唐婷范,楊杰,黃芳麗,程昊,朱家慶,梁杰婷,黃青勇,田玉紅
(廣西科技大學(xué)生物與化學(xué)工程學(xué)院,廣西柳州545006)
葛根(Pueraria lobata)是豆科植物野葛的干燥根,可分為野葛和粉葛[1],在我國的大部分省份都有分布。葛根被人贊譽(yù)為“亞洲人參”,具有解表退熱,生津、透疹、升陽止瀉等多種功能。葛根的化學(xué)成分豐富,主要活性成分有大豆素、葛根素等,同時(shí)還含有豐富的淀粉、蛋白質(zhì)、多糖和揮發(fā)油等成分。葛根作為中藥其藥用價(jià)值非常高,其藥效的主要成分是葛根當(dāng)中的總黃酮、葛根素、大豆甙元、三帖皂苷和乙酰膽堿等[2]。劉紅芹等[3]認(rèn)為葛根、桑葉、苦瓜、苦蕎配方的提取物對(duì)II型糖尿病具有輔助治療的作用。熊東妮等[4]認(rèn)為葛根對(duì)婦科病具有一定的治療作用。如果挖掘出葛根潛在的營養(yǎng)價(jià)值和藥用價(jià)值,將葛根制成具有功能性的食物、飲料或者藥物,會(huì)有廣闊的市場前景。
蛋白質(zhì)是國內(nèi)外的研究熱點(diǎn)[5],蛋白質(zhì)的功能性質(zhì)是由食品在加工、儲(chǔ)藏、運(yùn)輸和消費(fèi)的過程中產(chǎn)生的。這些特征具體包括了蛋白質(zhì)溶解度、持水油性、乳化性、起泡性和膠凝性等。本試驗(yàn)以不同產(chǎn)地葛根為原料,運(yùn)用凱氏定氮法分別測定廣西北海、貴港和柳州葛根中的蛋白質(zhì)含量,并采用普通回流法提取葛根蛋白質(zhì),計(jì)算葛根蛋白質(zhì)的提取率。并以蛋白質(zhì)提取率為考察指標(biāo)[6],通過單因素試驗(yàn)和正交試驗(yàn)法[7]分析提取溫度、提取時(shí)間、液料比以及提取溶劑的pH 值對(duì)提取率的影響。并對(duì)葛根蛋白質(zhì)的功能性做初步研究。
葛根:選用廣西北海野葛、貴港野葛和柳州粉葛。五水硫酸銅:天津市化工三廠有限公司;硫酸鉀、無水碳酸鈉:天津市致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司;酒石酸鉀鈉、甲基紅指示劑:天津市福成化學(xué)試劑廠;硫酸、鹽酸、硼酸、氫氧化鈉:成都市科隆化學(xué)品有限公司;溴甲酚綠指示劑:天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;95%乙醇:東莞市斯巴達(dá)化學(xué)有限公司;碘化鉀:成都金山化學(xué)試劑有限公司;以上試劑均為分析純;牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)品:上海金穗生物科技有限公司。
GZX-GF101-4-S 電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱:上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠;DFY-600C 搖擺式高速粉碎機(jī):浙江省溫嶺市大機(jī)械有限公司;GG-17 凱氏定氮裝置:廈門仕福玻璃儀器廠;DF-101S 集熱式恒溫加熱磁力攪拌器:鞏義市京華儀器有限公司;V2000 可見分光光度計(jì):奧豪斯儀器(上海)有限公司;TDL-80-2B 低速臺(tái)式離心機(jī):安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司;ZY-LDG12 真空冷凍干燥機(jī):上海紫裕生物科技有限公司;FSH-2A 可調(diào)高速均質(zhì)機(jī)、AR124CN 電子分析天平:上海舜余恒平科學(xué)儀器有限公司。
1.3.1 葛根蛋白含量的測定
將不同產(chǎn)地的葛根洗凈、烘干和粉碎,然后過40目篩,得到葛根粉。根據(jù)凱氏定氮法[8]分別測定3 種產(chǎn)地葛根粉中蛋白質(zhì)總含量。
1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立
稱取(0.005 0±0.000 3)g 牛血清蛋白于燒杯中,用少量水使其溶解,定容到10 mL 容量瓶中,得到濃度為5 mg/mL 的牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)溶液[9-10]。
稱取0.75 g 的硫酸銅和3.00 g 的酒石酸鉀鈉溶于250 mL 水中,加入10%的氫氧化鈉溶液150 mL 混勻(加入1.00 g KI 以防止Cu2+自動(dòng)還原成Cu+,生成Cu2O沉淀),最后稀釋到500 mL,得到雙縮脲試劑[11]。
分別準(zhǔn)確移取 0.0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL 的牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)溶液于比色管中并編號(hào),然后加入4.0 mL 雙縮脲試劑于(37±2)℃水浴鍋中反應(yīng)30 min后用可見分光光度計(jì)在540 nm 處測其吸光值,空白管調(diào)零。
1.3.3 葛根蛋白的提取工藝
稱取一定量葛根粉,加入一定液料比[10 ∶1、15 ∶1、20 ∶1、25 ∶1、30 ∶1(mL/g)]和 pH 值(5、6、7、8、9)的提取溶劑,于一定溫度(30、40、50、60、70 ℃)回流提取一定時(shí)間(0.5、1、1.5、2、2.5 h),將提取液在 3 000 r/min的轉(zhuǎn)速下離心20 min,取一定上清液加入顯色劑反應(yīng)30 min,用V2000 可見分光光度計(jì)測定吸光度,計(jì)算蛋白質(zhì)提取率[12]。

將剩余上清液的pH 值調(diào)為4.5,然后靜置12 h后,真空離心20 min 得到蛋白沉淀,將蛋白沉淀放入真空冷凍干燥機(jī)[13],干燥12 h 后得到葛根蛋白樣品,放入干燥皿備用。
1.3.4 蛋白的功能性性質(zhì)測定
1.3.4.1 持油性試驗(yàn)
取10 mL 離心管,稱其質(zhì)量為m0,加入0.1 g 蛋白樣品,其質(zhì)量為m1,再加入金龍魚花生油2 mL,在室溫下振蕩15 min,使其溶解均勻,靜置5 min;用低速離心機(jī)以4 000 r/min 的速度離心15 min,棄去上清液;用濾紙吸干壁上油珠,稱其離心管和吸油蛋白的質(zhì)量為m2。根據(jù)公式計(jì)算出持油力[14]。

式中:m0為空離心管質(zhì)量,g;m1為蛋白樣品質(zhì)量,g;m2為離心管和吸油蛋白樣品質(zhì)量,g。
1.3.4.2 持水性試驗(yàn)
取10 mL 離心管,稱其質(zhì)量為m0,加入0.1 g 蛋白樣品,其質(zhì)量為m1,再加入pH 7 的蒸餾水2 mL,使其攪拌溶解均勻后放在60 ℃水浴鍋中加熱30 min,冷卻。用低速離心機(jī)以4 000 r/min 的速度離心15 min,棄去上清液;用濾紙吸干壁上水珠,稱離心管和吸水蛋白的重量為m2。根據(jù)公式計(jì)算出持水力[14]。

式中:m0為空離心管質(zhì)量,g;m1為蛋白樣品質(zhì)量,g;m2為離心管和吸水蛋白樣品質(zhì)量,g。
1.3.4.3 乳化性試驗(yàn)
稱取0.10 g 蛋白樣品分散于裝有2 mL 蒸餾水的離心管中內(nèi),再加入2 mL 的金龍魚花生油,振蕩搖勻。用高速均質(zhì)機(jī)下用3 檔均質(zhì)2 min,均質(zhì)結(jié)束后,用低速離心機(jī)在1 500 r/min 的速度下離心5 min,分別測量離心管內(nèi)樣品總高度和乳化層高速。根據(jù)公式計(jì)算出乳化率[15]。

1.3.4.4 起泡性實(shí)驗(yàn)
稱取0.10g 蛋白樣品于10 mL 量筒內(nèi),加入pH 7的蒸餾水9 mL,在高速均質(zhì)機(jī)下用3 檔均質(zhì)2 min,均質(zhì)結(jié)束后測量泡沫的體積。根據(jù)公式計(jì)算起泡率[15]。

根據(jù)凱氏定氮法測定廣西貴港野葛蛋白質(zhì)含量為12.27%,北海野葛蛋白質(zhì)含量為10.36%,柳州粉葛蛋白質(zhì)含量為9.34%。
以蛋白質(zhì)濃度(mg/mL)為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線圖見圖1。

圖1 牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Bovine serum albumin standard curve
由圖1 可知標(biāo)準(zhǔn)方程式為Y=0.063 2X+0.004 8,決定系數(shù)R2=0.999 4,線性情況較好;所以牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性范圍在0.5 mg/mL~5.0 mg/mL。
精密度試驗(yàn)按照“1.3.3”的步驟方法稱取葛根粉進(jìn)行提取、離心和顯色,同時(shí)做6 個(gè)平行樣,然后用可見分光光度計(jì)在540 nm 處分別測定吸光值,結(jié)果如表1所示。

表1 精密度試驗(yàn)結(jié)果Table 1 Results of precision experiments
根據(jù)表1 可得,平均提取率為(58.49±0.91)%,相對(duì)平均偏差為0.91%,說明該方法精密度好。
加標(biāo)回收率試驗(yàn)按照“1.3.3”的步驟方法稱取葛根粉進(jìn)行提取、離心,同時(shí)做6 個(gè)試驗(yàn)。然后在每個(gè)比色管加入不同體積的2 mg/mL 牛血清蛋白標(biāo)準(zhǔn)溶液,最后顯色。用可見分光光度計(jì)在540 nm 處測定其吸光值。結(jié)果如表2 所示。

表2 加標(biāo)回收率試驗(yàn)結(jié)果Table 2 Results of recovery experiments
由表2 可以看到,葛根蛋白提取物的平均加標(biāo)回收率為(98.94±1.69)%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(relative standard deviation,RSD)為1.69%,說明雙縮脲法對(duì)于測量葛根提取物中總蛋白質(zhì)含量真實(shí)可靠,該法可行。
準(zhǔn)確度試驗(yàn)按照“1.3.3”的步驟方法稱取葛根粉進(jìn)行提取、離心和顯色,同時(shí)做6 個(gè)平行樣,然后用可見分光光度計(jì)在540 nm 處測定其吸光值,20 min 內(nèi)每隔2 min 測定一次。結(jié)果如表3 所示。
根據(jù)表3 可得,在20 min 內(nèi)提取液的平均提取率為(59.45±0.54)%,RSD 為 0.54%,結(jié)果表明這種方法穩(wěn)定性較好。

表3 準(zhǔn)確度試驗(yàn)結(jié)果Table 3 Results of stability experiments
2.3.1 提取溶劑pH 值對(duì)蛋白質(zhì)提取率的影響
稱取 1.00 g 的葛根粉,加入料液比為 20 ∶1(mL/g)的水,將水 pH 值調(diào)為 5、6、7、8 和 9,于 50 ℃溫度下提取1.5 h,將提取液進(jìn)行離心、顯色和測定,結(jié)果如圖2所示。

圖2 溶劑pH 值對(duì)蛋白提取率的影響Fig.2 The effect of pH valueon extraction rate of protein
由圖2 可知,pH 值為 5、6、7、8 和 9 時(shí),葛根蛋白質(zhì)提取率分別為51.00%、52.57%、55.08%、56.37%和49.49%,在 pH 值為 5、6、7、8 時(shí)提取率逐漸升高,在pH 8 時(shí)達(dá)到最高,因?yàn)樵谌鯄A性條件能使蛋白分子結(jié)構(gòu)變得疏松,堿液對(duì)蛋白有促進(jìn)溶解的效果。pH 在8~9時(shí)提取率急速下落和pH 5 時(shí)提取率很低,因?yàn)榈鞍踪|(zhì)在酸度過低和堿性過高下可以使蛋白質(zhì)中的氫鍵斷裂,從而導(dǎo)致蛋白質(zhì)變性[16],所以提取溶劑pH 8 為佳。
2.3.2 液料比對(duì)提取率的影響
稱取 1.00 g 的葛根粉,加入 pH 8 液料比為 10 ∶1、15 ∶1、20 ∶1、25 ∶1 和 30 ∶1(mL/g)的水,于 50 ℃溫度下提取1.5 h,將提取液進(jìn)行離心、顯色和測定,結(jié)果如圖3 所示。

圖3 液料比對(duì)蛋白提取率的影響Fig.3 Liquid to material ratio on extraction rate of protein
由圖3 可知,在液料比的影響下,提取率分別為54.72%、55.07%、56.31%、54.95%和54.37%。提取率隨液料比的增加先上升后下降。當(dāng)液料比為20∶1(mL/g)時(shí),提取率為最高。這可能是因?yàn)橐毫媳容^低時(shí),提取溶劑較少,體系分散不均勻,蛋白質(zhì)不能完全溶解[17],所以當(dāng)提取溶劑的液料比20 ∶1(mL/g)為佳。
2.3.3 提取溫度對(duì)提取率的影響
稱取 1.00 g 的葛根粉,加入 pH 8 液料比為20 ∶1(mL/g)的水,于 30、40、50、60、70 ℃溫度下提取1.5 h,將提取液進(jìn)行離心、顯色和測定,結(jié)果如圖4所示。

圖4 提取溫度對(duì)蛋白提取率的影響Fig.4 Extraction temperature on extraction rate of protein
由圖4 可知,在提取溫度的影響下,提取率分別為53.28%、54.43%、55.73%、51.97%和50.97%。提取率先緩慢上升,然后在快速下降,當(dāng)溫度為50 ℃時(shí)提取率55.73%為最高。因?yàn)闇囟冗^高會(huì)導(dǎo)致蛋白質(zhì)變性,從而影響蛋白質(zhì)的提取率[18],所以當(dāng)提取溫度50 ℃時(shí)為佳。
2.3.4 提取時(shí)間對(duì)提取率的影響
稱取1.00 g 的葛根粉,加入pH 8 液料比為20 ∶1(mL/g)的水。于 50 ℃溫度下提取 0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 h,將提取液進(jìn)行離心、顯色和測定,結(jié)果如圖5所示。
由圖5 可知,在提取時(shí)間的影響下,提取率分別為50.50%、52.21%、57.63%、56.24%和54.60%。提取率先快速上升然后在緩慢降低,在提取時(shí)間為1.5 h,提取率最高為57.63%。這是因?yàn)樘崛〉臅r(shí)間越長,蛋白質(zhì)的溶出率就越高。但是時(shí)間太長會(huì)破壞蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)[19],從而影響蛋白質(zhì)的提取,所以當(dāng)提取時(shí)間1.5 h時(shí)為佳。

圖5 提取時(shí)間對(duì)蛋白提取率的影響Fig.5 Extraction time on extraction rate of protein
由單因素試驗(yàn)可知對(duì)蛋白質(zhì)提取率影響較大的3個(gè)因素是提取溶劑的pH 值、提取溫度和提取時(shí)間。每個(gè)因素影響提取率較大的3 個(gè)水平是提取溶劑的pH 6、pH 7 和 pH 8,提取溫度 30、40、50 ℃,提取時(shí)間1.5 h、2.0 h 和2.5 h。所以采取L9(34)的正交表進(jìn)行分析,方案如表4 所示,以葛根蛋白提取率為評(píng)價(jià)指標(biāo),優(yōu)化蛋白質(zhì)的最佳提取工藝,結(jié)果見表5,其空列為誤差列,對(duì)試驗(yàn)結(jié)果沒有影響。

表4 正交試驗(yàn)因素水平表Table 4 Factors and levels of orthogonal experiment

表5 正交試驗(yàn)及其結(jié)果分析Table 5 Results of the orthogonal experiment

續(xù)表5 正交試驗(yàn)及其結(jié)果分析Continue table 5 Results of the orthogonal experiment
從極差R 分析得因素的主次為A>C>B,即提取溶劑pH 值>提取時(shí)間>提取溫度;在A 因素中分析得提取溶劑的pH 值得主次為pH 8>pH 7>pH 6;在 B 因素中分析可得提取溫度的主次為30 ℃>40 ℃>50 ℃;在C 因素中分析可得提取時(shí)間的主次為2.5 h>2.0 h>1.5 h。綜上所訴,最優(yōu)方案為A3B1C3,即提取溶劑的pH 8,提取時(shí)間2.5 h,提取溫度為 30 ℃,提取率為57.28 %。
根據(jù)正交試驗(yàn)得出的最優(yōu)方案和“1.3.3”的提取方法,分別對(duì)廣西北海、貴港和柳州葛根進(jìn)行蛋白質(zhì)的提取并進(jìn)行其提取率,結(jié)果如表6。

表6 葛根蛋白提取率Table 6 Extraction rate of Pueraria lobata protein
根據(jù)表6 可知,廣西北海野葛蛋白質(zhì)的提取率為58.87%、貴港野葛蛋白質(zhì)的提取率為83.20%和柳州粉葛蛋白質(zhì)的提取率為22.27%。
由“1.3.4”的工藝步驟得出葛根蛋白的功能性,然后與大豆分離蛋白的功能性進(jìn)行比對(duì),結(jié)果如表7所示。

表7 葛根蛋白和大豆分離蛋白的功能特性Table 7 Functional properties of puerarin and soy protein isolate
葛根蛋白的持油率高于大豆分離蛋白的持油率;持水率、起泡率和乳化率都比大豆分離蛋白的低,但是相差不大。葛根為豆科植物野葛的干燥根,即葛根蛋白為豆科蛋白的一類,所以葛根蛋白的功能性和大豆分離蛋白的功能性相近。
廣西貴港野葛蛋白質(zhì)含量為12.27%,北海野葛蛋白質(zhì)含量為10.36%,柳州粉葛蛋白質(zhì)含量為9.34%。在最佳的提取工藝條件下廣西北海野葛蛋白質(zhì)的提取率為58.87%、貴港野葛蛋白質(zhì)的提取率為83.20%和柳州粉葛蛋白質(zhì)的提取率為22.27%。同時(shí)葛根蛋白的持水率為4.49 g/g、持油率為4.05 g/g、起泡率為6.67%和乳化率為34.88%。
葛根蛋白屬于植物蛋白,具有脂肪少和膽固醇低的特點(diǎn),而且葛根蛋白還具有改善心血管疾病、降低膽固醇和預(yù)防慢性疾病的功效。葛根蛋白為豆科蛋白,屬于完全蛋白,是完全可以滿足人體需求的一種蛋白[20]。研究葛根蛋白的功能性質(zhì)對(duì)于我們合理科學(xué)的使用蛋白具有深刻的科研意義,符合當(dāng)今社會(huì)的綠色食品要求。