刁長英,王曉慧,謝藝林,劉亞清, 高獻爭, 李晟磊
1)鄭州大學第一附屬醫院病理科 鄭州450052 2)鄭州大學基礎醫學院病理學系 鄭州450001
血小板凝血酶蛋白(thrombospondin,THBS)家族是最初發現于血小板中的一種糖蛋白,是組織發生和重塑期間調節細胞表型和細胞外結構的同源蛋白家族。 THBS1則是第一個被鑒定的成員[1]。THBS1可由多種細胞合成分泌到細胞外基質。目前有研究[2-4]表明THBS1在皮膚黑色素瘤細胞、口腔鱗狀細胞癌細胞侵襲和遷移中起作用。為進一步探討THBS1與肺腺癌H1975細胞體外遷移能力的關系,本研究采用細胞劃痕實驗檢測上調THBS1后H1975細胞遷移能力的變化及與細胞遷移相關的指標基質金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMP)-2和MMP-9的表達情況,以期尋找肺腺癌浸潤、轉移機制中的分子靶點。
1.1材料H1975細胞購自美國ATCC公司,RPMI 1640和胎牛血清購自美國Gibco公司,蛋白裂解液購自寶生物工程(大連)有限公司,MMP-2、MMP-9和β-actin抗體均購自美國Santa Cruz公司,增強型ECL化學發光試劑盒購自南京諾唯贊公司,PVDF膜購自上海麗臣生物科技有限公司,pcDNA3.1購自美國Invitrogen公司,pcDNA3.1-THBS1為本實驗室構建保存,熒光定量試劑盒[SYBR PremixEx Taq Ⅱ(Tli RnaseH Plus)]購自日本TaKaRa公司,cDNA合成試劑盒(ReverTra Ace QPCR RT Master mix)購自日本TOYOBO公司,引物由上海生工生物工程科技有限公司合成。
1.2細胞培養與分組H1975細胞培養于含體積分數10%胎牛血清的RPMI 1640培養液中。細胞分為3組,空白對照組不處理,空載體轉染組及pcDNA-THBS1轉染組分別用脂質體2000轉染空載體pcDNA3.1和pcDNA3.1-THBS1真核表達載體。
1.3細胞遷移能力檢測采用劃痕實驗。用記號筆在6孔細胞培養板背后均勻地劃出橫線,間隔0.5 cm,并使橫線橫穿過孔,保證每孔至少穿過5條線。培養板中每孔接種約5×105個細胞,第2天用槍頭劃痕,槍頭確保垂直,之后用PBS漂洗3次,加入無血清培養基。培養板放入37 ℃、體積分數5% CO2的培養箱中培養,分別于培養0、48 h拍照,根據劃痕寬度評估細胞遷移能力。實驗重復3次。
1.4MMP-2和MMP-9mRNA表達的檢測采用qRT-PCR檢測。轉染72 h收集3組細胞,PBS洗滌2~3次,按Trizol說明書提取細胞總RNA,微量紫外分光光度計測量RNA濃度,并判定純度。按照cDNA合成試劑盒說明將RNA反轉錄為cDNA,按照熒光定量PCR試劑盒說明進行DNA擴增。引物:MMP-2上游引物5’-TCGCCCATCATCAAGTTC CC-3’,下游引物5’-TCTGGGGCAGTCCAAAGAAC-3’,產物大小163 bp;MMP-9上游引物5’-CCT GGGCAGATTCCAAACCT-3’,下游引物5’-GTA CACGCGAGTGAAGGTGA-3’,產物大小172 bp。PCR擴增體系20 μL,其中Mix 10 μL,10 μmol/L上、下游引物各0.5 μL,雙蒸水8 μL,cDNA 1 μL。反應條件:95 ℃預變性10 min;95 ℃變性30 s,58 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,84 ℃15 s,35個循環,最后7 ℃延伸7 min。反應結束后確認擴增曲線和溶解曲線等,并按照試劑盒說明書判讀結果。采用2-ΔΔCt法計算目的基因的相對表達量。實驗重復3次。
1.5MMP-2和MMP-9蛋白表達的檢測采用Western blot法。轉染72 h后收集3組細胞,加入細胞裂解液,提取細胞總蛋白,制備SDS-PAGE凝膠,經電泳、轉膜、封閉,分別加入MMP-2和MMP-9抗體(均按1∶200稀釋),室溫孵育2 h,加二抗反應1 h,ECL顯色后放入AI600系統檢測儀曝光并照相。以β-actin為內參,以目的蛋白和內參條帶灰度值的比值表示目的蛋白的相對表達水平。實驗重復3次。
1.6統計學處理采用SPSS 17.0處理數據,采用單因素方差分析比較3組細胞MMP-2和MMP-9 mRNA和蛋白表達水平的差異,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗,檢驗水準α=0.05。
2.13組細胞遷移能力的比較與空白對照組和空載體轉染組相比,pcDNA-THBS1轉染組H1975細胞的遷移能力增強(圖1)。

A、B、C:分別為空白對照組、空載體轉染組、pcDNA-THBS1轉染組;1:0 h;2:48 h
2.23組細胞MMP-2和MMP-9mRNA和蛋白表達水平的比較與空白對照組和空載體轉染組相比,pcDNA-THBS1轉染組中MMP-2和MMP-9 mRNA和蛋白的表達水平升高(圖2,表1、2)。

1~3:分別為空白對照組、空載體轉染組、pcDNA-THBS1轉染組

圖2 3組細胞MMP-2和MMP-9蛋白的表達
*:與其他2組相比,P<0.05

表2 3組細胞MMP-2和MMP-9蛋白表達水平的比較
*:與其他2組相比,P<0.05
目前,化療、手術和放療是治療肺癌的主要方法,約3/4的患者就診時已處于晚期,無法手術,只能選擇化療[5]。然而,大多數常規劑型的化療藥物是全身分布的,治療肺癌可能無效,并且會產生嚴重的副作用[6]。因此,靶向藥物已經被認為是治療肺癌的理想策略。
近年來,越來越多的研究[2,7-9]表明,THBS1是多種癌癥預后差和復發的一個指標,如神經膠質瘤、黑素瘤、卵巢癌及胰腺癌。THBS1作為一種多功能蛋白質,有可能對腫瘤進展產生復雜作用。研究[10-11]證明THBS1上調細胞表面的胞漿素纖溶酶原形成,介導腫瘤細胞的組織侵襲。另有報道[12-16]通過體內體外實驗表明THBS1在腫瘤中的表達水平和腫瘤生長及轉移可能有關。然而,不同的細胞類型研究結果不同。有研究表明THBS1在腫瘤細胞中的表達上調,但也有研究表明其在腫瘤細胞中表達下調[5,17]。
本研究將前期成功構建的pcDNA3.1-THBS1真核表達載體以脂質體轉染至THBS1 mRNA表達水平最低的肺腺癌H1975細胞,采用細胞劃痕實驗檢測轉染前后H1975細胞遷移能力的變化,結果發現上調THBS1的表達可促進細胞遷移,與相關報道[3,18]一致。這一結果提示THBS1與肺腺癌細胞的遷移能力密切相關。
MMP是一個大家族,幾乎能降解細胞外基質中的各種蛋白成分,破壞組織學屏障,在腫瘤細胞遷移及侵襲轉移過程中起關鍵作用[19]。本研究結果顯示上調H1975細胞中THBS1的表達后,MMP-2和MMP-9 mRNA和蛋白的表達亦增加,提示THBS1基因過表達可能通過上調MMP-2和MMP-9的表達促進肺腺癌細胞的遷移,這一結論與胃癌中的報道[20]一致,但確切的分子機制尚需要進一步探討。
綜上所述,上調THBS1能促進肺腺癌細胞的遷移,其機制可能與上調MMP-2和MMP-9的表達有關,THBS1有可能成為發生轉移的肺腺癌患者分子靶向治療的靶點。