精密量取1.2.4項下混合標準貯備液1 mL用乙腈稀釋定容100 mL。-20℃密封避光保存,有效期為3個月。
喹烯酮和喹乙醇均對光敏感,見光易分解,所以在整個實驗過程中必須避光操作,所用的器皿應盡可能采用棕色。
1.3 樣品檢測
1.3.1 樣品處理
1.3.1.1 提取 稱取2.00 g試樣 (精確至0.01 g),于聚丙烯離心管中,加入0.1%甲酸-乙腈溶液(2+8)20 mL, 渦動 1 min,40℃ 超聲波清洗儀中超聲10 min。9000 r/min下離心15 min,備用。
1.3.1.2 凈化 精密量取1 mL上清液,直接過PRiME HLB固相萃取柱,收集全部流出液,精密量取3 mL水與之混勻,過0.22 μm濾膜供上機檢測。
1.3.2 液相色譜條件 色譜柱:Atlantis T3,柱溫:30℃,進樣量:5 μL,梯度洗脫程序見表 1。

表1 梯度洗脫程序
1.3.3 質譜條件 離子掃描方式:正離子,檢測方式:多反應監測,霧化器壓力:7.0 Bar,干燥氣流量:650 L/h,干燥氣溫度:400℃,毛細管電壓:3000 V定性、定量離子對和錐孔電壓及碰撞能量見表2。

表2 定性、定量離子對和錐孔電壓及碰撞能量
1.3.4 標準曲線繪制 精密量取1.2.5混合標準工作液逐級稀釋,以1.2.3.3稀釋液定容配制成濃度分別為 5、20、80、200、500 ng/mL 標準曲線溶液,混勻后上機測定。
2.1 標準曲線 以特征離子質量色譜峰面積為縱坐標,標準溶液濃度(ng/mL)為橫坐標,繪制標準曲線。2種藥物在5~500 ng/mL時線性關系良好,相關系數均在0.996以上(表3)。

表3 2種藥物的標準曲線及相關系數
2.2 檢測限和定量限 添加適量混合標準工作液于空白飼料中,經提取后測定。根據特征質量色譜峰的信躁比S/N>3為檢測限,信躁比S/N>10為定量限,檢測到2種藥物的檢測限為0.06 mg/kg,定量限為0.2 mg/kg。空白飼料中添加0.2 mg/kg的2種藥物特征離子質量色譜圖見圖1。

圖1 空白飼料中添加0.2 mg/kg的2種藥物特征離子質量色譜圖
2.3 回收率及重復性實驗 在空白飼料中添加3個不同濃度(0.2、0.4、2 mg/kg)2 種藥物,進行回收率實驗,每個添加濃度做5個平行,連續測定3批,其平均回收率、相對標準偏差見表4。從表中實驗結果可以看出2種藥物的添加回收率為80%~95.5%,批內批間相對標準偏差均小于10%。
3.1 選用Atlantis T3色譜柱分離,2種藥物峰形均良好。見圖1。采用C18色譜柱分離,喹烯酮峰形良好,喹乙醇受基質干擾,峰形很差,見圖2。
3.2 采用目前的方法進行檢測,與文獻中報道的液相色譜質譜法比較,減少試劑的使用及操作步驟,節省試劑和時間,提高了檢測效率。前處理方法比較見表5。

表4 2種藥物回收率及重復性實驗結果(n=5)

圖2 2種藥物(添加0.2 mg/kg)采用BEH C18色譜柱分離特征離子質量色譜圖
3.3 基質效應研究 由于液相色譜-串聯質譜存在基質效應,而且飼料樣品基質復雜,因此對樣品基質效應進行研究。比較3個不同條件下的信號峰面積:純的標準品溶液,樣品基質提取后添加,樣品基質提取前添加。在優化實驗條件下,用空白樣品按“1.3.1”方法制作空白基質,加入一定量標準溶液,制成基質標準溶液;在空白樣品中加入一定量標準溶液,按“1.3.1”方法制成基質匹配標準溶液;與相應濃度的純標準溶液比較。實驗結果發現,無明顯基質效應,因此定量時采用純的標準品曲線。

表5 2種前處理方法比較
該檢測方法,定量限為0.2 mg/kg,在0.2、0.4、2 mg/kg添加水平下,喹乙醇和喹烯酮平均回收率為80%~95.5%,相對標準偏差均小于10%。實驗流程更簡單、更快速、更有效,適合大批量日常分析檢測。