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miR-210對腎細胞癌細胞遷移、增殖和凋亡能力的影響

2019-12-10 03:32:44顏國華高鵬王世廣王麗君
中國老年學雜志 2019年23期
關鍵詞:影響能力

顏國華 高鵬 王世廣 王麗君

(1 鄭州工業應用技術學院,河南 新鄭 451100;2 河南中醫藥大學)

腎細胞癌(RCC)是腎臟中最常見的腫瘤。在西方國家,RCC的發病率在過去二十年中上升了約2%〔1〕。微小RNA(miRNA或miR)是一類保守的非編碼RNA,其通過與3′-非翻譯區中的序列結合而調節靶基因的表達水平〔2〕。研究表明,miRNA與各種癌癥的發生發展和預后有關〔3〕。幾種miRNA可能在RCC中失調,如與鄰近的正常組織相比,miR-15a在RCC組織中顯著下調〔4〕。此外,miR-15a的下調可通過在RCC進展期間直接靶向真核起始因子4E來抑制細胞增殖和侵襲〔5〕。miR-149-5p可能作為腫瘤抑制因子在RCC的細胞遷移,侵入和細胞凋亡中〔6〕。miR-210位于人類11號染色體上,miR-210在各種類型的癌癥中異常表達,包括胰腺癌,宮頸癌,乳腺癌和RCC〔7〕。然而,miR-210在RCC中的作用的分子機制仍有待闡明〔8〕。本研究擬探討RCC組織中miR-210的表達及其對RCC細胞的遷移、增殖和凋亡的影響。

1 材料和方法

1.1材料 人腎小管上皮細胞HK2和RCC(ACHN,786-O,Caki-1和769P)細胞系由實驗室常規保存。ACHN細胞使用DMEM培養基。786-O和769P細胞在RPMI1640培養基中培養。Caki-1細胞在McCoy 5A培養基中培養。此外,細胞培養時補充10%胎牛血清,1%谷氨酰胺和1%抗生素(100 U/ml青霉素和100 mg/ml鏈霉素)37℃、5% CO2培養箱中培養。

1.2RNA提取和逆轉錄定量聚合酶鏈反應(RT-qPCR) 使用TRIzol試劑(Invitrogen;Thermo Fisher Scientific)提取來自細胞的總RNA,并使用RNeasy Maxi試劑盒進行純化。在使用NanoDrop 2000c測量RNA濃度后,使用miScript Ⅱ RT試劑盒,將RNA逆轉錄成cDNA,進行qPCR。10 μl反應混合物由5 μl 2×QuantiTect SYBR Green PCR Master mix,3.7 μl無RNase水,1 μl cDNA模板,0.4 μl特異性miRNA引物和10×miScript Universal Primer組成。miR-210的引物是5′-CUGUGCGUGUGACAGCGGCUGAAGCCGCUGUCACACGCACAGUU-3′。U6(剪接體U6小核RNA)被選為內參,U6引物序列為5′-CTCGCTTCGGCAGCACA-3′。使用2-ΔΔCt法分析細胞中miR-210表達水平〔9〕。

1.3細胞轉染 miRNA mimics可以增強內源miRNA的調節。轉染miR-210 mimics可以讓786-O和ACHN細胞的miR-210表達上調,使用Lipofectamine 2000轉染,細胞使用Opti-MEM培養基進行培養。

1.4噻唑藍(MTT)法檢測細胞活力 分別將5 000個/孔786-O和ACHN細胞接種在96孔板中。轉染后總共3 d,在37℃下各孔加入20 μl MTT 4 h后除去上清液,向各孔中加入100 μl二甲基亞砜。然后使用振蕩器以0.16 g/min在室溫下,避光下震蕩10 min。使用酶標儀在595 nm的波長下評估細胞活力。實驗重復3次。

1.5細胞計數試劑盒(CCK)-8測定細胞增殖 將5 000個/孔786-O和ACHN細胞接種在96孔板中,然后用miR-210 mimic,miRNA(NC)mimic轉染。每孔加入10 μl CCK-8溶液,37℃、5%CO2的培養箱中溫育30 min。將細胞孵育0、24、48和72 h后,使用酶標儀測量450 nm處的吸光度來確定細胞增殖。實驗重復3次。

1.6細胞劃痕實驗評估ACHN和786-O細胞的遷移能力 在6孔板的每個孔中接種總共1×106個細胞。在轉染前細胞饑餓處理24 h。然后,如上所述,用miR-210 mimics、NC mimics轉染細胞。轉染后,將細胞在無血清和抗生素的培養基中于37℃培養24 h。接下來,通過拖動無菌移液管尖端造成劃痕。使用相機系統在0、12和24 h,37℃下捕獲細胞劃痕圖像〔10〕。實驗重復 3 次。

1.7使用24孔Transwell小室評估ACHN和786-O細胞的遷移和侵入能力 轉染后24 h,將約3×104個細胞鋪在上室。Transwell的下室含有600 μl補充有10%胎牛血清和1%谷氨酰胺的培養基(DMEM或RPMI1640)。在48 h,使用0.1%多聚甲醛將細胞固定25 h,并使用4%結晶紫室溫下染色25 min〔11〕。使用相機拍攝圖像。實驗重復3次。在4個隨機選擇的視野中對細胞進行計數。

1.8流式細胞術評估ACHN和786-O細胞的凋亡率和細胞周期 將1×106個細胞接種在6孔板中。在24 h,如上所述用miR-210 mimics,NC mimics 轉染細胞。在轉染后48 h,收獲細胞并使用冰冷的磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌。用5 μl膜聯蛋白V-熒光素異硫氰酸酯(FITC)和碘化丙啶(PI)染色細胞。使用流式細胞儀評估細胞凋亡情況。對于細胞周期分析,收獲1×106個細胞,用70%乙醇固定過夜。然后將細胞用含有Rnase Ⅰ(100 μg/ml)和PI(50 μg/ml)及含有0.1%Triton X-100的PBS,在37℃下染色30 min。通過流式細胞術進行細胞周期分析。軟件FlowJo7.6.1用于分析數據〔12〕。實驗重復 3 次。

1.9統計學處理 采用SPSS16.0軟件進行單因素方差分析、t檢驗。

2 結 果

2.1miR-210的表達水平在RCC細胞系中上調 miR-210在RCC細胞系786-O(11.23±0.32)、ACHN(8.62±0.43)、Caki-1(4.62±0.35)、769P中的表達水平(2.53±0.22)均顯著高于正常腎小管上皮細胞HK2(1.24±0.23,P<0.05) 。轉染后24 h,786-O細胞、ACHN細胞中miR-210 組 miR-210的表達水平(108.25±7.21、102.46±5.24)均顯著高于NC組(2.52±0.41,2.07±0.51,P<0.05) 。

2.2miR-210上調促進ACHN和786-O細胞的活力 與NC mimic組(OD值:0.43±0.02)相比,用miR-210 mimic轉染的ACHN細胞相對存活率(OD值:0.86±0.05)明顯增加(P<0.05)。與NC mimic組(OD值:0.52±0.04)相比,轉染miR-210 mimic的786-O細胞相對存活率(OD值:0.78±0.06)明顯增加(P<0.05)。

2.3miR-210上調促進ACHN和786-O細胞增殖 在轉染后24、48和72 h,轉染miR-210 mimic的ACHN和786-O細胞存活率顯著上調(P<0.05)。見表1。

2.4miR-210調節ACHN和786-O細胞的侵襲 與NC mimic組〔(0.86±0.07)個〕相比,轉染miR-210 mimic的ACHN細胞侵襲能力顯著上調〔(1.56±0.08)個,P<0.05〕。與NC mimic組〔(0.74±0.06)個〕相比,轉染miR-210 mimic的786-O細胞侵襲能力顯著上調〔(1.82±0.01)個,P<0.05〕。見圖1。

表1 miR-210對ACHN和786-O細胞增殖能力的影響值)

與NC mimic組比較:1)P<0.05;下表同

圖1 miR-210對ACHN和786-O細胞侵襲能力的影響(結晶紫染色,×100)

2.5miR-210調節ACHN和786-O細胞的遷移 與NC mimic組〔(0.89±0.03)μm〕相比,miR-210 mimic組ACHN細胞的遷移能力〔(1.30±0.07)μm〕顯著上調(P<0.05)。與NC mimic組〔(0.91±0.04)μm〕相比,miR-210 mimic組786-O細胞的遷移能力〔(1.26±0.08)個〕顯著上調(P<0.05)。見圖2。

2.6miR-210的上調抑制ACHN和786-O細胞的凋亡 與NC mimic組〔(17.81±0.45)%〕相比,miR-210 mimic組ACHN細胞早期凋亡率〔(12.61±0.36)%〕顯著降低(P<0.05)。與NC mimic組〔(21.50±0.52)%〕相比,miR-210 mimic組786-O細胞早期凋亡率〔(14.60±0.48)%〕顯著降低(P<0.05)。見圖3。

圖2 轉染前和轉染后24 h miR-210對ACHN和786-O細胞的遷移能力的影響

圖3 miR-210對ACHN和786-O細胞凋亡的影響

2.7miR-210的上調對ACHN細胞周期的影響 與NC mimic組相比,miR-210 mimic組ACHN細胞在G1 期的百分比明顯降低(P<0.05),在G2 期和S期的百分比明顯升高(P<0.05)。見表2,圖4。

表2 miR-210對ACHN細胞周期的影響

圖4 miR-210對ACHN細胞周期的影響

3 討 論

RCC是世界范圍內最常見且致命的惡性腫瘤之一〔1〕。然而,RCC發生和進展中涉及的機制仍不清楚〔13〕。RCC通常對放療和化療法具有抗性,到目前為止診斷為轉移性的RCC患者不存在治愈性療法,并且在局部手術切除腫瘤仍然是治療的主要手段〔14〕。miRNAs在轉錄水平后負責調控基因表達,在腫瘤學中被廣泛研究。因為它們可以調控細胞的行為和腫瘤微環境。由于單個miRNA可能靶向數百個mRNAs〔15〕,異常的miRNA表達可能會影響大量的轉錄本,而且會影響癌癥相關的信號通路〔2,16,17〕。

miR-210在過去幾年中已被大量研究,已經被鑒定了多種miR-210靶標,并指出其不僅在線粒體代謝中,而且在血管生成、DNA損傷應答、細胞增殖和細胞凋亡中的作用〔7〕。miR-210通常表現出致癌性,因為它經常在幾種癌癥中升高,包括乳腺癌、肺癌、腎細胞癌、胰腺癌或膠質母細胞瘤等等〔18〕。研究顯示,RCC患者尿液中miR-210的水平顯著高于正常組,被作為RCC中液體活檢的標志〔19〕;在臨床RCC組織中,miR-210-3p通常被上調〔20〕。靶向miR-210-3p并利用規律成簇間隔短回重復(CRISPR/Cas9)基因編輯技術敲除RCC細胞系中的miR-210-3p,miR-210-3p下調導致體外和體內腫瘤發生增加〔21〕。下調miR-210-3p導致Twist相關蛋白(TWIST)1顯著上調,這是miR-210-3p的關鍵靶點,表明miR-210-3p介導的TWIST1促使腎細胞癌進展〔22〕。miR-210過表達在腎癌細胞中誘導中心體擴增,并影響與細胞周期調節相關的基因。miR-210控制G2/M轉換并參與有絲分裂過程,改變絲氨酶/蘇氨酸蛋白激酶酶(Plk)1,紡錘體檢測點蛋白(Bub1B),細胞周期(cyclin)F,姐妹染色單體內聚蛋白PDS5同源蛋白B和序列相似83家族D的表達〔23〕。此外,miR-210通過靶向E2F轉錄因子3的表達參與S期的中心體復制,事實上,miR-210過表達抑制E2F轉錄因子3的表達,并影響中心體復制周期的調控,可能導致中心體非整倍數擴增〔24〕。

本研究表明miR-210可能在RCC中起致癌基因的作用,但是具體在RCC中miR-210的相關靶點未能確定,具體詳細的機制有待進一步研究。

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