王亞萍,王 萌,周麗雅
(1.吉林工程技術師范學院校醫院,長春 130000;2.長春中醫藥大學附屬醫院傳統診療中心,長春 130022;3.長春中醫藥大學基礎醫學院,長春 130117)
近年來,大量研究證明炎性反應是導致CHF病理及生理的重要機制之一,且對于其炎癥通路及炎性細胞因子的研究也成為目前的研究熱點。當前各項研究證實,AngII本身是一種強大的促炎癥因子,它能夠激活循環中的白細胞,并通過合成黏附分子、趨化因子等參與白細胞黏附至活化的內皮細胞[1-2]。同時AngⅡ還是 RAAS系統的主要活性物質,體內的RAAS系統被激活,導致血管緊張素II(Ang II)的釋放增加,激活核因子-κB(NF-κB),進一步激活 TLR4,觸發細胞信號級聯反應,而最終導致NF-κB 轉錄因子依賴的信號途徑的整體激活,進而形成各種炎性因子對血管壁的浸潤,使得CRP等炎性因子的過度表達,最終產生炎癥反應。因此,促炎癥因子AngII、核轉錄因子NF-κB和非特異性炎癥反應物CRP的測定可以作為CHF病理、生理狀態及預后評價的一種標志物。
1.1 實驗動物 清潔級雄性Wistar大鼠160只,體質量(250±20)g,由長春中醫藥大學實驗中心提供。
1.2 藥物 1)藥物二參湯:黨參20 g,丹參20 g,川芎15 g,麥冬10 g,五味子10 g,木香10 g,降香10 g,薤白15 g,元胡15 g。生藥由長春吉林省中醫院制劑中心提供,由其中藥房代煎,長春中醫藥大學實驗研究室濃縮而成,其中藥液含生藥量為3. 36 g/mL,4℃冰箱保存。2)成藥:纈沙坦,北京諾華制藥有限公司,規格: 80 mg×7粒/盒,批號:201604。
1.3 試劑 兔抗鼠NF-κB p65單克隆抗體(C-20):ZS-372,北京中杉金橋生物技術有限公司;辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔二抗,北京中杉金橋生物技術有限公司;CRP ELIsA試劑盒,R&D system公司;碘[125I]血管緊張素II(AII)放射免疫分析藥盒,北京北方生物技術研究所。
1.4 主要儀器 旋渦混合器(上海XW-80A);超聲器(MODELCV188);數顯恒溫水箱 (金壇HH-W-420);震蕩培養箱(哈爾濱HZQ-X100);酶聯免疫檢測儀(上海DG5031)。
1.5 動物造模與分組 160只雄性Wistar大鼠隨機分出10只為假手術組,僅穿線不結扎冠狀動脈左前降支(全部存活) ;余下的150只大鼠參照文獻[3-4]采用結扎冠狀動脈左前降支的方法來建立急性心肌梗死大鼠模型,使用心臟彩超測定其心臟射血分數(ejection fraction, EF)<60% 為造模成功,共43只,進而值篩選出EF指數最低的30只,隨機分為纈沙坦組、中藥組、模型組各10只。
1.6 給藥 假手術組和模型組給予滅菌蒸餾水每只2 mL/d,中藥組給藥量每只2.085 g/kg,纈沙坦組給藥量每只20 mg/kg。1次/d,連續灌胃28 d。
1.7 觀測項目
1.7.1 觀測各組心肌組織形態學變化 灌胃28 d后,實驗大鼠采用眼球取血法,并摘取心尖部部分心肌組織,于10% 福爾馬林溶液中固定一部分心肌組織;另一部分心肌組織于-80℃冰箱低溫保存。經Masson染色法處理取部分心肌組織,觀測其形態學的變化。
1.7.2 檢測各組心肌NF-κB的蛋白表達 采用Western blot實驗檢測其心肌NF-κB的蛋白表達。于實驗大鼠左心室處提取50 mg心肌,同時提取總蛋白,電泳先以60 V電壓開始,至溴酚藍指示劑進入分離膠后,再將其電壓調整到120 V直至電泳結束。再于100 V恒壓轉膜60 min,隨后將膜移入含有5% 脫脂奶粉的0.1%Tween20的TBST溶液的自封袋中,在室溫下于搖床內封閉l h。加一抗TLR4(1:200)、NF-κB p65(1:500),4℃冰箱過夜。次日再用TBST洗膜3次;再加入二抗(1:5000)于室溫內在搖床內搖動1 h。TBST洗膜3次,將A、B發光液以1:1的比例均勻混合,1 min后將混合液滴加于膜上,并使用保鮮膜封包。于暗室內使用X光片曝光后常規方法顯影、定影,隨后用Image J軟件分析。
1.7.3 檢測各組血清中CRP的濃度 使用大鼠血清因子ELISA試劑盒,檢測各實驗組大鼠血清標本中CRP的濃度。
1.7.4 檢測各組 AngⅡ濃度 采用放射免疫分析分析藥盒測定組織、血漿AngⅡ的放射性計數(cpm);之后用log-logit處理數據,得出結果(CONC)。
1.8 統計學分析 運用SPSS 15.0數據分析軟件分析處理各項數據。結論得出每組實驗數據均為正態分布,方差齊,計量資料以均數±標準差()表示,采用單因素方差分析(one-way ANOVA),組間兩兩比較采用LSD分析,以P<0.05為差異有統計學意義。
2.1 實驗大鼠心肌組織形態學改變 1)假手術組:大鼠心臟Masson染色以紅色的心肌細胞為主,且心肌組織間分布均勻,結構清晰,細胞排列整齊,細胞間隙窄,且心肌細胞間質與周圍血管之間無明顯綠色膠原纖維。2)模型組:CHF大鼠心肌細胞間質、血管周圍均可見大量的綠色膠原纖維沉積,并有瘢痕形成,部分心肌組織已被膠原纖維組織所取代,心肌細胞肥大,且圍繞于心肌細胞的膠原纖維出現斷裂、排列紊亂,細胞間隙增寬,血管壁增厚,纖維化程度重。3)給藥組:各給藥組CHF大鼠心肌間質纖維化程度介于上述2組之間,但較模型組均有不同程度的減輕,其中二參湯組與纈沙坦組無明顯差異。見圖1。

圖1 各組心肌組織形態學改變
2.2 各組藥物對CHF 大鼠心肌NF-κB 表達的影響 見圖2、表1。

圖2 各組藥物對CHF 大鼠心肌NF-κB 表達的影響
表1 各組藥物對 CHF 大鼠心肌NF-κB蛋白表達量的比較( ) pg/mL

表1 各組藥物對 CHF 大鼠心肌NF-κB蛋白表達量的比較( ) pg/mL
注:與模型組比較,# P<0.05;與假手術組比較,△△P<0.01
組 別 n NF-κB假手術組 10 12993.38±198.67#模型組 10 108335.01±176.54△△二參湯組 10 32244.94±215.96#纈沙坦組 10 31463.57±228.09#
2.3 各組血清中CRP含量比較 見表2。
表2 各組血清中CRP含量比較( ) pg/mL

表2 各組血清中CRP含量比較( ) pg/mL
注:與模型組比較,# P<0.05;與假手術組比較,△△P<0.01
組 別 n CRP含量假手術組 10 1236.23±32.72#模型組 10 2151.68±11.05△△二參湯組 10 1479.43±14.41#纈沙坦組 10 1535.29±29.74#
2.4 各組 AngⅡ濃度比較 見表3。
表3 各組 AngⅡ濃度比較( ,n = 10) pg/mL

表3 各組 AngⅡ濃度比較( ,n = 10) pg/mL
注:與模型組比較,# P<0.05;與假手術組比較,△△P<0.01
組 別 心肌中 AngⅡ含量 血漿中 AngⅡ含量假手術組 629.30±27.05# 220.75±16.26#模型組 1480.73±16.30△△ 759.09±7.15△△二參湯組 938.49±27.06# 435.23±14.29#纈沙坦組 955.78±29.76# 454.55±13.42#
研究證實,AngII本身是一種強大的促炎癥因子,它能夠激活循環中的白細胞,并通過合成黏附分子、趨化因子等參與白細胞黏附至活化的內皮細胞。通過對RAAS系統的深入研究,已經發現一條心衰的炎癥反應鏈,即體內的RAAS系統被激活,導致Ang II的釋放增加,激活NF-κB,形成各種炎性因子對血管壁的浸潤,使得TNF-α、IL-6及CRP等炎性因子的過度表達,最終產生炎癥反應。有研究證實,Ang II可以上調TLR4的表達,這可能是Ang II的致炎作用之一[5],并且它通過TLR4/NF-κB通路介導血管平滑肌細胞的炎性反應[6]。研究證明,AngⅡ是 RAAS系統的主要活性物質,在正常生理狀態下,心肌局部的AngⅡ水平基本保持在10~8 mol/L左右,調節血管收縮及水鹽代謝;但在高血壓、心肌缺血或心力衰竭等病理條件下,心肌組織局部的AngⅡ水平便能上升到10~7 mol/L以上,而此時則能夠導致心肌肥大及血管重構。近些年通過對RAAS系統的深入研究,人們已經發現一條心衰的炎癥反應鏈,即Ang II釋放→激活NF-κB→啟動細胞因子CRP最終導致炎癥反應。所以Ang II無論是從RAAS系統,還是從炎癥通路,均能促使心力衰竭的進一步發展和惡化,所以抑制Ang II的升高,便能夠切段該反映鏈,進而在一定程度上控制心衰的發展。
本次實驗結果顯示,模型組AngII含量最高,假手術組含量最低,各給藥組含量均較模型組有所降低,其中以二參湯組最為顯著。說明二參湯、纈沙坦均能抑制AngII的生成,在一定程度上阻斷Ang II在CHF中的傳導途徑,對控制CHF的進一步發展起到了作用。