表沒食子兒茶素對小鼠離體腦片及氧糖剝奪損傷HT-22細胞系的保護作用*

尹雄章，肖珊，馬郁文，方春香，張曉雪

(1.華中科技大學同濟醫(yī)學院附屬同濟醫(yī)院藥學部，武漢 430030；2.華中科技大學同濟醫(yī)學院附屬武漢市中心醫(yī)院藥學部，武漢 430014；3.武漢市第四醫(yī)院、華中科技大學同濟醫(yī)學院附屬普愛醫(yī)院檢驗科，武漢 430034)

兒茶素是茶多酚中主要活性物質(zhì)，具有抗菌、抗氧化以及抗腫瘤等多種生物活性[1]。兒茶素主要包括4種單體，包括表兒茶素(epicatechin, EC)、表兒茶素沒食子酸酯(epicabechin gallate, ECG)、表沒食子兒茶素(epigallocatechin, EGC)、表沒食子兒茶素沒食子酸酯(epigallocatechin gallate，EGCG)。近年來，兒茶素在腦缺血損傷中保護作用備受關(guān)注。研究表明：EC可通過作用于轉(zhuǎn)錄因子NF-E2相關(guān)因子2(NF-E2-related factor 2, Nrf2)通路減輕小鼠腦梗死后氧化應激損傷，保護腦組織[2-3]；EGCG可作用于 PI3K/AKT/eNOS信號通路、抑制炎癥反應以及抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激等從而減輕缺血-再灌注所致的腦組織損傷[4-6]。在人腦微血管內(nèi)皮細胞的缺血復灌模型中，ECG也被證實能促進新血管形成，減輕細胞凋亡和自噬，促進細胞增殖[7]。然而，EGC在腦缺血損傷中作用研究甚少，其對腦缺血的保護作用尚不清楚。為了更好地闡明兒茶素的生物活性和藥理作用，筆者利用小鼠離體腦片及海馬神經(jīng)元HT-22細胞培養(yǎng)模型，研究EGC對缺血損傷的保護作用。

1 材料與方法

1.1實驗動物 健康清潔級雄性昆明小鼠，體質(zhì)量20～25 g，由華中科技大學同濟醫(yī)學院實驗動物中心提供。動物合格證號：00020736；實驗動物生產(chǎn)許可證號：SCXK(鄂)2010-0009。小鼠隨機分籠飼養(yǎng)，室溫保持在20～22 ℃，自由飲水與進食，光照遵循自然節(jié)律。本實驗方案在華中科技大學同濟醫(yī)學院動物倫理委員會審批后實施。

1.2細胞系 實驗用小鼠海馬神經(jīng)元HT-22細胞系購自廣州吉妮歐生物科技有限公司。用含10%胎牛血清(fetal bovine serum ，F(xiàn)BS)的達爾伯克改良伊格爾培養(yǎng)基(DMEM)培養(yǎng)，置于37 ℃含5%二氧化碳(CO2)的培養(yǎng)箱中。培養(yǎng)基每2 d換液一次，細胞系每3 d進行一次傳代。

1.3主要藥品和試劑 表沒食子兒茶素(上海源葉生物科技有限公司,批號：970-74-1,含量：98%)；烏拉坦(醫(yī)藥集團上海化學試劑公司,批號：07032)。乳酸脫氫酶(LDH)試劑盒(批號：20140107),超氧化物歧化酶(SOD)試劑盒(批號：20140115),考馬斯亮藍試劑盒(批號：20110303)均購于南京建成生物工程研究所。CCK-8試劑盒(日本同仁公司，貨號：CK04)。2，3，5-三苯基氯化四氮唑(2, 3, 5 -triphenyltetrazolium chloride，TTC)購自Sigma公司(批號：BE 090326)，用雙蒸水配成20 g·L-1的溶液，常溫避光保存。其他試劑均為市售分析純。人工腦脊液(artificial cerebrospinal fluid, ACSF)由實驗人員配制，其組成為(mmol·L-1)：氯化鈉(NaCl )126, 氯化鉀(KCl)3.5, 磷酸二氫鈉(NaH2PO4)1.2, 氯化鎂(MgCl2)1.3, 氯化鈣(CaCl2)2.0, 葡萄糖[D-(+)-glucose]11, 碳酸氫鈉(NaHCO3)25。孵育腦片時預先以含95% 氧氣(O2)和5% CO2的混合氣飽和。無糖ACSF以10 mmol·L-1蔗糖代替葡萄糖。

1.4腦片及細胞OGD損傷模型的制備 小鼠腹腔注射20%烏拉坦0.1 mL·(10 g)-1，迅速處死取腦，浸入4 ℃預飽和95%O2+5% CO2的ACSF中。分離雙側(cè)皮質(zhì)和海馬，沿冠狀面于組織切片機上將皮層，海馬分別切成厚400 μm的腦片。沖洗后，采用簡單隨機法將腦片分為正常對照組及模型對照組，并分別置于3 mL ACSF的孵育瓶中(持續(xù)通95%O2+5%CO2的混合氣體)，每瓶含腦片6片(腦片不重疊)。在35 ℃水浴槽中孵育30 min,模型對照組迅速換成無葡萄糖并預飽和95%氮氣(N2)+5% CO2的ACSF孵育。皮層腦片孵育15 min，海馬腦片孵育10 min。正常對照組進行換液操作，但不做OGD處理。EGC小、中、大劑量組在進行OGD處理時，分別給予1，3和10 mg·L-1EGC共同孵育。

HT-22細胞OGD：將培養(yǎng)液換成不含F(xiàn)BS的無糖DMEM，置于含5%CO2、95% N2的培養(yǎng)箱中，連續(xù)培養(yǎng)3 h。空白對照組進行換液操作但不做OGD處理。藥物干預組在進行OGD處理時，給予濃度為3 mg·L-1EGC共孵育。

1.5腦片TTC染色法 參照文獻[8]。培養(yǎng)結(jié)束后分別將皮質(zhì)和海馬腦片與TTC溶液在37 ℃條件下避光孵育30 min，隨后取出，0.9%氯化鈉溶液漂洗，吸去表面水分，稱濕重，以腦片1 g加入抽提液(乙醇：二甲亞砜=1：1)20 mL中,避光24 h后按每孔皮質(zhì)200 μL、海馬100 μL加至96孔板,酶標儀測定各孔在490 nm波長處吸光度值(A490)。

1.6LDH釋放量的測定 培養(yǎng)結(jié)束后，收集各組孵育液，按照LDH試劑盒說明書進行測定。通過酶標儀測定其在440 nm處A值，求出每毫克腦片組織LDH含量。每次實驗前，通過繪制標準曲線確定樣本的取樣量。

1.7SOD活力的測定 培養(yǎng)的皮層及海馬組織用0.9%氯化鈉溶液勻漿，培養(yǎng)的細胞系用磷酸鹽緩沖液(PBS)勻漿，4 ℃，3000 r·min-1離心20 min。收集上清液保存于-70 ℃冰箱中。參照SOD試劑盒說明書，測定SOD活力。通過酶標儀測定其在550 nm波長處A值，求出每毫克總蛋白的SOD活力。在每次實驗前，利用考馬斯亮藍試劑盒繪制標準曲線確定樣本的取樣量。

1.8CCK-8檢測細胞活力 將1×105·mL-1細胞懸液接種于96孔培養(yǎng)板中(每孔100 μL)。實驗分為3組：正常對照組，模型對照組，EGC組。OGD結(jié)束后，每孔加入CCK-8溶液10 μL，在培養(yǎng)箱內(nèi)孵育1 h后,于全自動酶標儀在450 nm處檢測各組A值。取4孔A值的平均數(shù)，按公式計算細胞活力：細胞活力(%)=處理組A值/對照組A值×100%，重復3次。

2 結(jié)果

2.1EGC對小鼠皮質(zhì)及海馬腦片OGD損傷TTC染色的影響 腦片TTC染色A490值顯示：小鼠皮質(zhì)和海馬經(jīng)OGD后腦組織均受到明顯損傷，與正常對照組比較差異有統(tǒng)計學意義(皮質(zhì)：t=7.77，P<0.01；海馬t=5.75，P<0.01)。與模型對照組比較，EGC小、中、大劑量組損傷明顯改善，差異有統(tǒng)計學意義(皮質(zhì)：t=1.84，2.55，3.47，P<0.01；海馬：t=1.96，2.16，4.21，P<0.01)。見圖1，表1。

A.正常對照組；B.模型對照組；C.EGC小劑量組；D.EGC中劑量組；E.EGC大劑量組。

表1 5組小鼠皮質(zhì)及海馬腦片TTC染色后A490檢測值

2.2EGC對小鼠皮質(zhì)及海馬腦片OGD損傷組織LDH釋放量的影響 與正常對照組比較，模型對照組LDH的釋放量顯著增加(皮質(zhì)：t=4.68，P<0.01；海馬：t=5.09，P<0.01)。與模型對照組比較，EGC小、中、大劑量組皮質(zhì)及海馬腦片組織中LDH的釋放量顯著降低，差異有統(tǒng)計學意義(皮質(zhì)：t=3.62，4.70，6.06，P<0.01；海馬：t=2.09，2.83，5.48,P<0.05或P<0.01)。結(jié)果見表2。

表2 5組小鼠皮質(zhì)及海馬腦片組織LDH釋放量

2.3EGC對小鼠皮質(zhì)及海馬腦片OGD損傷組織SOD活力的影響 與正常對照組比較，模型對照組皮質(zhì)及海馬組織SOD活力明顯下降(皮質(zhì)：t=3.48，P<0.01；海馬：t=8.58，P<0.01)。與模型對照組比較，EGC小、中、大劑量組皮質(zhì)及海馬腦片組織中SOD活力明顯升高(皮質(zhì)：t=2.06，2.56，7.83，P<0.01；海馬：t=4.71，6.08，11.03，P<0.01)。結(jié)果見表3。

表3 5組小鼠皮質(zhì)及海馬腦片組織SOD活力檢測值

2.4EGC對HT-22細胞系OGD損傷后細胞活力及SOD活力的影響 與正常對照組比較，HT-22細胞系經(jīng)OGD處理后細胞活力明顯下降(t=11.03，P<0.01)，SOD活力明顯降低(t=8.55，P<0.01)。給予3 mg·L-1EGC處理后HT-22細胞系的細胞活力及SOD活力明顯升高(t=7.76，t=5.04，均P<0.01)。結(jié)果見表4。

表4 EGC對HT-22細胞系OGD損傷后細胞活力及SOD活力的影響

3 討論

離體腦片及細胞培養(yǎng)技術(shù)是神經(jīng)科學研究領(lǐng)域中常用的一種技術(shù)手段。對離體培養(yǎng)的腦片或細胞進行氧糖剝奪處理，可模擬腦缺血的病理模型，從而評價藥物對腦缺血損傷的保護作用。在本實驗中，離體培養(yǎng)的小鼠腦片及海馬神經(jīng)元HT-22細胞經(jīng)氧糖剝奪處理后可出現(xiàn)明顯損傷。在氧糖剝奪的同時給予EGC共孵育，發(fā)現(xiàn)EGC可逆轉(zhuǎn)OGD對小鼠離體腦片及HT-22細胞的損傷作用。

腦缺血損傷與自由基的產(chǎn)生及其引發(fā)的氧化、過氧化病理反應密切相關(guān)，因此，應用抗氧化劑對其進行有效防治已經(jīng)成為近年來研究熱點[9]。正常生理下，體內(nèi)氧自由基的產(chǎn)生和清除處于平衡。一旦自由基代謝失衡，即可導致細胞損傷。EGC屬多酚類化合物，有強效的抗氧化作用和自由基清除能力。研究表明，EGC能抑制脂質(zhì)過氧化[10]，猝滅單線態(tài)氧[11]，以及清除一氧化氮和超氧化物[12]等，從而發(fā)揮強大的抗氧化作用。本研究發(fā)現(xiàn)，給予EGC可逆轉(zhuǎn)OGD所致的SOD活力下降。SOD是生物體內(nèi)清除自由基的首要物質(zhì)，可把有害的超氧自由基轉(zhuǎn)化為過氧化氫，繼而被過氧化氫酶和過氧化物酶分解為完全無害的水。所以，此結(jié)果提示EGC可以抑制腦缺血所致的氧化應激反應，從而發(fā)揮保護作用。筆者目前還未見有研究報道指出EGC對腦缺血損傷有保護作用。但結(jié)果顯示兒茶素能夠通過抑制缺氧/復灌所致的氧化應激而發(fā)揮細胞保護作用[13]；并且兒茶素對大鼠腦缺血復灌也具有很好的保護作用[14]。EGC是兒茶素中的主要成分之一，這可以從側(cè)面上佐證EGC對腦缺血的保護作用，與本研究的結(jié)果相對應。

綜上所述，EGC對小鼠離體腦片及HT-22細胞OGD損傷具有明顯的保護作用，其作用機制可能與提高組織SOD活力有關(guān)。但其更詳細的作用機制，尚有待進一步深入研究。