miR-433-3p靶向MAPK8對肝癌細胞MHCC97H增殖、凋亡和遷移的調控作用①

萬智雙 熊 丁 曹 宸 (眉山市人民醫院，眉山 620010)

肝癌是一種頻繁發生于慢性肝臟疾病和肝硬化中的惡性腫瘤疾病，原發性肝癌在常被診斷出的癌癥當中位居第六，并且是導致世界范圍內癌癥相關性死亡的第二大主要原因[1,2]。超過半數的肝癌新病例和死亡都發生在中國，其中最常見的原發性肝癌類型是肝細胞癌[3]。在中國所有的癌癥病例當中，肝癌生存率最低，由于早期診斷的缺乏，當診斷出肝癌時已經到了晚期，不適合采用根治性手術治療[4]。因此，發現能特異性阻斷肝癌細胞增殖和轉移的靶向分子，對于肝癌的治療具有重要意義。

MicroRNA(miRNA)是一種長度約18～22 nt的內源性小分子非編碼RNA，在基因表達調控中發揮著重要作用[5]。miRNA在生物體內的異常表達與諸多疾病都有著密切聯系，其中包括癌癥。迄今為止已有大量文獻報道了miRNA在癌癥發展和藥物抗性中所起到的關鍵調控作用[6,7]。然而由于miRNA功能的復雜性，很多方面仍有待進一步研究。在多篇文獻中均報道了miR-433-3p對包括神經膠質瘤、食管鱗狀細胞癌、膀胱癌等在內的多種腫瘤的抑制作用[8-10]。本研究通過體外細胞實驗探討了miR-433-3p與有絲分裂原活化蛋白激酶8(mitogen-activated protein kinase 8,MAPK8)的關系，以及miR-433-3p對肝癌細胞MHCC97H增殖、凋亡和遷移的調控，為miR-433-3p對肝癌的作用提供了新的實驗及理論依據。

1 材料與方法

1.1材料

1.1.1主要試劑 DMEM培養基、胎牛血清購自美國Gibco公司，青鏈霉素、Trizol提取液、RIPA裂解液購自北京索萊寶生物公司，lipofectamine 2000購自美國Thermo Fisher公司，miR-433-3p mimic、陰性對照mimic、pcDNA3.1-MAPK8(pc-MAPK8)由廣州銳博生物公司合成，Primescript RT Reagent kit和SYBR PremixEX Taq II試劑盒購自TaKaRa公司，熒光素酶報告系統購自美國Promega公司，BCA試劑盒購自廣州永諾生物公司，CCK8試劑盒、Hoechst試劑盒購自上海碧云天生物公司，所用引物由上海生工生物合成，MAPK8、增殖細胞核抗原(Prolifera-ting cell nuclear antigen,PCNA)、活化半胱天冬酶3(cleave caspase 3,cl-CASP3)、上皮性鈣黏附蛋白(E-cadherin)、神經性鈣黏附蛋白(N-cadherin)抗體購自美國Santa Cruz公司。

1.1.2臨床樣本獲取 收集從2010年到2016年存檔于眉山市人民醫院的經病理檢查確診為肝癌的石蠟包埋組織27例及癌旁組織27例，所有樣本獲取已取得患者家屬知情同意，研究獲得本院倫理委員會批準。

1.2方法

1.2.1細胞培養 SMMC-7721、HepG2、MHCC 97H、Hep3B肝癌細胞株和HL-7702人正常肝細胞株購自美國ATCC公司，采用含1%青鏈霉素和10%胎牛血清的DMEM培養基進行培養，培養于37℃和5%CO2環境中。

1.2.2細胞分組和處理 將MHCC97H細胞分為空白對照(Control)組、陰性對照(negative control,NC)組、miR-433-3p組、pc-MAPK8組和miR-433-3p+pc-MAPK8組，根據對應的組別，按照lipofectamine 2000說明書，陰性對照mimic轉染NC組細胞，miR-433-3p mimic轉染miR-433-3p組細胞，pc-MAPK8轉染pc-MAPK8組細胞，miR-433-3p mimic和pc-MAPK8共轉染miR-433-3p+pc-MAPK8組細胞，轉染24 h后收集細胞用于后續實驗。

1.2.3RT-PCR檢測 Trizol溶液提取各組樣品RNA并通過反轉錄得到cDNA，進行PCR反應，條件設置為：95℃預變性2 min，95℃變性5 s，60℃退火10 s，反應進行40個循環。按照SYBR PremixEX TaqⅡ試劑盒說明書檢測mRNA或miRNA轉錄水平，通過2-ΔΔCt法進行計算。

1.2.4熒光素酶報告實驗檢測 生物信息學的方法分析預測了miR-433-3p與MAPK8的靶向作用位點，構建MAPK8 3′-UTR區域的pGL3 luciferase promoter野生型(WT)和突變型(MUT)載體，分別與miR-433-3p或陰性對照mimic共轉染HEK293細胞，48 h后檢測熒光素酶酶活性。

1.2.5Western blot檢測 RIPA溶液提取各組細胞總蛋白，BCA試劑盒定量，每孔30 μg上樣量進行點樣，通過10%SDS-PAGE分離蛋白，半干轉膜法將蛋白印跡到PVDF膜上，使用5%脫脂牛奶封閉2 h，使用一抗4℃孵育過夜，PBS緩沖液清洗PVDF膜，加入二抗孵育2 h，滴加ECL顯色液進行顯影，實驗采用GAPDH作為內參。

1.2.6CCK8法檢測細胞增殖 將按1.2.1處理的細胞于5%CO2，37℃條件下繼續培養，每隔1 d使用CCK8法測定細胞增殖倍數，總共進行3 d。具體測定方法為：細胞接種于96孔板，每孔加入10 μl的CCK8試劑并培養4 h，酶標儀測定450 nm吸光值。

1.2.7Hoechst檢測細胞凋亡 細胞接種于6孔板，4%多聚甲醛固定細胞，0.5% TrintonX-100透膜處理，滴加Hoechst染料進行染色30 min，熒光顯微鏡觀察細胞凋亡。

1.2.8Transwell檢測細胞侵襲 50 μl基質膠加入Transwell小室中37℃凝固3 h，上室加入無血清培養基，下室加入完全培養基，各組細胞分別接種于Transwell小室上室，培養48 h。擦除未過膜的細胞，多聚甲醛固定殘余的細胞，使用1%結晶紫進行染色并拍照。

1.2.9劃痕愈合法檢測細胞遷移 細胞接種于6孔板，細胞鋪滿板內80%的空間時，中槍頭對細胞進行垂直水平劃線，PBS清洗之后，在5%CO237℃的條件下培養24 h，顯微鏡觀察劃痕愈合情況。

2 結果

2.1肝癌細胞株中miR-433-3p表達下調 如圖1A所示，與正常肝組織比較，肝癌組織中miR-433-3p表達顯著降低，差異有統計學意義(P<0.01)。同時，如圖1B所示，與正常肝細胞株HL-7702比較，肝癌細胞株SMMC-7721、HepG2、MHCC97H、Hep3B中miR-433-3p表達均顯著降低，差異有統計學意義(P<0.01)。選用了miR-433-3p表達量最低的MHCC97H細胞株進行后續實驗。

圖1 RT-PCR檢測人臨床肝組織樣本和細胞株中miR-433-3p表達Fig.1 RT-PCR detection of miR-433-3p expression in human clinical liver tissue samples and cell linesNote: **.P<0.01 versus Normal & HL-7702 group.

2.2miR-433-3p抑制MAPK8 mRNA轉錄 如圖2所示，與Control組比較，NC組miR-433-3p表達水平無顯著差異，miR-433-3p組miR-433-3p表達水平顯著升高，差異有統計學意義(P<0.01)；同時，與Control組比較，NC組MAPK8轉錄水平無顯著差異，miR-433-3p組MAPK8轉錄水平顯著降低，差異有統計學意義(P<0.01)。

圖2 RT-PCR檢測MHCC97H細胞中miR-433-3p對MAPK8轉錄的影響Fig.2 RT-PCR detection of effects of miR-433-3p on MAPK8 transcription in MHCC97H cellsNote: n=6,**.P<0.01 versus Control group.

2.3miR-433-3p靶向作用于MAPK8 如圖3所示，與MAPK8 WT+NC比較，MAPK8 WT+miR-433-3p組熒光素酶活性顯著降低，差異有統計學意義(P<0.01)；MAPK8 MUT+NC與MAPK8 MUT+miR-433-3p組不存在顯著的熒光素酶活性差異。

圖3 熒光素酶報告實驗檢測miR-433-3p和MAPK8的靶向作用關系Fig.3 Luciferase reporter assay for targeting relationship between miR-433-3p and MAPK8Note: n=3,**.P<0.01 versus MAPK8 WT+NC group.

2.4miR-433-3p抑制MAPK8表達 如圖4所示，與Control組比較，miR-433-3p組MAPK8蛋白表達顯著降低，pc-MAPK8組MAPK8蛋白表達顯著升高，差異有統計學意義(P<0.01)；與pc-MAPK8組比較，miR-433-3p+pc-MAPK8組MAPK8蛋白表達顯著降低，差異有統計學意義(P<0.01)。

圖4 Western blot檢測MAPK8蛋白表達Fig.4 Western blot detection of MAPK8 protein expressionNote: n=6,**.P<0.01 versus Control group;##.P<0.01 versus pc-MAPK8 group.

2.5miR-433-3p抑制肝癌細胞增殖 如圖5所示，與Control組比較，miR-433-3p組MHCC97H細胞增殖水平顯著降低，pc-MAPK8組細胞增殖水平顯著升高，差異有統計學意義(P<0.01)；與pc-MAPK8組比較，miR-433-3p+pc-MAPK8組細胞增殖水平顯著降低，差異有統計學意義(P<0.01)。

圖5 CCK8檢測MHCC97H細胞增殖Fig.5 CCK8 detection of cell proliferation of MHCC 97H cellsNote: n=6,**.P<0.01 versus Control group;##.P<0.01 versus pc-MAPK8 group.

2.6miR-433-3p誘導肝癌細胞凋亡 如圖6所示，與Control組比較，miR-433-3p組MHCC97H細胞凋亡率顯著升高，pc-MAPK8組細胞凋亡率顯著降低,差異有統計學意義(P<0.01)；與pc-MAPK8組比較，miR-433-3p+pc-MAPK8組細胞凋亡率顯著升高，差異有統計學意義(P<0.01)。

圖6 Hoechst檢測MHCC97H細胞凋亡Fig.6 Hoechst detection of cell apoptosis of MHCC 97H cellsNote: n=6,**.P<0.01 versus Control group;##.P<0.01 versus pc-MAPK8 group.

2.7miR-433-3p抑制肝癌細胞遷移 如圖7所示，與Control組比較，miR-433-3p組MHCC97H細胞劃痕愈合率顯著降低，pc-MAPK8組細胞劃痕愈合率顯著升高，差異有統計學意義(P<0.01)；與pc-MAPK8組比較，miR-433-3p+pc-MAPK8組細胞劃痕愈合率顯著降低，差異有統計學意義(P<0.01)。

圖7 劃痕愈合法檢測MHCC97H細胞遷移能力Fig.7 Wound healing test of migration ability of MHCC 97H cellsNote: n=6,**.P<0.01 versus Control group;##.P<0.01 versus pc-MAPK8 group.

2.8miR-433-3p抑制肝癌細胞侵襲 如圖8所示，與Control組比較，miR-433-3p組MHCC97H細胞侵襲數目顯著降低，pc-MAPK8組細胞侵襲數目顯著升高，差異有統計學意義(P<0.01)；與pc-MAPK8組比較，miR-433-3p+pc-MAPK8組細胞侵襲數目顯著降低，差異有統計學意義(P<0.01)。

圖8 Transwell法檢測MHCC97H細胞侵襲能力Fig.8 Transwell chamber test of invasion ability of MHCC97H cellsNote: n=6,**.P<0.01 versus Control group;##.P<0.01 versus pc-MAPK8 group.

2.9miR-433-3p對增殖、 凋亡及轉移相關蛋白的表達調控 如圖9所示，與Control組比較，miR-433-3p組MHCC97H細胞中上皮間質轉化相關蛋白E-cadherin和凋亡相關蛋白Caspase-3表達顯著升高，上皮間質轉化相關蛋白N-cadherin和細胞增殖相關蛋白PCNA表達顯著降低，差異有統計學意義(P<0.01)；與pc-MAPK8組比較，miR-433-3p+pc-MAPK8組細胞中E-cadherin和Caspase-3蛋白表達升高，N-cadherin和PCNA蛋白表達降低，差異有統計學意義(P<0.01)。

圖9 Western blot檢測增殖、凋亡及轉移相關蛋白表達Fig.9 Western blot determination of proliferation,apoptosis and metastasis related protein expressionNote: n=6,**.P<0.01 versus Control group;##.P<0.01 versus pc-MAPK8 group.

3 討論

有絲分裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPKs)家族是一類在細胞中扮演著重要調控作用的絲氨酸-蘇氨酸蛋白激酶家族。促炎細胞因子、生長因子、環境脅迫等因素產生的刺激經過一系列激酶信號級聯放大，促使MAPK激活[11]。MAPK8又被稱為c-Jun氨基末端激酶1(c-Jun N-terminal kinase 1,JNK1)，是MAPKs家族的重要成員之一，可磷酸化并激活轉錄因子激活子蛋白1(activator protein-1,AP-1)，進而激活下游一系列基因的表達，在細胞增殖、細胞分化、細胞生存、細胞死亡、炎癥及其他病理過程中起著重要的調控作用[12]。在肝癌中，已有大量文獻表明MAPK8與肝癌具有密切的關系[13,14]，具有作為藥物治療靶點的潛力。而Tao等[15]的研究表明，在心肌中miR-433-3p可靶向作用于MAPK8與AZIN1，調控心肌纖維化的進程，Yang等[16]報道了miR-433-3p可通過抑制cAMP反應元件結合蛋白1(cAMP response element-binding protein 1,CREB1)的表達與功能，發揮抑制肝癌細胞遷移的作用。推測在肝癌細胞中miR-433-3p可能與MAPK8存在靶向作用，調控肝癌的發展。為了證實這一推測本文首先檢測了miR-433-3p在多種肝癌細胞株中的表達，發現在肝癌細胞株中miR-433-3p表達均發生下調，表明miR-433-3p可能參與了肝癌的調控。進一步研究發現miR-433-3p與MAPK8存在靶向作用關系，并且miR-433-3p的高表達可顯著抑制MAPK8的轉錄和蛋白表達，結果表明在肝癌細胞MHCC97H中miR-433-3p可靶向作用于MAPK8，抑制MAPK8的表達。

不受控制的細胞增殖以及逃避凋亡的能力是癌細胞的主要特征之一，研究表明MAPK8對肝癌細胞的增殖起著重要的調控作用。Hui等[14]報道了JNK1在肝細胞癌模型中可通過提高細胞增殖促進基因c-Myc的表達，下調增殖抑制因子p21的表達，促進腫瘤生長。本研究發現miR-433-3p顯著抑制了肝癌細胞MHCC97H的增殖并促進細胞凋亡，MAPK8的過表達可逆轉miR-433-3p的作用。同時，miR-433-3p顯著提升了cl-CASP3的表達，抑制PCNA的表達，MAPK8過表達可逆轉這一作用。PCNA可調節細胞從G1期進入S期，參與了DNA復制所需的聚合酶的合成，其表達水平與細胞增殖呈正相關；細胞凋亡主要是由Caspase家族蛋白介導的，cl-CASP3是細胞凋亡途徑的最主要的執行蛋白[17,18]。實驗結果表明miR-433-3p可通過下調MAPK8表達抑制肝癌細胞MHCC97H的增殖并促進細胞凋亡。

不受限制的遠端轉移能力是癌細胞的另一主要特征，其中遷移和侵襲在癌細胞轉移過程中起著重要作用。研究表明MAPK8同樣參與了對肝癌細胞遷移和侵襲的調控作用。Tsai等[19]報道了甘草查爾酮A可通過下調MKK4/JNK信號通路，抑制肝癌細胞的遷移和侵襲。本研究發現miR-433-3p顯著抑制了肝癌細胞MHCC97H的遷移和侵襲，MAPK8過表達可逆轉miR-433-3p的抑制作用。同時，miR-433-3p顯著提升了E-cadherin的表達，抑制N-cadherin的表達，MAPK8的過表達可逆轉miR-433-3p的調控作用。E-cadherin參與同類型細胞的黏附連接作用，是維持上皮細胞形態的重要成分，N-cadherin則起著相反的作用，促進細胞向間質形態轉變[20,21]。實驗結果表明miR-433-3p可通過下調MAPK8表達抑制肝癌細胞MHCC97H的遷移和侵襲。

綜上所述，miR-433-3p可靶向抑制肝癌細胞MHCC97H中MAPK8的表達，提升cl-CASP3和E-cadherin的表達，抑制PCNA和N-cadherin的表達，進而抑制細胞的增殖、遷移和侵襲，促進細胞凋亡。本研究首次探究了在肝癌中miR-433-3p通過靶向作用于MAPK8，對肝癌細胞生長和轉移的調控作用，為肝癌的靶向治療干涉提供了新的參考。