藺 瑩,姚瓔珈,梁喜才,時 悅,倪穎男,吳雨桐,楊靜嫻
(遼寧中醫藥大學藥學院,遼寧 大連 116600)
阿爾茨海默病( Alzheimer’s disease,AD )是一種發病過程漫長,多發生于中老年人,具有一定遺傳性的神經退行性疾病。主要的臨床表現為記憶力的減退以及認知功能的缺失[1-2]。關于AD的發病機制存在著多種假說,其中β淀粉樣蛋白(amyloid β-protein,Aβ)沉積學說是當今的研究熱點。β-分泌酶1(β-site APP cleaved enzyme-1,BACE-1)作為Aβ生成的限制酶,促進淀粉樣前體蛋白(amyloid precursor protein,APP)水解成Aβ,間接控制著Aβ產生。BACE-1活性增強,Aβ生成增多,易導致Aβ異常聚集,沉積在腦內引起炎癥等反應,造成神經元丟失、腦組織萎縮[3-4]。因此,抑制BACE-1表達,減少Aβ的生成,可以延緩AD的發生。
蛇床子素(osthole,OST)又名甲氧基歐芹酚(C15H16O3),是傘形科植物獨活中的活性單體[5]。現代藥理學發現,OST具有廣泛的藥理作用,包括抗炎、抗凋亡、抗氧化應激等[5-7]。中醫中,獨活具有溫腎壯陽、燥濕、祛風、殺蟲等作用。實驗室前期研究發現,OST可以調控miRNA-9,并且對神經系統具有一定的保護作用[8-10]。體內實驗發現,以20 mg·kg-1OST灌胃給予APP/PS1小鼠,對AD有一定的治療作用[11]。
MicroRNAs (miRNAs)是一種調節內源性基因的非編碼小RNA,它主要通過抑制mRNA的翻譯或促進其降解而發揮作用[12]。近年來研究表明,AD的發生與多種miRNAs異常表達相關。現代藥理學研究中,miRNAs可以作為診斷某種疾病的標志,并且miRNAs幾乎可以調控人體內每一個生理過程[13]。本實驗利用基因芯片技術,篩選差異表達的miRNA,并利用生物信息學預測miRNA調控的下游靶基因,探討OST治療AD的作用機制。
1.1材料
1.1.1實驗動物與細胞株 9月齡的APP/PS1雙轉基因小鼠20只,♀♂各半,體質量(26±4)g,購自北京中科澤晟生物技術有限公司[SCXK(京)2013-0002];SPF級C57BL/6小鼠10只,♀♂各半,體質量(23±3)g,購于遼寧長生生物有限公司[SCXK(遼):2010-0001]。293T細胞株、人神經母細胞瘤細胞株SH-SY5Y,均由首都醫科大學提供。
1.1.2試劑 OST,購于中藥食品藥品研究所(批號:110822-200407);APP595/596質粒、GFP質粒,以及輔助質粒 pLP1、pLP2、pMDG,由天津醫科大學提供;miRNA-9抑制劑,蘇州吉瑪基因股份有限公司產品;BACE-1引物,大連萬澤生物技術有限責任公司產品;兔抗BACE-1、兔抗β-actin抗體,北京博奧森生物技術有限公司產品;DAPI染液,美國Sigma公司產品;Bradford法蛋白濃度試劑盒,江蘇凱基生物技術股份有限公司產品。
1.1.3儀器 天平(德國賽多利斯艾科勒);Ti-S型熒光顯微鏡(日本尼康公司);二氧化碳培養箱(美國Nuaire公司);MG96G PCR儀(杭州朗基科學儀器有限公司);水平核酸電泳儀、半干式蛋白轉膜儀(美國Bio-Rad公司);凝膠成像系統(上海天能科技有限公司)、MR-96A酶標儀(深圳邁瑞公司)。
1.2方法
1.2.1基因芯片技術篩選差異表達miRNA 取OST16 mg,溶解于2 mL PEG400中,加入ddH2O稀釋至4 mL,4 ℃備用。9月齡APP/PS1小鼠,♀♂各半,將APP/PS1小鼠隨機分為模型組(APP組)和給藥組(OST組),每組10只;另取C57BL/6小鼠作為空白對照組(Control)。給藥組小鼠以20 mg·kg-1OST灌胃給藥,每日兩次,連續灌胃6周;對照組及模型組小鼠則以等劑量50% PEG400灌胃。
分別取模型組、OST組和空白組小鼠整腦,每組3只,提取總RNA,委托上海歐易生物醫學科技有限公司,采用 Agilent Mouse miRNA, Release 21.0芯片完成樣本檢測和分析。根據熱圖結果以及差異倍數變化值,進行差異miRNA篩選,篩選的標準為上調或者下調倍數變化值≥2.0,確定為OST調控較明顯的miRNAs。
1.2.2生物信息學預測miRNA調控靶基因 利用TargetScan(http://www.targetscan.org/vert_70/)、PicTar(https://pictar.mdc-berlin.de/)、DIANA(http://diana.imis.athena-innovation.gr/DianaTools/index.php)3個miRNA靶點預測數據庫,預測差異表達miRNA的下游靶基因,并利用Cytoscape關于miRNA的插件CytargetLinker驗證(https://projects.bigcat.unimaas.nl/cytargetlinker/linksets/)。
1.2.3APP高表達AD細胞模型的建立 將APP595/596、GFP以及輔助質粒pLP1、pLP2、pMDG按照一定的比例[12]轉染293T細胞;收集不同時間點的病毒液混合后,超濾管16 785×g離心1 h濃縮病毒液;將濃縮病毒液混合,并加入1%聚凝胺,轉染人神經母細胞瘤SH-SY5Y 細胞;用熒光倒置顯微鏡觀察綠色熒光,轉染3 d后,分別用RT-PCR和蛋白質印跡法檢測APP mRNA及蛋白的表達量[12]。單純GFP轉染的正常SH-SY5Y細胞為空白對照組。
1.2.4MTT法檢測細胞活性 將終濃度分別為25、50、75、100 μmol·L-1的OST分別加入APP高表達的SH-SY5Y細胞中,并設APP高表達的SH-SY5Y細胞為模型組,GFP轉染的正常SH-SY5Y細胞為空白對照組。每組3個復孔,每孔中加入100 μL培養基,培養過夜,加入MTT試劑,避光培養4 h;棄去培養液,加入DMSO溶液,搖床震搖10 min,最后在酶標儀570 nm處測量吸光度。
1.2.5RT-PCR檢測miRNA-9和BACE-1 mRNA表達 將5 μL miRNA-9抑制劑加入到45 μL基礎培養基中,同時將5 μL脂質體2000加入到45 μL基礎培養基,室溫放置5 min,將兩種混合物融合20 min后,加入到APP高表達的SH-SY5Y細胞中,即為抑制劑組;在此基礎上,再加入終濃度為50 μmol·L-1的OST,即OST+抑制劑組。按照方法“1.2.4”設立OST組(50 μmol·L-1)、模型對照組和空白對照組。各組細胞內加入TRIzol提取RNA,稀釋后測定各組RNA純度,將RNA逆轉錄成cDNA后,-80 ℃保存。進行PCR擴增,按照以下比例配制PCR擴增體系:DreamTag PCR Master Mix 25 μL,上、下游引物各1.5 μL,樣本cDNA 2 μL,水20 μL。反應條件如下:95 ℃ 2 min;95 ℃ 30 s,58 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,30個循環,72 ℃ 10 min。Image J進行光密度掃描。引物序列見Tab 1,miRNA-9引物由廣州市銳博生物科技有限公司設計并合成,引物序列因涉及保密,不予公開。

Tab 1 Sequences of primer of RT-PCR
1.2.6Western blot法觀察BACE-1表達 按照“1.2.5”設立分組,提取各組細胞蛋白,測定蛋白質濃度。各組蛋白上樣量均為50 μg,SDS-PAGE電泳,轉至PDVF膜(100 V,1 h),脫脂奶粉TBST液封閉1 h,兔抗BACE-1 (1 ∶200) 4 ℃孵育過夜,TBST洗膜后,與HRP標記的二抗(1 ∶2 000)雜交,凝膠成像系統拍照保存,并用 Image J定量測定信號強度。
1.2.7統計學方法 采用SPSS 13.0軟件進行數據統計,GraphPad Prim 5.0軟件繪制統計圖。由箱線圖判斷數據是否符合正態分布。符合正態分布的計量數據以表示,多組之間的比較采用方差分析,兩組間比較采用t檢驗。
2.1OST干預后差異表達miRNA篩選結果經過歐易生物進行各組小鼠腦組織樣本芯片篩選,結果顯示,模型組中上調的miRNAs有71個,下調的miRNAs 40個;而經過OST治療后,與模型組性比,上調的miRNAs 25個,下調的miRNAs 53個,我們將差異倍數(fold change,FC)≥2作為篩選標準,其中miRNA-9差異倍數>2。熱圖結果顯示(Fig 1),miRNA-9在3組之間表達差異明顯,可見miRNA-9是OST調控較明顯的miRNA。
2.2生物信息學驗證miRNA-9與BACE-1靶向結合通過TargetScan、PicTar、DIANA三個數據庫進行序列比對,發現miRNA-9可以與BACE-1靶向結合(Tab 2),后續利用Cytoscape驗證與BACE-1結合的miRNA有miRNA-9、miRNA-15b、miRNA-195等(Fig 2)。證明miRNA-9與BACE-1的靶向調控作用。

Tab 2 Sequence of miRNA-9 and BACE-1

Fig 1 MicroRNA differential expression demonstrated by clustering heat map


Fig 2 miRNA-9 binding to 3′-UTR of BACE-1 determined by bioinformatics

2.3成功建立APP高表達的AD細胞模型GFP慢病毒與帶有GFP標記的APP慢病毒感染SH-SY5Y神經細胞,成功感染GFP慢病毒與帶有GFP標記的APP慢病毒的SH-SY5Y具有綠色熒光(Fig 3A)。培養3 d后,經RT-PCR和Western blot驗證,感染APP慢病毒的神經細胞具有APP基因和蛋白的高表達(Fig 3B、3C),并且APP組中APP基因的表達是空白組(GFP組)的3倍,APP組中APP蛋白的表達是空白組的2倍,說明成功建立APP過表達的AD細胞模型。

Fig 3 Establishment of AD cells with over expression of APP

2.4OST對AD細胞模型的保護作用Fig 4的MTT結果顯示,OST對APP過表達SH-SY5Y細胞具有一定的保護作用。OST在50 μmol·L-1時,細胞的活力最高,而在75 μmol·L-1之后細胞活力呈下降趨勢。因此,后續細胞的給藥濃度選擇50 μmol·L-1。

Fig 4 Effects of osthole on cell activity n=3)
**P<0.01vsGFP group;##P<0.01vsAPP group
2.5OST通過上調miRNA-9抑制BACE-1mRNA表達將miRNA-9抑制劑轉染到AD細胞模型中,以OST濃度50 μmol.L-1給藥,建立抑制劑組、OST+抑制劑共處理組。RT-PCR結果顯示(Fig 5),與空白組相比,APP組中miRNA-9的表達明顯降低,給予OST治療后miRNA-9的表達相對模型組有所提高。BACE-1 mRNA在各組中的表達與miRNA-9的表達呈現負相關關系,模型組中BACE-1表達明顯增多,OST可以降低BACE-1的表達,抑制劑組BACE-1表達最多,OST與抑制劑共處理組BACE-1表達介于抑制劑組和OST組之間。
2.6OST通過上調miRNA-9抑制BACE-1蛋白的表達Fig 6的Western blot結果顯示,與GFP組相比,APP組的BACE-1蛋白明顯增多,給予OST治療后,BACE-1蛋白表達相對APP組有所降低,而抑制劑組BACE-1蛋白表達最多,OST與抑制劑共處理組BACE-1蛋白表達介于OST組和抑制組之間。說明OST可以通過上調miRNA-9,抑制BACE-1蛋白的表達。
AD是一種常見的嚴重影響人們生活質量的疾病,其特征為腦內積聚老年斑及神經原纖維纏結[13],AD現已成為降低人類生活質量最嚴重的疾病之一。AD發生存在著多種假說,其中Aβ學說是當今的研究熱點。正常人腦中Aβ的產生與降解會保持平衡,而BACE-1活性增強會加速對APP的裂解,從而大量生成Aβ,導致Aβ的沉積,產生神經毒性[14],激活一系列病理改變,進而誘導神經細胞的凋亡。因此,減少腦內APP裂解,即抑制BACE-1活性,就可以達到治療AD的作用。

Fig 5 Effects of osthole on expression of miR-9 and
**P<0.01vsGFP,##P<0.01vsAPP

Fig 6 Expression of BACE-1 with osthole treatment in cells n=10)
**P<0.01vsGFP;##P<0.01vsAPP
本實驗室前期研究表明,OST作為一種天然香豆素類化學成分,可以通過miRNAs直接調控下游靶基因,并且可以促進神經發生,改善APP/PS1小鼠腦區內學習認知能力[15]。本研究通過基因芯片技術,篩選OST干預APP/PS1小鼠后差異表達的miRNA-9,并且通過生物信息學分析,驗證miRNA-9可以調控靶基因BACE-1的表達,將miRNA-9抑制劑轉入APP高表達的AD細胞模型,發現模型組與對照組相比,BACE1蛋白的表達明顯增高。給藥后,BACE1蛋白表達相對模型組明顯降低,抑制劑組BACE1蛋白表達最高,OST與抑制劑共處理組BACE1蛋白表達在給藥組與抑制劑組之間,差異皆有統計學意義。說明OST可以通過上調miRNA-9,抑制BACE-1表達,從而達到治療AD的作用。獨活抗AD的分子機制比較復雜,調控miRNA-9的內在機制以及對其他miRNA的調控作用仍是未知,后續要通過大量實驗研究,為獨活應用于臨床治療AD提供依據。
綜上所述,OST能夠靶向調節miRNA-9,抑制BACE-1表達,從而達到治療AD的作用,本研究為治療AD相關新藥研發提供了重要的實驗依據。