1株微生物絮凝劑產生菌的分離、鑒定與絮凝劑的成分分析

李娜 范祎立 李雪

摘要：從活性污泥中篩選分離得到產微生物絮凝劑的菌株G1-3。經形態觀察、生理生化特性分析以及基于16S rDNA系統進化分析，該菌株鑒定為交替單胞菌屬（Alteromonas）。該菌株能在特定培養基中產生一種白色絮狀沉淀，其產率為2.4 g/L，且該絮狀胞外產物對高嶺土懸液的絮凝率可達93.06%。經呈色反應分析，該產物主要成分為多糖和蛋白質，其中多糖含量為31.38%，蛋白質含量為16.52%。通過高效液相色譜分析，該胞外產物主要由天冬氨酸、亮氨酸、谷氨酸等17種氨基酸，以及葡萄糖、核糖、半乳糖等10種單糖組成。

關鍵詞：微生物絮凝劑;產絮菌;分離;鑒定;成分分析

中圖分類號： X172 ?文獻標志碼： A ?文章編號：1002-1302（2019）13-0288-05

絮凝技術是污水處理中效率高、應用廣泛且成本低廉的常用方法之一。在含有懸浮顆粒（>1.0 μm）和膠體物質（1.0～1.0 μm）水體的處理過程中，絮凝劑能與這些顆粒物質及色素、重金屬離子等污染物結合，形成較大絮凝體沉降至水底，以凈化水體[1]。而微生物絮凝劑是利用生物技術，通過微生物發酵、分離提取而得到一種新型、高效、價廉的新型水處理絮凝劑[2]。與傳統絮凝劑相比，微生物絮凝劑的二次污染小、安全性高、易被微生物降解、對環境友好，應用領域比其他絮凝劑寬泛[3]，使得其成為當下開發研究的重點。

本研究從活性污泥中篩選出1株生物絮凝劑產生菌 G1-3，該菌在肉湯培養基中產生一種特殊的胞外產物，呈白色絮狀，該產物具有優良的絮凝特性。本研究通過形態特征、生理生化特性及基于16S rDNA系統進化分析，對該菌進行菌株鑒定，并對白色絮狀沉淀物進行成分分析，旨在為微生物絮凝劑提供一種新材料，擴大應用范圍。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株 絮凝劑產生菌G1-3，由筆者所在實驗室從活性污泥中分離、篩選所得，由中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心（CGMCC）保藏，編號為CGMCC No：14457。

1.1.2 培養基 肉湯培養基：牛肉膏5.0 g，蛋白胨10.0 g，NaCl 5.0 g，固體培養基瓊脂添加量為20.0 g，H2O 1 000 mL，pH值為7.2～7.4，121 ℃滅菌20 min。

PDA固體培養基：去皮馬鈴薯200.0 g，葡萄糖20.0 g，瓊脂20.0 g，H2O 1 000 mL，pH值自然，121 ℃條件下滅菌 20 min。

1.2 方法

1.2.1 微生物絮凝劑產生菌的篩選 取天津市某污水處理廠的活性污泥，取合適濃度的經無菌水稀釋的稀釋液分別在肉湯固體培養基和PDA固體培養基平板上涂布，于37 ℃培養24 h。挑選其中形態各異的單菌落進行分離純化，將純化后的菌株接種于100 mL肉湯培養基中，于37 ℃、200 r/min搖床培養20 h，備用。

在100 mL量筒內加入0.4 g高嶺土、4 mL 1%的CaCl2溶液、2 mL菌株發酵液，在200 r/min轉速快速攪拌5 min，然后80 r/min，慢速攪拌10 min，靜置一段時間，測上清液在 550 nm 處的吸光度，根據吸光度計算絮凝率。計算公式為

μ=（A-B）/A×100%。

其中，μ表示絮凝率，A表示參照上清液的濁度，B表示加入發酵液絮凝之后上清液的濁度[4]。

1.2.2 菌株形態觀察 將菌株接種于肉湯固體培養基上，通過3區劃線得單菌落，觀察其形態。

掃描電鏡下觀察菌株G1-3的微觀形態：2.5%戊二醛固定，0.1 mol/L PBS清洗3～4次，1% OsO4固定，0.1 mol/L PBS清洗3～4次，分別用50%、70%、80%、90%、100%乙醇，體積比為2 ∶ 1的乙醇與醋酸戊酯、體積比為1 ∶ 1的乙醇與醋酸戊酯依次脫水，純戊酯脫水30 min，臨界點干燥，噴金，于掃描電鏡下觀察[5]。

1.2.3 胞外絮狀產物成分分析 樣品的多糖定性采用莫氏試驗、斐林試驗，蛋白質定性采用茚三酮試驗、雙縮脲反應，糖的定量測定采用苯酚-硫酸法，蛋白質定量測定采用考馬斯亮藍法，具體操作參見文獻[6]。

1.2.4 高效液相色譜分析氨基酸與單糖 發酵液中的白色絮狀物5 000 r/min離心經3次無菌水離心、洗滌，用真空冷凍干燥器干燥，取固體，經水解預處理后，采用高效液相色譜法分析其中的氨基酸與單糖組成。

1.2.4.1 單糖組成測定 稱取凍干的樣品2 mg，加入 2 mol/L 三氟乙酸溶液0.5 mL，在120 ℃條件下水解 120 min，氮吹儀吹干。向水解干燥后得到的單糖樣品中加入溶于無水甲醇、0.5 mol/L 1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮（PMP）試劑和0.3 mol/L NaOH溶液各0.5 mL，充分混勻后，水浴70 ℃反應30 min。冷卻至室溫，加入0.3 mol/L HCl 0.5 mL，充分混勻，加入0.5 mL氯仿，充分震蕩萃取，離心后用0.22 μm濾膜過濾后上機。

1.2.4.2 氨基酸組成測定 取一定質量樣品于20 mL水解管中，加入16 mL 6 mol/L的鹽酸溶液，真空脫氣30 min，充氮封管，110 ℃下水解22～24 h，冷卻后定容至50 mL。取1 mL水解液于小瓶中，真空脫酸抽干，加入1 mL 0.02 mol/L 鹽酸溶液，充分溶解。精密量取上述溶液 500 μL，置于5 mL塑料離心管中，加入1 mol/L三乙胺乙腈溶液250 μL，混勻，加入0.1 mol/L異硫氰酸苯酯乙腈溶液 25 μL，混勻，室溫放置1 h后，加2 mL正己烷，劇烈振搖，放置10 min，取下層溶液用0.22 μm的水相膜濾膜過濾后上機分析。

2 結果與分析

2.1 菌株的分離

經固體平板劃線分離，從活性污泥中得到5株菌株，經純化、培養后，發現其中1株菌能在液體培養基中產生一種白色絮狀沉淀（圖1）。以對高嶺土懸濁液的絮凝活性為指標，該絮狀沉淀的絮凝率可達93.2%，且該菌絮凝特性穩定，將該菌命名為G1-3。

2.2 形態觀察

G1-3菌株在肉湯固體培養基上呈白色圓形不透明菌落，其表面光滑、有黏性、邊緣整齊，菌落大小為1～2 d/mm。通過掃描電鏡觀察菌株G1-3表面形態呈橢圓狀，一端較圓，一端較尖（圖2）。

2.3 G1-3的生理生化特征

對菌株G1-3進行生理生化分析，根據VITEK全自動微生物檢測系統的分析，菌株G1-3的生理生化特征見表1。菌G1-3可利用葡萄糖為唯一碳源生長，但不能利用麥芽糖、蔗糖、甘露糖、阿拉伯糖等作為唯一碳源生長;在生長過程中，能產生H2S，且L-脯氨酸芳胺酶、L-蘋果酸鹽同化為陽性。鑒定結果表明，G1-3菌株的形態和生理生化特性與交替單胞菌屬較為一致。

2.4 16S rDNA序列測序

對菌株G1-3測序，經過提取DNA、PCR擴增、連接轉化等操作，應用BLAST程序、NCBI數據庫里的信息進行同源性搜索，進行分子生物學鑒定，繪制出系統進化樹見圖3。根據Blast結果，G1-3屬于γ-變形菌綱（Gammaproteo bacteria）交替單胞菌屬（Alteromonadales），與Alteromonadales bacterium DN3-1親源關系最近。

2.5 G1-3菌株的生長特性

將菌株G1-3接種至100 mL肉湯培養基中，于 200 r/min 3 ℃條件培養，測定菌株G1-3菌體在2、4、6、8、10、12、24 h的生長情況。根據發酵液在波長600 nm處的吸光度，制得該菌株生長曲線，由圖4可知，G1-3僅培養 6 h就呈現指數生長，培養至18 h達到穩定期。

采用干重法，測定菌株G1-3菌體在肉湯培養基中生長2、4、6、8、10、12、24 h時菌株胞外絮狀產物的產量。胞外產物較菌株生長晚2 h，培養至8 h時開始快速生成，而至22 h就基本停止，產量在此時達最高，為2.4 g/L。且當培養超過 48 h 時，發酵液中無該白色絮狀物，該胞外產物被分解。

2.6 絮凝率測定

根據來源不同，生物絮凝劑可分為3類[7]：微生物細胞，如某些細菌、酵母;微生物細胞提取物，如酵母細胞壁的葡聚糖;微生物細胞代謝產物。為探究該菌株絮凝活性成分的分布情況，對比發酵液、胞外絮狀產物、菌細胞懸液、去菌體上清液對高嶺土懸濁液的絮凝效果。由圖6可知， 胞外產物對高

嶺土的絮凝效率高達93.06%，而發酵液原液只有 65.48%，菌細胞懸液以及去菌體上清液的絮凝率僅為10%左右，這充分說明G1-3菌株的絮凝特性與菌體細胞無關，主要由其細胞代謝產物產生。

該絮凝菌產生的生物絮凝劑為白色絮狀物，存在于菌體外的培養液中，由微生物分泌到胞外。根據絮凝機理，這些胞外產物可能與水中的雜質通過吸附架橋作用、電中和作用、卷掃作用等[8-10]對水中雜質進行絮凝沉降，以達到水質澄清目的。

2.7 成分分析

2.7.1 外形觀察 G1-3菌株的白色絮狀物在培養過程中，沉淀聚集在一起，肉眼觀察為半透明膜狀（圖7）。經真空冷凍干燥后，呈乳白色疏松層疊狀，在電子顯微鏡下進行掃描觀察，可以觀察到絮凝物質呈現折疊膜狀結構（圖8）。

2.7.2 蛋白質與糖定性定量分析 根據文獻報道，當下生物絮凝劑的化學組成可分為以下幾類[11]：糖類物質，多肽、蛋白質和DNA，脂類物質，目前已發現的以多糖類物質為主，脂類最少。為探究G1-3菌株胞外絮狀產物的成分，對其進行分析。蛋白質定性試驗時，樣品在茚三酮試驗中出現藍紫色，結果呈陽性;且在雙縮脲試驗中，出現紫玫瑰色，呈陽性，確定G1-3胞外絮狀物中含有蛋白質。糖定性試驗時，樣品在莫氏試驗中出現紫紅色環，為陽性，在斐林試驗中，無紅色或黃色的氧化亞銅沉淀生成，可認定該G1-3胞外絮狀產物中含有多糖，但還原糖含量微弱。

根據考馬斯亮藍試驗結果，測定樣品中蛋白質含量為16.52%;根據苯酚-硫酸試驗，測定其總糖含量為31.38%。上述結果表明，該產物以糖類物質為主。

2.7.3 氨基酸與單糖的分析 樣品經水解預處理后，通過高效液相色譜分析其氨基酸含量（表2）。經水解后，發現該胞外產物含有17種氨基酸，其中天冬氨酸含量最高，達 1.993 g/kg，而亮氨酸和谷氨酸分別為1.908、1.760 g/kg，精氨酸、丙氨酸、脯氨酸、甘氨酸和苯丙氨酸的含量均達 1.000 g/kg 以上。

采用高效液相色譜分析單糖含量，由表3可知，經水解后，發現該胞外產物含有10種單糖，以葡萄糖、核糖、半乳糖為主，其含量明顯高于其他糖類，葡萄糖含量高達 428.37 mg/kg，而核糖與半乳糖含量分別為 270.59、224.95 mg/kg。

3 結論

從活性污泥中分離得到1株生物絮凝劑產生菌 G1-3，經形態特征、生理生化特性和16S rDNA基因序列鑒定，其屬于交替單胞菌屬（Alteromonadales）。

關于G1-3菌株絮凝活性成分的分布，以高嶺土絮凝率為指標，其胞外產物絮凝率為93.06%，其發酵液原液絮凝率較低，且菌細胞懸液以及去菌體上清液無絮凝特性。

生物絮凝劑的化學性質：茚三酮顯色試驗呈藍色，雙縮脲反應呈陽性;莫氏反應中濃硫酸與樣品試劑混合液分界面有清晰的紫環出現。表明G1-3菌株的胞外絮狀產物中含有多糖和蛋白質，根據試驗，多糖含量明顯高于蛋白質含量，糖與蛋白質比為1.9 ∶ 1。

G1-3菌株的白色絮狀產物經分離、真空冷凍干燥后，呈乳白色疏松層疊狀，經高效液相色譜分析，該白色絮狀沉淀中含17種氨基酸，以天冬氨酸、亮氨酸、谷氨酸、精氨酸為主，含10種單糖，以葡萄糖、核糖、半乳糖為主。

參考文獻：

[1]封 培，王世梅，周立祥. 生物絮凝劑產生菌的分離鑒定及其在飲用水除濁上的作用[J]. 環境科學學報，2009，29（8）：1666-1671.

[2]趙 鳳，張蔚萍，胡慶華. 微生物絮凝劑的絮凝機理及應用研究[J]. 環境與可持續發展，2009（2）：6-8.

[3]孫鵬軒. 微生物絮凝劑的研究進展及應用現狀[J]. 環境保護與循環經濟，2013（1）：53-55.

[4]王 雪. 生物絮凝劑混菌發酵條件優化及動力學分析[D]. 哈爾濱：哈爾濱工業大學，2009.

[5]孫鎮平，李 佳，劉洪紅，等. 不同處理技術對環境掃描電鏡下細菌原始形態的影響[J]. 揚州大學學報（農業與生命科學版），2013（1）：41-43.

[6]王 薇. 產絮菌合成生物絮凝劑特性及絮凝成分解析[D]. 哈爾濱：哈爾濱工業大學，2009.

[7]馬 放，段姝悅，孔祥震，等. 微生物絮凝劑的研究現狀及其發展趨勢[J]. 中國給水排水，2012，28（2）：14-17.

[8]董曉斌. 新型生物絮凝劑的研究與應用[J]. 甘肅聯合大學學報（自然科學版），2006，20（1）：52-54.

[9]Li Y M，Li Q，Hao D K，et al. Characterization and flocculation mechanism of an alkali-activated polysaccharide flocculant from Arthrobacter sp. B4[J]. Bioresource Technology，2014，170：574-577.

[10]Kumar C G，Joo H S，Choi J W，et al. Purification and characterization of an extracellular polysaccharide from haloalkalophilic Bacillus sp. I-450[J]. World Journal of Microbiology and Biotechnology，2004，34：673-681.

[11]王 蘭，唐 靜，趙 璇. 微生物絮凝劑絮凝機理的研究方法[J]. 環境工程學報，2011，5（3）：481-488.