俞斐 章浙忠 陳琳 魯遙
作者單位:310000 浙江中醫(yī)藥大學附屬第一醫(yī)院
原發(fā)性肝癌(primary liver cancer,PLC)是臨床上最為常見的消化道惡性腫瘤之一,起病隱匿,病死率高,在腫瘤致死原因中位居第二位[1]。絕大數(shù)患者確診時已為中晚期,從而失去了外科手術治療的機會而采用化療,但不良反應較多[2]。姜黃素(CUR)自從被報道具有抗癌活性以來,廣泛受到國內(nèi)外學者的關注。現(xiàn)代藥理研究表明,CUR可抑制癌細胞的生長,在腫瘤的治療方面,CUR的作用顯著。但由于其水溶性和穩(wěn)定性差,在腸道易發(fā)生葡萄糖醛酸轉移酶介導的Ⅱ型代謝,口服后在體內(nèi)代謝快,血藥濃度較低,生物利用度差,嚴重地限制了其臨床應用[3]。四氫姜黃素(THC)作為姜黃素的體內(nèi)代謝產(chǎn)物,本實驗對THC進行抗腫瘤活性評價及其初步的機制探討,為更好的開發(fā)和利用姜黃素類化合物的藥用價值提供實驗依據(jù)和研究基礎。
1.1 動物及肝癌細胞株 健康雄性昆明KM小鼠90只,體質量(20±2)g,浙江中醫(yī)藥大學動物實驗中心提供;小鼠腹水型H22肝癌細胞株購于中國科學院上海細胞庫。
1.2 主要試劑與儀器 THC購于國藥集團化學試劑有限公司;環(huán)磷酰胺(CTX)購于上海國藥控股有限公司;冰醋酸、Tween-80購于廣東光華化學廠有限公司;蛋白定量試劑盒購于上海貝博生物科技有限公司。AR1140電子天平(美國奧豪斯公司);SW-CJ-1F超凈工作臺(蘇凈集團安泰公司);DHG-9023A電熱恒溫鼓風干燥箱(上海精宏實驗設備有限公司)。
1.3 方法 (1)藥物劑量設計:本節(jié)實驗研宄中(除了用以初步探討作用機制的H22腹水瘤小鼠模型),雄性KM小鼠被隨機分成6組,每組各10只。所有小鼠在實驗前適應性飼養(yǎng)7d。正常組(Intact)和模型組(Vehicle)給予預防藥物的相應溶劑(0.5%Tween-80),預防給藥組小鼠給予低、中、高劑量的THC(5、10、20mg/kg)、環(huán)磷酰胺(CTX,30mg/kg),按0.1ml/10g體重給藥1次/d,連續(xù)給藥7d。(2)小鼠造模:將H22腹水瘤細胞凍存管從液氮罐中取出,置于37℃的溫水中使其融化,然后用吸管吸取適量細胞懸液至離心管內(nèi),加入10倍量無菌PBS緩沖液,混勻后于臺式離心機中離心5min(1000r/min),棄去上清液,收集H22細胞,重復清洗操作三次;之后用無菌PBS緩沖液調整為1×107/ml的細胞懸液,取100μl置于1ml EP管內(nèi),向其中加入等體積的0.4%臺盼藍染液,混勻后通過顯微鏡觀察,利用臺盼藍拒染法進行細胞計數(shù),觀察H22細胞的存活率。經(jīng)觀察后計算,細胞存活率>96%。隨后向每只小鼠腹腔注射H22細胞懸液0.2ml復制H22腹水瘤小鼠模型(相當于瘤細胞數(shù)2×106/只),正常組除外。
1.4 H22腹水瘤模型小鼠生存周期實驗 小鼠腹水瘤造模成功24 h后,將KM小鼠隨機分為6組:空白對照組,模型對照組,陽性對照(CTX)組,THC低、中、高劑量組,每組各10只,除陽性對照(CTX)組腹腔注射(0.1ml/10g)給藥外,其余各組灌胃給藥1次/d,連續(xù)7d,每日觀察各組小鼠生活、飲食情況以及毛色等外觀狀況,統(tǒng)計各組小鼠的生存周期,比較各組之間的差異。
1.5 細胞計數(shù)分析儀檢測細胞活力與Western Blot檢測蛋白表達 鼠腹水瘤造模成功24h后,將KM小鼠隨機分為3組:模型對照組、陽性對照(CTX)組和THC(20mg/kg)組,每組各10只,除陽性對照(CTX)組腹腔注射給藥外,其余各組灌胃給藥,按0.1ml/10g體重給藥1次/d,連續(xù)給藥7d。每次灌胃前,測量統(tǒng)計各小組的體重。末次給藥1h后,脫頸處死各組小鼠,用無菌注射器抽取每只小鼠的腹水,取200μl用PBS緩沖鹽溶液處理后,立即檢測其細胞活力(全自動細胞計數(shù)分析儀),另外腹水收集后采用Western Blot檢測H22腹水瘤細胞中的Bax、Bcl-2的蛋白表達水平。取各組小鼠的胸腺和脾臟組織,精密稱重后記錄各組小鼠的免疫臟器重量。
1.6 統(tǒng)計學方法 采用SPSS22.0統(tǒng)計軟件。計量資料以(±s)表示,各組間的差異比較采用方差分析(One-way ANOVA),實驗結果以P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 THC對H22腹水瘤模型小鼠生存周期的影響 THC對H22腹水瘤小鼠生存周期的影響如圖1所示,在接種H22腹水瘤細胞4~5 d后,各組小鼠飲食和活動均開始減少,腹部開始出現(xiàn)膨脹,喜歡群居和蜷臥,體重也明顯增加。與模型組相比,THC(5、10、20mg/kg)給藥組能延長小鼠的生存周期,平均生存時間隨著給藥劑量的升高而提高,且與模型組差異顯著(THC低劑量組:P<0.05,其余各組:P<0.001),結果提示,THC能顯著延長小鼠的生存周期。因此,在后續(xù)實驗中,選取THC的高劑量組(20 mg/kg)對H22腹水瘤小鼠模型進行初步的機制探討。

圖1 THC對H22腹水瘤模型小鼠生存周期的影響(n=10,?P<0.05,#P<0.001)
2.2 THC對H22腹水瘤模型小鼠體重及腹水瘤細胞活力的影響 如圖2、3所示,給小鼠接種H22腹水瘤細胞后,小鼠的體重顯著上升,與模型組小鼠相比,THC在第5天后能明顯抑制小鼠的體重(5~7d,P<0.001);與模型組相比,THC治療后H22腹水瘤細胞活力顯著下降(P<0.001),提示THC對小鼠惡性腹水有抑制作用。

圖2 THC對H22腹水瘤模型小鼠體重的影響

圖3 THC對H22腹水瘤細胞活力的影響(n=10,?P<0.05,???P<0.001)
2.3 THC對H22腹水瘤模型小鼠免疫器官的影響 THC對腹水瘤小鼠免疫臟器的影響如圖4所示,由圖可知與空白組小鼠相比,接種H22腹水瘤細胞后小鼠的免疫器官無明顯影響,而在給予THC干預后,小鼠的脾臟指數(shù)和胸腺指數(shù)也均無明顯變化,表明給予THC后對小鼠的免疫器官無明顯影響;相反,給予陽性藥CTX治療后,小鼠的脾臟指數(shù)(P<0.001)和胸腺指數(shù)(P<0.001)均顯著下降,表明陽性藥CTX可能對小鼠的免疫器官有毒副作用。
2.4 THC對H22腹水瘤模型小鼠Bax、Bcl-2蛋白表達水平的影響 THC對腹水瘤小鼠Bax、Bcl-2蛋白表達的影響如圖5所示,在分析統(tǒng)計各組小鼠條帶的灰度值后發(fā)現(xiàn),THC給藥組與模型組小鼠相比能顯著提高Bax的蛋白表達(均P<0.01)和抑制Bcl-2的蛋白表達含量(均P<0.01),提示THC可能參與了Bcl-2介導的線粒體凋亡通路并能改善Bcl-2體系的蛋白表達。

圖4 THC對H22腹水瘤模型小鼠免疫器官的影響(n=10,?P<0.001)

圖5 THC對H22腹水瘤模型小鼠Bax、Bcl-2蛋白表達水平的影響(n=3,?P<0.01)
在H22腹水瘤模型小鼠生存周期實驗中,THC能顯著延長小鼠的生存周期。而在后面對各組小鼠的體重、細胞活力和免疫器官指數(shù)進行統(tǒng)計分析的時候發(fā)現(xiàn),THC能有效抑制腹水瘤小鼠體重,抑制小鼠腹水細胞的活力,與陽性藥CTX相比THC不影響小鼠體內(nèi)的免疫器官,提示THC基本無毒副作用。因此在后續(xù)的實驗中,初步探究THC對H22腹水瘤模型小鼠的作用機制。
細胞的增殖和凋亡的動態(tài)平衡與腫瘤的發(fā)生發(fā)展密切相關。許多蛋白在細胞凋亡的發(fā)生和發(fā)展過程中發(fā)揮了重要的作用[4]。Bcl2家族蛋白是細胞內(nèi)一組結構上同源功能上相關的蛋白。主要分為兩大類:一類是抑制細胞凋亡,如Bcl2、Bcl-xl等;另一類是促進細胞凋亡,如Bax、Bcl-xs等。其中Bcl2、Bax的表達為代表。Bcl2和Bax蛋白水平表達的高低,與細胞凋亡直接相關。Bax和Bcl-2通過形成同源或異源二聚體來調節(jié)細胞凋亡,當Bax形成同源二聚體時誘導細胞凋亡;Bax與Bcl-2形成異源二聚體時則實現(xiàn)了Bcl-2抑制細胞凋亡的功能。這與本實驗研究中發(fā)現(xiàn)THC給藥組與模型組小鼠相比能顯著提高Bax的蛋白表達(均P<0.01)和抑制Bcl-2的蛋白表達含量(均P<0.01)的結果類似。更多的臨床研究表明,多種不同類型的腫瘤均出現(xiàn)了Bax蛋白水平表達下降,Bcl2表達升高的現(xiàn)象,其兩者比例決定了細胞凋亡的走向。若Bcl-2/Bax比例增高,則抑制細胞凋亡,反之,則促進細胞凋亡[5]。
在本實驗H22腹水瘤模型小鼠的實驗研究中發(fā)現(xiàn)THC能提高腹水瘤小鼠的生活質量和生存周期,降低小鼠的體重和腹水量。進一步的機制研究表明THC能夠通過上調Bax蛋白水平,下調Bcl-2蛋白水平,提示THC可通過調節(jié)凋亡相關蛋白而抑制H22腹水瘤的生長,從而為四氫姜黃素的進一步研究提供理論基礎。