曾佳麗 姜雪 余瑾



[摘要] 目的 本實驗通過建立IgA腎病大鼠模型及大鼠腎小球系膜細胞體外實驗,進行藥物干預,探討昆仙膠囊的腎保護作用和對系膜細胞增殖的影響。 方法 48只雌性SD大鼠隨機均分為正常組、IgAN模型組、纈沙坦組、昆仙膠囊組,每組12只,造模第5周開始灌胃給藥,分別于第10周、16周每組每次隨機挑選6只大鼠,檢測24 h尿蛋白定量、血肌酐、尿素氮,觀察大鼠腎臟IgA免疫熒光和病理學改變。同時,選擇IgA1刺激大鼠系膜細胞,將系膜細胞分為正常組、模型組、纈沙坦高低劑量組和昆仙膠囊高中低劑量組,CCK8檢測藥物干預后細胞增殖及抑制情況。 結果 第10周、16周昆仙膠囊組IgAN大鼠24 h尿蛋白定量、腎功能指標較模型組有顯著性差異(P<0.05),與纈沙坦組比較無明顯統計學差異(P>0.05)。同時腎組織病理均提示昆仙膠囊組病變程度較模型組輕。細胞實驗提示經IgA1刺激后可引起系膜細胞增殖,藥物干預后昆仙膠囊能夠明顯抑制IgA1誘導的大鼠系膜細胞增殖。 結論 本實驗說明昆仙膠囊能減少IgAN大鼠尿蛋白,延緩腎功能進展,減緩腎組織病理改變,其機制可能是通過抑制系膜細胞增殖而達到的。
[關鍵詞] 昆仙膠囊;IgA腎病;腎功能;腎小球系膜細胞
[中圖分類號] R691.3 ? ? ? ? ?[文獻標識碼] A ? ? ? ? ?[文章編號] 1673-9701(2019)31-0038-05
Renal protection effect of kunxian capsule on rat with IgA nephropathy and its influence on mesangial cell proliferation
ZENG Jiali ? JIANG Xue ? YU Jin ? TANG Xuanli ? LIN Xing ? GE Shanshan ? CHEN Hongyu
Guangxing Hospital Affiliated to Zhejiang University of Traditional Chinese Mechicine, Hangzhou Hospital of Traditional Chinese Medicine, Hangzhou ? 310007, China
[Abstract] Objective To investigate the renal protection effect of kunxian capsule on rats with IgA nephropathy and its influence on mesangial cell proliferation through establishing a rat model of IgA nephropathy and rat mesangial cells in vitro experiment for drug intervention. Methods Forty-eight female SD rats were randomLy divided into the normal group, IgAN model group, valsartan group and kunxian capsule group, with 12 rats in each group. The drugs were intragastrically administered from week 5 of modeling. Six rats were selected from each group and each time in week 10 and week 16 to detect the 24 hour urine protein quantitation, serum creatinine and urea nitrogen and observe the IgA immunofluorescence and pathological changes of rat kidney. Meanwhile, IgA1 was selected to stimulate rat mesangial cells, and the mesangial cells were divided into the normal group, model group, valsartan high-low dose group and Kunxian capsule high-medium-low dose group. CCK8 was used to detect the cell proliferation and inhibition after drug intervention. Results In week 10 and week 16, there were significant differences in the 24 hour urine protein quantitation and renal function indicators between the kunxian capsule group and the model group(P<0.05), but there was no statistically significant difference between the kunxxia capsule group and the valsartan group(P>0.05). At the same time, it was suggested by renal tissue pathology that the degree of lesions in the kunxian capsule group was lower than that in the model group. It was suggested by cellular experiment that mesangial cell proliferation could be induced by IgA1 stimulation and kunxian capsule could significantly inhibit IgA1-induced proliferation of rat mesangial cells. Conclusion This experiment demonstrates that kunxian capsule can reduce the urine protein of IgAN rats, delay the progression of renal function and slow down the pathological changes of renal tissues. The mechanism may be achieved by inhibiting the proliferation of mesangial cells.
[Key words] Kunxian capsule; IgA nephropathy; Renal function; Mesangial cells
IgA腎病(IgA nephropathy,IgAN)是免疫復合物性腎炎,臨床表現為蛋白尿、血尿和腎功能惡化等,其主要病理機制是多聚IgA1分子(pIgA1)及其免疫復合物在腎小球系膜區沉積,引起腎小球系膜細胞(glomerular mesangial cells,GMCs)增生、擴張,系膜基質增加[1-3]。GMCs是腎小球中最活躍的固有細胞成分,是多種細胞因子作用的靶點[4],持續的免疫復合物沉積、GMCs活化及過多的細胞外基質沉積,引起GMCs增殖過度,健存腎單位進行性減少,導致漸進性的腎小球硬化和不可逆的腎功能受損。因此,抑制GMCs增殖對于減輕IgAN腎小球硬化、延緩疾病進展具有十分重要的意義。昆仙膠囊具有祛風濕益腎的功效,本研究擬通過動物及細胞實驗證實,其對IgA腎病有腎保護作用,機制可能是通過抑制系膜細胞增生達到。
1 材料與方法
1.1 動物及細胞
清潔級SD雌性大鼠48只,體重180~220 g,由上海西普爾必凱實驗動物有限公司提供,生產許可證號:SCXK(滬)2013-0016;飼養于浙江中醫藥大學動物實驗研究中心,動物實驗條件合格證:SYXK(浙)2013-0184;大鼠腎小球系膜細胞(以下簡稱GMCs)細胞株由北京協和醫院提供。
1.2 藥物與試劑
昆仙膠囊,規格0.3 g/膠囊(廣州陳李濟藥廠,國藥準字Z20060267)。雷公藤甲素(HPLC≥98%),淫羊藿苷(HPLC≥98%),購自中國藥品生物制品檢定所。纈沙坦膠囊(代文,北京諾華制藥,國藥準字H2004 0217,規格80 mg/片)。纈沙坦原藥由北京諾華制藥有限公司提供。牛血清白蛋白(BSA)(Amresco公司);脂多糖(LPS,Sigma公司);異硫氰酸熒光素(FITC)標記的兔抗鼠IgA抗體(LSBio公司);IgA1(Sigma公司);Cell Counting Kit-8試劑(Dojindo Laboratorie公司)。
1.3 動物造模及給藥
48只雌性SD大鼠適應性喂養1周后,隨機分為四組,即正常組、IgAN模型組、纈沙坦組、昆仙膠囊組。采用免疫誘導聯合繼發病變造模[5-6]:牛血清白蛋白(BSA)600 mg/kg隔日灌胃共10周+每周1次皮下注射四氯化碳(CCl4)0.1 mL混合蓖麻油0.3 mL共10周+第6周尾靜脈注射脂多糖(LPS)0.05 mg/只1次。正常組均以等體積生理鹽水替代進行灌胃、尾靜脈注射及皮下注射。造模第5周開始灌胃給藥,藥物劑量按照體表面積公式推算,昆仙膠囊用量為450 mg/(kg·d),纈沙坦組用量為16.8 mg/(kg·d),模型組和正常組按等體積蒸餾水灌胃。飼養期間提供標準普通飼料,自由攝食攝水。
1.4 實驗動物檢測指標
分別于第10周、第16周,每組每次隨機選取6只大鼠收集24 h尿液,測定24 h尿蛋白定量;腹主動脈采血,測定血肌酐、血尿素氮。取約1 mm×1 mm×1 mm大鼠腎皮質組織進行冰凍切片,2%牛血清白蛋白封閉,稀釋(1∶75)熒光標記IgA抗體滴于組織表面,孵育,沖洗,熒光顯微鏡下觀察大鼠腎小球系膜區IgA抗體熒光顯色情況,采用國際通用5級半定量法評價IgA沉積強度:低倍鏡下不能顯示、高倍鏡下似乎可見為(-);低倍鏡下似乎可見、高倍鏡下可見為(+);低倍鏡下可見,高倍鏡下清晰可見為(++);高倍鏡下耀眼為(+++);高倍鏡下刺眼為(++++)。取3 mm×3 mm×2 mm腎皮質置于10%福爾馬林固定液中固定;依次脫水、浸蠟、冷卻、切片、烘片、脫蠟、蘇木素染色、1%鹽酸酒精、1%碳酸鋰、1%伊紅液染色、脫水、烘干、中性樹膠封片,光鏡下觀察腎臟HE染色病理變化。取約1 mm×1 mm×1 mm的腎皮質組織,經2.5%戊二醛固定、1%鋨酸后固定、脫水、環氧樹脂618包埋,超薄切片后醋酸鈾-檸檬酸鉛染色,透射電鏡下觀察腎組織微觀結構改變。
1.5 大鼠系膜細胞培養及給藥
大鼠GMCs用含10%胎牛血清及1%青鏈霉素的MEM/EBSS培養液培養,在37℃、5% CO2及飽和濕度的條件下生長傳代。將IgA1解凍并稀釋濃度為100 μL/mL最佳。采用高效液相進行昆仙膠囊中雷公藤甲素及淫羊藿苷含量測定,制成濃度為(10 μg雷公藤甲素+4.6 mg淫羊藿苷)/mL的昆仙膠囊含藥培養液,以雷公藤甲素濃度為標準,稀釋不同濃度的昆仙膠囊含藥培養液。配制纈沙坦濃度為1 mg/mL的液體,稀釋相應濃度用于細胞給藥。取對數生長期的大鼠GMCs,接種到96孔培養板上(共4個,作3 h、6 h、12 h和24 h檢測)培養。后換無血清培養液培養24 h使細胞同步生長,棄上清,分為五組(正常組為完全培養液,余4組分別為IgA濃度25、50、75、100 μL/mL的培養液)。每組設8個復孔,各組分別給藥處理3 h、6 h、12 h和24 h后,棄上清,加入培養液和CCK-8試劑(1:10稀釋),37℃避光孵育1.5 h,450 nm檢測吸光度OD值,計算細胞增殖率,得出最佳增殖時間點為24 h。
1.6 大鼠系膜細胞增殖的測定
取對數生長期的大鼠GMCs,接種到96孔培養板上培養24 h,換無血清培養液培養24 h使細胞同步生長。實驗分組:①正常組:完全培養液;②模型組:正常組+mIgA1(濃度100 μL/mL);③纈沙坦低劑量組:模型組+10-7 mg/mL的纈沙坦培養液;④纈沙坦高劑量組:模型組+10-5 mg/mL的纈沙坦培養液;⑤昆仙膠囊低劑量組:模型組+雷公藤甲素濃度為0.04 μg/mL的昆仙膠囊培養液;⑥昆仙膠囊中劑量組:模型組+雷公藤甲素濃度為0.06 μg/mL的昆仙膠囊培養液;⑦昆仙膠囊高劑量組:模型組+雷公藤甲素濃度為0.08 μg/mL的昆仙膠囊培養液。按不同分組加入受試品進行藥物干預,每組設7個復孔,各組分別藥物干預12 h、24 h、36 h后,根據CCK-8測定細胞增殖率。
1.7 統計學方法
采用SPSS20.0統計軟件進行分析,各組計量資料以(x±s)表示,同組檢驗采用t檢驗,多組組間比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 各組大鼠第10周、第16周24 h尿蛋白定量水平比較
第10周,模型組24 h尿蛋白定量高于其余三組(P<0.05);纈沙坦組和昆仙膠囊組無明顯差異(P>0.05),但均高于正常組(P<0.05)。第16周,模型組高于其余三組(P<0.05);纈沙坦組與昆仙膠囊組無明顯統計學差異(P>0.05)。纈沙坦組和昆仙膠囊組第16周尿蛋白定量均較第10周降低(P<0.05)。見表1。
2.2 各組大鼠第10周、第16周血肌酐水平比較
第10周和16周,模型組血肌酐高于其余三組(P<0.05);纈沙坦組和昆仙膠囊組無明顯差異(P>0.05),但均高于正常組(P<0.05)。模型組第16周與第10周血肌酐比較有所上升(P<0.05),纈沙坦組和昆仙膠囊組第16周與第10周血肌酐比較,差異無統計學意義(P>0.05)。見表2。
2.3 各組大鼠第10周、第16周血尿素氮水平比較
第10周和16周,模型組血尿素氮高于其余三組(P<0.05);纈沙坦組和昆仙膠囊組血尿素氮第16周與第10周比較雖無明顯統計學差異(P>0.05),但有略微下降趨勢,兩組間血尿素氮水平無統計學差異(P>0.05)。見表3。
2.4 大鼠腎臟病理改變
2.4.1 免疫熒光IgA沉積情況 ?第10周正常組大鼠腎小球系膜區無明顯IgA免疫復合物沉積;其余各組大鼠均可見到綠色IgA熒光免疫復合物在腎小球系膜區呈團塊狀或顆粒狀沉積,模型組熒光強度為++~++++,藥物干預組熒光強度為++~+++。見封三圖1。
2.4.2 HE染色病理形態學改變 ?觀察第16周各組大鼠腎皮質組織標本,可見正常組大鼠腎小球結構清晰,系膜細胞及基質未見明顯增生,未見腎小球細胞性或纖維性新月體形成,未見硬化腎小球;模型組均可見腎小球系膜細胞和基質輕重不等的彌漫性增生,局灶性系膜細胞增生、硬化,伴腎小管灶狀萎縮,腎間質灶狀淋巴細胞和單核細胞浸潤,伴或不伴有纖維化。纈沙坦組和昆仙膠囊組腎小球系膜細胞和基質彌漫性增生情況較模型組輕,纈沙坦組與昆仙膠囊組之間病變情況未見明顯差異。見封三圖2。
2.4.3 電鏡下病理形態學改變 ?觀察第16周電鏡下各組大鼠腎臟病變情況,正常組無腎小球系膜細胞、基質增生及電子致密物沉積,足突細胞形態正常,排列整齊有序。模型組可見腎小球系膜細胞增生,基質明顯增多,伴有大量電子致密物沉積及部分足突融合。纈沙坦組和昆仙膠囊組系膜細胞增生、基質增多及電子致密物沉積較模型組相對較少,纈沙坦組與昆仙膠囊組之間未見明顯差異。見封三圖3。
2.5 大鼠腎小球系膜細胞增殖抑制情況
經IgA1誘導增生后大鼠GMCs增殖明顯,24 h時模型組增殖水平與其他各組存在顯著性差異(P<0.05)。昆仙膠囊及纈沙坦對IgA1誘導的GMCs增殖具有明顯的抑制作用,且呈劑量依賴關系,其中昆仙膠囊中高劑量組優于纈沙坦高、低劑量組(P<0.05)。36 h時昆仙膠囊各濃度組及纈沙坦高劑量組細胞增殖水平明顯低于模型組(P<0.05),昆仙各劑量組細胞增殖水平均明顯低于正常組(P<0.01),說明給藥36 h時間過長,對系膜細胞增殖的抑制作用太過。見表4、5。
3 討論
IgA腎病是我國最常見的原發性腎小球疾病,約占原發性腎小球腎炎的43.5%~54.3%,是導致終末期腎臟病的主要原因之一。目前認為[10-12],遺傳、環境和免疫因素共同決定了IgA腎病的發病,發病的始動因素可能是IgA1分子糖基化異常,造成IgA1易自身聚集或被IgG或IgA識別形成免疫復合物,與系膜細胞結合沉積,進而觸發炎癥反應,使腎小球細胞增生,腎小球硬化、小管萎縮和間質纖維化。目前,IgA腎病常見治療方案有激素、免疫抑制劑、血管緊張素轉換酶抑制劑(ACEI)/血管緊張素Ⅱ受體拮抗劑(ARB)等[13]。本實驗采用臨床運用廣泛的ARB類藥物纈沙坦膠囊作為藥物陽性對照用藥。中成藥昆仙膠囊由昆明山海棠、淫羊藿、枸杞子和菟絲子四藥配伍制成,祛風除濕、補腎通絡。其中君藥昆明山海棠是衛矛科雷公藤屬,具有祛風除濕、舒筋活絡、清熱解毒功效,主要成分雷公藤甲素具有免疫抑制與抗炎作用;臣藥淫羊藿祛風濕、補腎強精,所含的淫羊藿苷具保護生殖和骨骼系統及類激素樣作用;菟絲子、枸杞子為佐使,菟絲子的主要成分黃酮具調節免疫、保肝及類激素樣作用,枸杞子所含的甜菜堿能調節免疫、保肝、提高生殖能力,二者與淫羊藿共同發揮補腎養血,強精健骨功效,并能減少昆明山海棠的對肝腎及性腺的毒副作用,達到增效減毒的效果[14]。臨床上昆仙膠囊主要用于治療類風濕性關節炎、強直性脊柱炎等免疫相關性疾病[15-16]。亦有研究表明[17-19],昆仙膠囊能降低狼瘡性腎炎、腎病綜合征、慢性腎臟病患者的24 h尿蛋白定量,且無明顯肝腎功能損害。動物實驗顯示[20],昆仙膠囊可降低陽離子化牛血清白蛋白誘導的大鼠原位免疫復合物模型的24 h尿蛋白定量,改善腎小球病理損害,其機制可能與昆仙膠囊降低免疫復合物在基底膜沉積有關。
本實驗IgA腎病大鼠造模模型采用免疫誘導聯合繼發病變型,應用大分子物質BSA作為免疫原,激發機體免疫反應,CCL4皮下注射減低肝臟清除能力,使血液中的IgA聚集形成免疫復合物,在腎小球系膜區沉積,并注射免疫佐劑LPS增強免疫原性[5-6]。此造模方法安全性高,實驗過程中無實驗大鼠死亡,免疫熒光可見腎小球系膜區較強的IgA免疫復合物沉積,實驗第10周檢測24 h尿蛋白定量、血肌酐、血尿素氮方面,模型組均較正常組有顯著性差異,提示IgA腎病大鼠造模成功。第16周病理HE染色和電鏡均提示昆仙膠囊組腎小球系膜細胞和基質彌漫性增生及免疫復合物沉積情況較模型組輕。同時,細胞實驗提示大鼠GMCs經血清IgA1刺激24 h后出現了明顯的細胞增殖,而昆仙膠囊組及纈沙坦組對IgA1誘導的大鼠GMCs增殖具有明顯的抑制作用,與模型組比較有明顯的統計學意義,且呈一定的劑量依賴關系,其中昆仙中高劑量組抑制作用優于纈沙坦組。
綜上所述,本實驗結果提示昆仙膠囊在保護IgA腎病模型大鼠腎功能、減少24 h蛋白尿、減緩腎臟病理病變速度方面具有一定作用,其作用機制可能是通過抑制腎小球系膜細胞增殖而達到的。
[參考文獻]
[1] Lai KN.Pathogenesis of IgA nephropathy[J].Nat Rev Ne-phrol,2012,8(5):275-283.
[2] Moura IC,Benhamou M,Launay P,et al.The glomerular response to IgA deposition in IgA nephropathy[J]. Semin Nephrol,2008,28(1):88-95.
[3] Suzuki H,Kiryluk K,Novak J,et al. The pathophysiology of IgA nephropathy[J].J Am Soc Nephrol,2011,22(10):1795-1803.
[4] Scindia YM,Deshmukh US,Bagavant H. Mesangial pathology in glomerular disease:Targets for therapeutic intervention[J].Adv Drug Deliv Rev,2010,62(14):337-343.
[5] 陸慧瑜,張巧玲,蔣小云,等.IgA腎病大鼠模型的建立[J].中國誤診學雜志,2011,11(6):1264-1267.
[6] 張靜,李靜,桑曉紅,等.運用兩種BSA劑量建立IgA腎病大鼠模型觀察[J].中國中西醫結合腎病雜志,2013, 14(1):13-16.
[7] Yu XQ,Wei JL.Kidney disease in China:Recent progress and prospects[J].Chin Med J (Engl),2009,122(17):2048-2053.
[8] Strippoli GF,Maione A,Schena FP,et al.IgA nephropathy:A disease in search of a large-scale clinical trial to reliably inform practice[J]. Am J Kidney Dis,2009,53(1):5-8.
[9] Zhou FD,Zhao MH,Zou WZ,et al.The changing spectrum of primary glomerular diseases within 15 years:A survey of 3331 patients in a single Chinese centre[J]. Nephrol Dial Transplant,2009,24(3):870-876.
[10] Floege J.The pathogenesis of IgA nephropathy:What is new and how does it change therapeutic approaches?[J].Am J Kidney Dis,2011,58(6):992-1004.
[11] Coppo R,Amore A,Peruzzi L,et al.Innate immunity and IgA nephropathy[J].J Nephrol,2010,23(6):626-632.
[12] Kiryluk K,Novak J.The genetics and immunobiology of IgA nephropathy[J].J Clin Invest,2014,124(6):2325-2332.
[13] Boyd J K,Cheung C K,Molyneux K,et al.An update on the pathogenesis and treatment of IgA nephropathy[J].Kidney Int,2012,81(9):833-843.
[14] 劉小燕,祁愛蓉,羅登貴,等.雷公藤制劑生殖毒性及聯用減毒研究進展[J].中國中醫藥信息雜志,2018,25(4):133-135.
[15] 林昌松,楊岫巖,戴冽,等.昆仙膠囊治療類風濕關節炎多中心臨床研究[J].中國中西醫結合雜志,2011,31(6):769-774.
[16] 林昌松,劉明嶺,徐強,等.昆仙膠囊治療強直性脊柱炎療效觀察[J].新醫學,2011,42(3):175-178.
[17] 曾又佳,孔慧霞,李順民.昆仙膠囊治療慢性腎臟病蛋白尿的臨床療效及其安全性觀察[J].新中醫,2014,46(7):74-76.
[18] 陳婷,李海堅,麥偉民.昆仙膠囊聯合強的松治療難治性腎病綜合征的臨床觀察[J].中藥藥理與臨床,2011, 27(6):97-99.
[19] 高明利,李曉晨,齊慶.昆仙膠囊降低狼瘡性腎炎尿蛋白的臨床觀察[J].中藥材,2010,33(4):651-652.
[20] 楊麗平,趙世萍,李克明.昆仙膠囊對陽離子化牛血清白蛋白所致大鼠腎病模型的保護作用[J].中國中西醫結合腎病雜志,2009,10(12):1046-1049.
(收稿日期:2019-06-05)