紅陽獼猴桃糖度分布與糖度測定方法分析

周艷　朱永清　李華佳　袁懷瑜　徐瑞　鐘楊　曹樂淑　李可

摘要：本文以紅陽獼猴桃為研究對象，分別測定果實不同部位及全果糖度值，通過差值分析，單因素方差分析等初步了解了獼猴桃果實糖度分布特征，結果顯示紅陽獼猴桃糖度分布由莖端向花端呈非等梯度增長趨勢，以果實赤道線為分界，兩端果實糖度存在顯著差異，即P1、P2與P3、P4之間差異顯著，表明果實中間部位糖度分布變異系數大。同時，結合目前獼猴桃糖度檢測方法及技術手段，探討了糖度分布對糖度檢測的影響，結果表明，采用兩端測定平均值能夠較好地反應全果糖度，對于基于糖度建立無損檢測方法時，更應該注意樣本參數收集部位與糖度檢測部位之間的一致性。以上研究為紅陽獼猴桃最佳糖度測定提供了科學依據。

關鍵詞：紅陽;獼猴桃;糖度分布;AVOA;無損檢測

中圖分類號：S-3文獻標識碼：ADOI：10.19754/j.nyyjs.20200115006

收稿日期：2019-11-12

基金項目：四川省科技計劃重點研發項目（項目編號：2019YFG0155）

作者簡介：周艷（1995-），女，本科。研究方向：采后生理;通信作者李可（1987-），男，博士。研究方向：食品生物技術。

糖度是果實最主要的內部品質之一，糖度中85%左右的成分是可溶性固形物（SSC），因此常以可溶性固形物含量反映糖度。SSC含量的變化與果實的生長、發育、成熟、衰老等過程密切相關，SSC變化能夠反映生長和貯藏過程中外界環境如生長激素、脅迫因子等的影響。因此，獼猴桃SSC含量不僅是感官評價和品質分級的一個重要指標，也是檢驗水果生長發育、成熟衰老的重要指標，在農業研究和農業生產以及水果貯藏環境下，SSC檢測值已經成為評價果實生長發育規律，制定科學的采收標準，評判果實貯藏保鮮效果的最重要、最關鍵指標之一 [1-5]。基于SSC的重要性，目前多數研究將高光無損檢測技術 [6]、熒光高光譜圖像無損檢測技術 [7]、近紅外漫反射光譜法無損檢測技術 [8]等用于SSC含量分析，以期通過建立快速、準確、無損的獼猴桃可溶性固形物含量檢測方法來反映果實內部品質。但以上內容均需要以準確的SSC檢測方法為基礎。

研究表明，在同一水果的不同部位，由于代謝水平差異其糖度值存在較大差異[9]，因此如何準確采樣及計算成為SSC的關鍵。國內檢測水果SSC的方法是取部分果肉榨汁、將果汁滴入折射儀中測量 [10]，該方法具有儀器價格低廉、操作過程簡便等優點，是水果可溶性固形物含量測定的經典方法。但是經查閱國內SSC相關檢測方法可知，目前國內關于獼猴桃SSC含量檢測方法沒有統一的標準和參考依據。耿玉韜 [11]研究了金冠蘋果和碭山酥梨的糖度最佳檢測點為中點，賈云云等分析認為草莓果實最佳測糖位也為果實中段 [12]。目前獼猴桃檢測方法多借鑒Burdon [13]等的方法，分別檢測果實兩端SSC含量然后取平均值，然而由于對獼猴桃SSC分布不清楚，該方法的合理性及其在紅外、熒光高光譜等新技術方面的普適性還有待進一步研究。此外，我國獼猴桃生產者在SSC檢測過程中更多的是將兩端果汁不等量混勻后檢測SSC含量，由此可見，關于獼猴桃SSC含量檢測方法及其科學依據的探討是非常必要的。

基于此，本文研究了不同部位果實SSC含量與全果SSC含量之間的關系，以期為獼猴桃SSC含量測定方法提供依據。

1材料與方法

1.1材料

果實采收后20℃自然條件下成熟，選取硬度4～6N果實（可食用成熟度）時，將果實按照縱徑長度均勻分為4段。

1.2方法

選取果肉硬度在4～6N果實（可食用成熟度），使用ATAGO的PAL-1 POCKET糖度計測定果肉汁液的糖度（Brix）。將果實沿縱軸切為相等兩部分，將其中一半獼猴桃從蒂至臍按縱軸長度分為P1、P2、 P3、P4 進行4等分;取每段果肉組織搗碎機搗碎后5000rpm離心5min，取上清液用于測定可溶性固形物含量分別記為P1、P2、P3、P4;將另一半果實果肉榨汁測定糖度代表全果糖度，記為AVE。

1.3數據分析

采用JMP13.0分析糖度在果實不同部位的分布情況，SPSS19.0對不同部位果實及全果糖度值進行差異性分析。

2結果與討論

2.1不同部位糖度分布分析

果實糖度分布與果實品種具有相關性，獼猴桃屬于呼吸躍變型果實，研究果實糖度的分布，確定測糖最適部位對正確了解果實含糖量，了解果實生長發育水平和品質優劣，指導生產、貯藏和銷售具有重要的意義。本文分析了20枚可食成熟度獼猴桃果實的SSC分布情況，結果如下。

由圖1可知，獼猴桃糖度的分布由莖端至花端呈逐漸增加的趨勢，糖度由高到低依次排序為P4>P3>P2>P1，P1、P2、P3、P4糖度均值分別為17.31Brix、1.61Brix、18.55Brix和19.02Brix，P3與P2之間的差異最大，P4與P3的差異其次，P1與P2之間的差異最小。進一步對不同部位糖度分布情況分析可知（圖2，表1），由蒂端到臍端糖度分布95%上限和下限呈遞增趨勢，果實糖度分布逐漸向較大數值平移，P1部位果實糖度分布在15～20Brix之間，其中分布在17～18Brix范圍內占比最大。P2部位果實糖度多數分布在16～21Brix，糖度17～18Brix和18～19Brix占比均比較;P3部位糖度連續分布在15～21Brix之間，多數糖度較為均勻地分布在17～21Brix較寬的范圍內，P4部位果實糖度主要分布在17～22Brix，分布在19～20Brix的果實占比最大。同時，通過標準偏差分析可知，雖然不同部位糖度分布存在差異，但不同果實各部位糖度分布變異情況較為接近。綜上可知，果實SSC含量雖然呈增加趨勢，但這種增加趨勢并不均勻，赤道部位糖度縱向變化最大。

2.2不同部位果實SSC與全果SSC差異分析

在明確獼猴桃糖度分布情況的基礎上，本文分別通過做差法和單因素方差分析進一步對各部位果肉糖度、全果糖度的差異進行分析。

通過比較4個部位果肉糖度與全果果肉糖度可知，各部位與全果果肉差異從大到小排序為P4>P3>P1>P2>P1&P4>P2&P3（圖3），與全果糖度差值絕對值之和分別為15.4（P1）、10.0（P2）、24.8（P3）、28.8（P4）、6.7（P1&P4）、6.25（P2&P3）。由此可知，采用P1&P4/P2&P3更接近平均糖度值。

進一步對以上各部位糖度進行單因素方差分析，結果顯示，P1、P2、AVE、P1&P4、P2&P3之間無顯著差異（P>0.05），P3、P4、AVE、P1&P4、P2&P3之間無顯著差異（P>0.05），而P1、P2與P3、P4之間存在顯著差異（P<0.05），P4與P1、P2之間存在極顯著差異（P<0.01），P3與P1之間也存在極顯著差異（P<0.01）。P&P4，P2&P3與AVE較為接近，P2&P3與AVE最為接近，說明以果實赤道部位為分界兩端果實糖度分布存在顯著差異，P&P4，P2&P3值與AVE相較于單一部位糖度值更為接近。

3討論

糖度的測定是重要的，在獼猴桃糖度分析檢測方法中，通常采用果實部分果肉糖度測定值代表，新西蘭等采用果實兩端果肉果汁SSC測定值的平均值表示，而國內鮮有關于糖度測定方法的描述 [14-17]。同時，據筆者常年調研過程中發現，目前實際生產中采用的糖度測定方法也極為不規范，取樣部位比較隨機，部分雖然采用取兩端果汁混合測定，但存在不等量混合等問題。通過對獼猴桃各部位糖度分布及其與全果糖度值差異分析可知，糖度在獼猴桃果實中呈不均勻分布，獼猴桃糖度由蒂端到臍端呈非等梯度增長變化，以果實赤道線為分界兩端糖度分布呈顯著性差異（P<0.05），采用兩端平均值和赤道線兩邊平均值相較于單一部位能更好的代表果實糖度。因此，為了準確測定果實的糖度，兩端分別采樣，等量混合或采用兩段測定平均值才能更好代表果實的真實SSC含量。隨著近紅外等技術的日趨成熟，以獼猴桃SSC為靶標建立的獼猴桃成熟度紅外等無損檢測技術逐漸成為研究熱點，而這些方法的建立更加注重檢測部位與果肉糖度之間的對應關系，對建立模型的優劣存在較大影響 [18]。目前，紅外檢測多以果實赤道部位為檢測點，以果實SSC為指標構建果實成熟度無損檢測方法，本研究結果表明赤道兩側P2、P3部位果肉糖度差異較大，說明在采用紅外光譜儀等建立無損檢測方法時，很容易因為檢測部位的不同造成較大差異，因此更應該保證紅外檢測部位和SSC測定的一致性和對應性。

對獼猴桃糖度分布的了解是準確測定糖度的基礎，也是研究獼猴桃果實生理變化的基礎。本文揭示了獼猴桃可食狀態下糖度的分布情況，關于不同成熟度果實糖度分布、硬度等其它指標分布與糖度之間對應關系等有待進一步研究。

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（責任編輯李媛媛）