花朋朋,熊 煜,于志穎,劉 斌,,趙立娜
(1.福建農(nóng)林大學食品科學學院,福建福州 350002;2.國家菌草工程技術研究中心,福建福州 350002)
小球藻(Chlorella pacifica)是一種單細胞綠藻,屬于綠藻門 (Chlorophyra)、綠藻綱 (Chlorophyceae)、小球藻屬(Chlorella),具有生長繁殖迅速等特點。小球藻富蛋白質(zhì)[1],營養(yǎng)價值高,易于被人體吸收,包含8種人體必需氨基酸,完全能滿足人、動物的生長所需,具有很高的應用價值[2-4]。目前,國內(nèi)外的研究熱點是藻類蛋白活性肽,大部分研究主要集中在開發(fā)藻類多肽的抗氧化、抗菌、降壓、降脂、預防骨質(zhì)疏松等生物活性免疫調(diào)節(jié)等功能性生物活性肽[5],然而對小球藻鈣螯合肽活性的研究卻不常見。
鈣在人體機能中扮演著重要功能作用,當機體攝入鈣不足會造成佝僂病、軟骨病、骨質(zhì)疏松等各種疾病,同時會對人類的生命健康造成重大的危害[6。目前市場上鈣補充制劑很多,主要有無機鈣、有機鈣[7]。然而,眾多補鈣產(chǎn)品的生產(chǎn)及銷售并未能從根本上改變?nèi)藗兊娜扁}問題,其原因在于一方面人體對鈣的攝入不夠,另外一方面就是人體機能內(nèi)部對鈣的有效吸收率低[8],隨之而來又有一個弊端,雖然一些有機鈣制劑能夠可以大量被機體吸收,但會伴隨負反饋調(diào)節(jié)系統(tǒng)失調(diào),反而抑制鈣的吸收。目前,已發(fā)現(xiàn)多肽具有礦質(zhì)載體的作用,可與金屬離子螯合形成多肽-鈣復合物,進而促進小腸對鈣的吸收,如牛乳酪蛋白磷酸肽[9]、蛋黃肽、大豆蛋白肽、魚鱗及魚骨肽[10-18]。但這些多肽制備價格昂貴,因此小球藻多肽螯合鈣以其生物效價高、易吸收、無毒、無刺激作用等優(yōu)點[19]成為了為第4代補鈣制劑,得到了人們的青睞。
試驗以小球藻為原料,通過中性蛋白酶酶解法,來制備小球藻多肽,并將其與Ca2+進行螯合,目的在研發(fā)具有螯合率較高的小球藻多肽-鈣螯合物。利用單因素試驗探究了螯合時間、螯合溫度、螯合肽鈣質(zhì)量比、螯合底物質(zhì)量分數(shù)和pH值對螯合率的影響。并通過響應面試驗優(yōu)化制備工藝,制得了較高品質(zhì)的小球藻多肽-鈣螯合物。該研究可充分發(fā)揮多肽和礦物質(zhì)元素對人體的雙重營養(yǎng)功能特性,為小球藻應用開發(fā)提供了一種新的開拓思路。
小球藻,臺灣綠藻工業(yè)股份有限公司提供;中性蛋白酶,北京索萊寶科技有限公司提供;EDTA、氫氧化鉀(KOH)、三乙醇胺、鈣指示劑、CaCl2、鈣羧酸指示劑、無水乙醇和氫氧化鈉(NaOH)等,均為分析純;去離子水,實驗室自制。
TDL-5-A型低速離心機,湖南凱達科學儀器有限公司產(chǎn)品;FE20型精密pH計、ZD-2型雷磁電位自動滴定儀,上海儀電科學儀器股份有限公司產(chǎn)品;FD-3型冷凍干燥機,河北國輝實驗儀器有限公司產(chǎn)品;電子分析天平,上?;茖嶒炂鞑挠邢薰井a(chǎn)品;SHA.B型精達水浴恒溫振蕩器,常州精達儀器制造有限公司產(chǎn)品。
1.3.1 小球藻多肽的制備流程[20]
小球藻→去離子水溶解(料液比1∶30)→添加NaOH(溶液質(zhì)量分數(shù)為4%)→在50℃下水浴1 h→6層紗布過濾→離心(5 000 r/min,10 min) →取上清液→調(diào)pH值3(30 min) →離心(5 000 r/min,10 min)→沉淀冷凍干燥→小球藻蛋白→去離子水溶解(料液比1∶30)→調(diào)整pH值7.5→中性蛋白酶酶解(40℃)→40℃水浴6 h→沸水浴滅酶(10 min)→離心(4 500 r/min,10 min) →上清液(小球藻多肽溶液)→冷凍干燥→小球藻多肽。
1.3.2 小球藻多肽-鈣螯合物的制備
稱取一定量小球藻多肽復溶成一定濃度的多肽溶液,加入1 mol/L NaOH調(diào)整pH值為9.0,按一定質(zhì)量比加入鈣離子(以無水氯化鈣的形式),將其放置于一定溫度的水浴搖床中充分反應一段時間,反應后置于室溫冷卻,以轉(zhuǎn)速4 500 r/min離心10 min取上清液,加入5倍體積的95%乙醇溶液,靜置沉淀12 h,以轉(zhuǎn)速4 500 r/min離心10 min取沉淀,用無水乙醇對沉淀物洗滌數(shù)次,將其置于烘箱中進行低溫干燥處理,使無水乙醇揮發(fā),然后進行凍干獲得多肽-鈣螯合物粉末。
1.3.3 測定總鈣含量的測定[21]
反應液與去離子水以0.1∶50(mL∶mL),依此將2~3 mL三乙醇胺、0.8~1.0 mL氫氧化鉀溶液、適量鈣指示劑加入,搖勻,接著用EDTA溶液滴定,溶液從紫紅色變成純藍色為終點,記錄EDTA體積V0。根據(jù)公式計算可得總鈣含量M0。

反應液與去離子水以0.1∶50(mL∶mL),量筒量入20 mL的乙醇,恒溫條件下振搖1 h,以轉(zhuǎn)速3 500 r/min離心10 min,去除上清液,蒸餾水定容20 mL,吸取2 mL此溶液,同1.3.3步驟(EDTA滴定),記錄EDTA體積V1。根據(jù)公式計算可得螯合鈣含量 M1。


式中:M0——反應液中總鈣含量,g;
M1——表示同體積反應液中螯合鈣的鈣含量,g。
1.3.6 螯合條件單因素試驗
(1)螯合時間對鈣螯合率的影響。稱取小球藻多肽2 g,底物質(zhì)量分數(shù)3%,調(diào)整pH值為8,肽鈣質(zhì)量比1∶2水浴搖床溫度設置40℃,螯合時間分別為 20,30,40,50,60,70,80 min,測 3 次螯合率。
(2)螯合溫度對鈣螯合率的影響。取小球藻多肽2 g,底物質(zhì)量分數(shù)3%,調(diào)整pH值為8,肽鈣質(zhì)量比1∶2,水浴搖床溫度分別設置30,40,50,60,70,80℃,螯合時間50 min,測3次螯合率.
(3)肽鈣質(zhì)量比對鈣螯合率的影響。稱取小球藻多肽2 g,底物質(zhì)量分數(shù)3%,調(diào)整pH值為8,肽鈣質(zhì)量比分別為 1∶1,2∶1,3∶1,4∶1,5∶1,水浴搖床溫度設置50℃,螯合時間50 min,測3次螯合率。
(4)底物質(zhì)量分數(shù)對鈣螯合率的影響。稱取小球藻多肽2 g,底物質(zhì)量分數(shù)2%,3%,4%,5%,6%,7%,調(diào)整pH值為8,肽鈣質(zhì)量比3∶1,水浴搖床溫度設置50℃,螯合時間50 min,測3次螯合率。
(5)pH值對鈣螯合率的影響。稱取小球藻多肽2 g,底物質(zhì)量分數(shù)3%,調(diào)整pH值分別為5,6,7,8,9,10,11,12,肽鈣質(zhì)量比3∶1,水浴搖床溫度設置50℃,螯合時間50 min,測3次螯合率。
1.3.7 響應面試驗設計
根據(jù)單因素試驗結果,以鈣螯合率為指標,選取4個對鈣螯合率影響最顯著的因素(螯合溫度、肽鈣質(zhì)量比、底物質(zhì)量分數(shù)、pH值),采用Box-Behnken組合方法進行四因素三水平響應面試驗設計,同時運用Design Expert 8.1軟件設計試驗對數(shù)據(jù)進行分析。
2.1.1 螯合時間對鈣螯合率的影響
螯合時間對鈣螯合率的影響見圖1。

圖1 螯合時間對鈣螯合率的影響
由圖1可知,鈣螯合時間在20~50 min時,鈣螯合率隨螯合時間的延長而升高;當螯合時間在50 min時,鈣螯合率最高,達到79%±0.02%;但是,當螯合時間大于50 min時,鈣螯合率開始下降。此現(xiàn)象說明螯合時間過長,很容易造成鈣螯合物結構的不穩(wěn)定,反而不利于鈣螯合物的發(fā)生[22-23]。此結果表明螯合時間對鈣螯合率沒有顯著性差異,說明鈣螯合反應迅速,螯合時間對螯合率的影響較小[24]。所以在后續(xù)的螯合試驗中,選擇螯合時間為50 min。
2.1.2 螯合溫度對鈣螯合率的影響
螯合溫度對鈣螯合率的影響見圖2。

圖2 螯合溫度對鈣螯合率的影響
由圖2可知,鈣螯合溫度在30~60℃時,鈣螯合率快速增加;在60℃時,鈣螯合率最高,達到85%±0.01%;當螯合溫度大于60℃時,鈣螯合率開始下降,原因在于一方面溫度過高會使氨基酸或者小肽發(fā)生羰氨反應,與鈣離子形成競爭,導致鈣螯合率降低,另一方面溫度過低會使螯合反應速率變慢[25-27]。因此螯合溫度定位60℃,進行后續(xù)響應面優(yōu)化試驗。
2.1.3 肽鈣質(zhì)量比對鈣螯合率的影響
多肽與氯化鈣質(zhì)量比對鈣螯合率的影響見圖3。

圖3 多肽與氯化鈣質(zhì)量比對螯合率的影響
由圖3所示,當小球藻多肽與鈣質(zhì)量比為3∶1時,鈣螯合率最大為87%±0.02%,繼續(xù)增大氯化鈣質(zhì)量,鈣螯合率開始下降;當氯化鈣的添加量較小,多肽過量時,使得部分多肽無法與鈣離子形成穩(wěn)定結構,造成了活性多肽的浪費,當Ca2+含量過高時,多肽中的鈣螯合位點達到飽和狀態(tài),導致大多數(shù)鈣以游離態(tài)的形式出現(xiàn)在反應體系中,最終導致鈣螯合率的較低[28]。最終選擇肽鈣質(zhì)量比為3∶1,進行后續(xù)響應面的優(yōu)化。
2.1.4 底物質(zhì)量分數(shù)對鈣螯合率的影響
底物質(zhì)量分數(shù)對鈣螯合率的影響見圖4。

圖4 底物質(zhì)量分數(shù)對鈣螯合率的影響
由圖4可知,在底物質(zhì)量分數(shù)為5%時,鈣螯合率最大為90%±0.01%,再增加多肽質(zhì)量濃度鈣螯合率反而下降。這可能是因為當多肽濃度較大時,會造成反應體系的黏度系數(shù),減小了二者的接觸面積和幾率,不利于螯合反應的進行,降低了鈣螯合率。最終,選擇底物質(zhì)量分數(shù)5%進行后續(xù)響應面試驗。
2.1.5 pH值對鈣螯合率的影響
pH值對鈣螯合率的影響見圖5。

圖5 pH值對鈣螯合率的影響
由圖5可知,當螯合液在酸性條件下時,鈣螯合率較低。這可能是由于H+與Ca2+二者發(fā)生對供電子基團的競爭[29],對小球藻多肽-鈣螯合物的生成造成了阻礙。當螯合液pH值在5.0~9.0時,隨著pH值的不斷升高,鈣螯合能力快速升高,在pH值9.0時,鈣螯合率最大為96%±0.01%;但pH值超過9.0時,鈣含量反而下降,此時可能因為在強堿條件下容易發(fā)生了一系列的副反應,導致鈣螯合率較低[30]。因此選擇pH值為9.0,進行后續(xù)響應面優(yōu)化試驗。
2.2.1 數(shù)學模型的建立及顯著性檢驗
響應面試驗設計和結果見表1。

表1 響應面試驗設計和結果
如表1所示,以鈣螯合率作為響應值,運用Design Expert回歸分析軟件分析表1中29個試驗點的響應值,綜合數(shù)據(jù)分析,各試驗單因素對鈣螯合率的影響,得出如下回歸方程:
響應面二次模型方差分析見表2。

表2 響應面二次模型方差分析
其回歸方程達到了極顯著水平(p<0.01),且失擬項不顯著(p>0.05),表明此建模成功。總決定系數(shù)R2=0.945 3,表明該方程是高度顯著的,即該模型預測值與實際試驗值擬合較好。由表2可知,D,AD,CD,BC,B2,C2,D2項都對鈣螯合率有顯著的影響,順序為pH值>肽鈣質(zhì)量比>底物質(zhì)量分數(shù)>螯合溫度。從響應面分析圖可以直觀地看到2個因素間的交互作用對鈣螯合率的影響大小,螯合溫度、肽鈣質(zhì)量比、底物質(zhì)量分數(shù)、pH值4個因素之間交互作用對鈣螯合率的影響。
如表2和圖6所示,對鈣螯合率影響最顯著的交互作用是底物質(zhì)量分數(shù)和pH值,其次是螯合溫度和pH值,而肽鈣質(zhì)量比和pH值之間的交互作用,對響應值沒有顯著差異。
2.2.2 響應面試驗分析及對小球藻多肽鈣-螯合物制備的優(yōu)化
通過Design Expert軟件綜合分析得出的回歸方程,讓各因素保持不變,只對回歸模型進行適宜的緯度調(diào)整,從而考查各因素間的交互作用對小球藻多肽-鈣螯合物鈣螯合率的影響。通過對回歸分析結果進行分析,作出響應面和等高線圖。
如圖6所示,等高線圖呈現(xiàn)橢圓形,說明二者交互作用顯著,同時相應面圖出現(xiàn)最高點,鈣螯合率值最大[31]。試驗表明,底物質(zhì)量分數(shù)和pH值之間、pH值和螯合時間之間存在著較顯著的交互作用。
交互作用對鈣螯合率影響的響應面圖見圖6。

圖6 交互作用對鈣螯合率影響的響應面圖
利用Design Expert軟件由所建的數(shù)學模型進行參數(shù)最優(yōu)分析,得出小球藻多肽-鈣螯合物的鈣螯合率最高參數(shù)條件為螯合溫度54.05℃,肽鈣質(zhì)量比3.13,底物質(zhì)量分數(shù)4.75%,pH值9.02,螯合時間50 min,鈣含量的預測值為96.14%,為適合操作,調(diào)整條件螯合溫度75℃,pH值9,肽鈣質(zhì)量比2∶1,底物質(zhì)量分數(shù)5%,螯合時間60 min,做3組平行試驗。對試驗進行驗證,得結果表明在此條件下螯合率為97.15%±0.001 225%,與預測值無顯著性差異(p>0.05)。證明此條件為小球藻多肽鈣螯合反應的最優(yōu)條件,該回歸方程可應用于實踐。
由響應面分析法優(yōu)化小球藻多肽與鈣螯合的最佳工藝條件為螯合溫度50℃,pH值9,肽鈣質(zhì)量比3∶1,底物質(zhì)量分數(shù)5%,螯合時間60 min,在此條件下制備的螯合物的鈣螯合率為97.15%±0.001 225%,與預測值96.14%沒有顯著性差異。小球藻多肽和鈣離子發(fā)生螯合反應,生成了一種新型多肽-鈣螯合物,為合成新型補鈣制劑的開發(fā)與利用提供了理論依據(jù),同時也為小球藻的開發(fā)利用提供了一個新的研究思路。