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超聲輔助酶解法提取亞麻籽油的工藝

2020-05-24 07:05:02高瑞苑尹三毛李志英張海容
中國糧油學報 2020年2期
關鍵詞:影響實驗

高瑞苑 尹三毛 李志英 張海容

(忻州師范學院化學系,忻州 034000)

亞麻籽俗稱胡麻籽,是亞麻科的一年生或多年生草本植物亞麻的種子,其中含有不飽和脂肪酸,以及蛋白質、膳食纖維、維生素、微量元素等多種對人體有益的成分,適用于人體保健[1,2]。亞麻籽中含油率達35%~48%,亞麻籽油中不飽和脂肪酸的質量分數達80%以上,并且富含α-亞麻酸、維生素E、類黃酮[2,3]。α-亞麻酸是人體的一種必需脂肪酸,具有豐富的藥理作用[4,5],在體內能轉化成DHA,對智力和神經系統發育大有裨益。

目前,國內外亞麻籽油的提取方法主要有壓榨法、溶劑浸提法、生物酶法、超臨界萃取法等[6,7]。壓榨法分為冷榨和熱榨,壓榨全過程無任何化學添加劑,但冷榨法出油率低,熱榨相對于冷榨法出油率較高,但油色澤較暗。溶劑浸提法提油率較高,多利用有機溶劑,溶劑用量較大,增加加工成本[6]。超臨界萃取需要在高壓的條件下進行,這對設備及工藝技術的要求極高,也使生產成本增加[7]。生物酶法提油是最近油脂工業的研究熱點,本實驗通過酶解將組織結構和大分子物質破壞,再利用超聲波輔助法進一步破壞細胞組織,使細胞中的游離油流動性增強,從而提高提取率[8]。

本實驗利用纖維素酶和堿性蛋白酶將亞麻籽細胞壁、多糖及脂蛋白分解,在此基礎上,利用超聲波輔助進一步將亞麻籽細胞組織結構破壞,使油脂能夠充分的溶出[9]。結合酶本身的特點及超聲波的使用條件,確定料液比、加酶量、保溫溫度、保溫時間、pH、超聲時間及超聲功率作為單因素考察變量,以亞麻籽油得率為響應值,采用Box-Behnken響應面分析法,對影響較大的因素:料液比、加酶量、保溫溫度、pH、超聲時間進行分析,確定最佳的提取條件,以期優化亞麻籽油提取工藝。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

亞麻籽:產地為山西省神池縣烈堡鄉;堿性蛋白酶,酶活力 200 U/mg;纖維素酶,酶活力50 U/mg;果膠酶:3 000 000 U/g;正己烷、氫氧化鈉、鹽酸均為分析純。

1.2 實驗儀器

100Y多功能粉碎機;pHS-3C酸度計;TDL-40B離心機;HH-6SH數顯恒溫水浴鍋;KQ-400KDE型高功率數控超聲波清洗器;RE-52AA旋轉蒸發器。

1.3 實驗方法

1.3.1 超聲酶法提取亞麻籽油的工藝流程

亞麻籽原料→脫膠→烘干→粉碎過篩(60目)→加沸水→調節pH→加酶→超聲→保溫浸提→離心分離(4 000 r/min,10 min,取上清液)→萃取(取上層液體)→旋蒸→亞麻籽油。

1.3.2 脫膠處理方法

首先對亞麻籽進行脫膠處理[10],先清理掉亞麻籽中的空殼,碎粒,發霉的種子,以及石子、雜草等雜質。取處理好的亞麻籽500 g置于燒杯中,加入3 g果膠酶,水浴加熱到40 ℃,攪拌均勻,保溫30 min,用紗布過濾,除去亞麻籽表面的膠,再用40 ℃的清水清洗幾次,充分將亞麻籽表面的膠去除。放入干燥箱中60 ℃下烘干,粉碎,得亞麻籽粉末。

1.3.3 亞麻籽油提取及得率計算方法

取15 g脫膠后的亞麻籽粉末,加入一定量的沸水,攪拌均勻。待料液冷卻后,調節至所需pH。加入堿性蛋白酶,水浴保溫十分鐘,再加入纖維素酶,超聲。然后4 000 r/min下離心10 min,取上清液,用正己烷萃取,旋蒸,得亞麻籽油,干燥、稱重。

1.3.4 單因素實驗

考察料液比、加酶量、提取溫度、酶解pH、超聲時間、超聲功率各自對亞麻籽油得率的影響。選取料液比1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25,加酶量0.05、0.1、0.15、0.2、0.25 g,提取溫度30、40、50、60、70 ℃,酶解pH 4、5、6、7、8、9、10、11,超聲時間10、20、30、40 min,超聲功率160、240、320、400 W,進行單因素考察實驗,通過計算亞麻籽油得率,確定響應面分析實驗范圍,進而優化提取亞麻籽油的工藝條件。

2 結果與分析

2.1 單因素實驗

2.1.1 料液比對亞麻籽油得率的影響

準確稱取亞麻籽粉末15 g,分別按料液比1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、1∶25加入煮沸的蒸餾水,不斷攪拌,待料液冷卻,再加入堿性蛋白酶和纖維素酶各0.15 g,提取溫度40 ℃,超聲時間10 min,超聲功率200 W,條件下提取,得到料液比對亞麻籽油得率的影響如圖1所示。

圖1 料液比、加酶量、提取時間對亞麻籽油得率的影響

由圖1可知,亞麻籽油得率隨料液比的增加而增加,當料液比超過1∶10后提油率增長緩慢,可能原因是隨著料液比的增加,酶與亞麻籽原料能夠充分接觸,酶解更加充分,使油脂更易溶出,隨著料液比繼續增加時,因為酶解作用有限,亞麻籽油得率增加不明顯[11]。故選擇合適的料液比為1∶10。

2.1.2 加酶量對亞麻籽油得率的影響

準確稱取亞麻籽粉末15 g,加入150 mL沸水,不斷攪拌,待料液冷卻,分別加入堿性蛋白酶和纖維素酶各0.05、0.10、0.15、0.20 g,在超聲時間10 min,超聲功率200 W,提取溫度40 ℃,條件下提取,得到加酶量對亞麻籽油得率的影響如圖1所示。

由圖1可知,隨著加酶量的增加,亞麻籽油得率增加,但是在超過0.1 g以后,得率開始下降??赡茉蚴牵S著加酶量的增加,酶水解細胞組織的效果增加,使得細胞中的大分子蛋白質、糖類等水解徹底,有利于細胞內油脂的釋放,從而亞麻籽油的得率增加,隨著加酶量的繼續增加,料液中酶解后產生的小分子成分增加,使得游離的油脂與料液不易分離徹底,從而使得亞麻籽油得率降低[12]。故選擇合適的加酶量為0.10 g。

2.1.3 提取溫度對亞麻籽油得率的影響

準確稱取亞麻籽粉末15 g,加入150 mL沸水,不斷攪拌,待料液冷卻,分別加入堿性蛋白酶和纖維素酶各0.10 g,在超聲時間10 min,超聲功率200 W,提取溫度為30、40、50、60、70 ℃,條件下提取。得到不同提取溫度對亞麻籽油得率的影響如圖1所示。

由圖1可知,隨著溫度的升高亞麻籽油的得率增加,但在超過50 ℃以后,得率開始下降,可能原因是,纖維素酶和堿性蛋白酶的最適溫度45 ℃,在達到酶活性的最適溫度之前,隨著溫度的升高,酶活性增加,酶解作用增強,亞麻籽油得率增加,但在超過酶活性的最適溫度后,酶的活性開始降低,導致亞麻籽油的得率下降[13]。故選擇合適的提取溫度為50 ℃。

2.1.4 酶解pH對亞麻籽油得率的影響

準確稱取亞麻籽粉末15 g,加入150 mL沸水,不斷攪拌,待料液冷卻,調節pH為4、5、6、7、8、9、10、11,加入堿性蛋白酶和纖維素酶各0.10 g,在超聲時間10 min,超聲功率200 W,提取溫度50 ℃,條件下提取,得到酶解pH對亞麻籽油得率的影響如圖2所示。

圖2 酶解pH、超聲時間、超聲功率對亞麻籽油得率的影響

由圖2可知,pH由4~6時,纖維素酶發揮主要作用,隨著pH的升高亞麻籽油的得率增加,這與纖維素酶的活性隨pH變化有關,pH為6時,纖維素酶活性最大。pH由7~10時,堿性蛋白酶發揮主要作用,隨著pH的升高亞麻籽油的得率增加,這與堿性蛋白酶的活性隨pH變化有關,pH為10時,堿性蛋白酶活性最大,pH超過10以后,堿性蛋白酶活性下降,得率下降,pH通過影響酶的活性進而影響亞麻籽油的得率[6]。故選擇合適的酶解pH為10。

2.1.5 超聲時間對亞麻籽油得率的影響

準確稱取亞麻籽粉末15 g,加入150 mL沸水,不斷攪拌,待料液冷卻,調pH至10,加入堿性蛋白酶和纖維素酶各0.10 g,在超聲功率200 W、提取溫度50 ℃,改變超聲時間20、30、40、50 min,條件下提取,得到超聲時間對亞麻籽油得率的影響如圖2所示。

由圖2可知,隨著超聲時間的升高亞麻籽油的得率增加,但在超過40 min以后,得率開始下降,可能原因是,隨著超聲時間的增加,細胞組織被破壞的更加充分,有利于酶解的進一步作用,使得游離油流動性增強,更易溶出,從而提高了亞麻籽油的得率,隨著超聲時間的繼續增加,細胞釋放油脂分子的速度和油脂分子的擴散速度達到動態平衡,游離油與料液的混合度增加,使得游離油的分離困難,造成部分油脂難以徹底分離,使得亞麻籽油的得率降低[14]。故選擇合適的超聲時間為40 min。

2.1.6 超聲功率對亞麻籽油得率的影響

準確稱取亞麻籽粉末15 g,加入150 mL沸水,不斷攪拌,待料液冷卻,調節pH至10,分別加入堿性蛋白酶和纖維素酶各0.10 g,在超聲時間40 min,提取溫度50 ℃,改變超聲功率160、240、320、400 W,條件下提取,得到超聲功率對亞麻籽油得率的影響如圖2所示。

由圖2可知,隨著超聲功率的升高亞麻籽油的得率增加,但在超過240 W以后,得率開始下降,可能原因是,隨著超聲功率的增加,細胞組織被分解的更加徹底,細胞組織釋放油脂分子的速度和油脂分子的擴散速度不斷增加,當達到一定值后達到動態平衡,油脂的產量不再增加,但隨著超聲功率的繼續增加,亞麻籽細胞結構破壞更加徹底,亞麻籽顆粒粉末度加大,這就增加了混合油分離的難度和部分油脂的損耗,使得亞麻籽油的得率降低[15]。故選擇合適的超聲功率為240 W。各單因素實驗除超聲功率外,不同條件對亞麻籽油得率的影響范圍在3.11%~12.87%之間,不同超聲功率對亞麻籽油得率的影響范圍為2.43%<3.11%,因此,超聲功率沒有列入響應面因素中。

2.2 響應面分析

2.2.1 響應面實驗設計及結果

在單因素實驗基礎上,利用Box-Behnken中心組合實驗設計原理,采用Design-Expert軟件設計五因素三水平的響應面分析實驗。選擇料液比(A)、加酶量(B)、提取溫度(C)、酶解pH(D)、超聲時間(E)為自變量,亞麻籽油得率(Y)為響應值。響應面因素水平及編碼見表1,響應面實驗設計及結果見表2。

表1 響應面實驗設計因素水平及編碼

表2 響應面實驗設計及結果

續表2

對表2中的實驗數據進行多元回歸擬合,得到亞麻籽油得率的多元二次回歸方程:Y=30.51+0.63A-0.26B-0.20C+1.07D-0.40E+0.008 833AB-0.52AC+0.84AD-0.23AE-0.81BC+0.20BD+0.14BE+0.060CD-0.22CE+0.46DE-3.65A2-2.38B2-3.59C2-3.43D2-2.39E2。回歸模型的顯著性檢驗及方差分析見表3。由表3可知,模型P<0.000 1,差異極顯著,表明響應值與參考變量之間存在極顯著的關系。模型的相關系數R2=0.954 8,說明模型響應值的95.48%取決于參考變量,所以該模型擬合度良好。信噪比(Adep Precision=18.288)大于4說明回歸方程的可信度較高。變異系數等于2.67,說明模型穩定性較好。因此,響應面法優化酶解法提取亞麻籽油工藝可靠、穩定性好,得到的回歸方程能較好地預測實驗結果。

表3 回歸模型顯著性檢驗及方差分析

注:P<0. 001為差異極顯著水平;0.001

從回歸方程模型因變量的方差分析可知,模型的一次項A、D對響應值的影響極顯著,E對響應值的影響顯著;交互項影響不顯著;二次項A2、B2、C2、D2、E2對響應值的影響顯著;失擬項P>0.05,差異不顯著。根據F值大小可知各因素對亞麻籽油得率的影響順序為D>A>E>B>C,即酶解pH>料液比>超聲時間>加酶量>提取溫度。

2.2.2 最優提取工藝的確定

對多元二次回歸方程求一階偏導,得到在料液比1∶10.5,加酶量0.10 g,提取溫度49.7 ℃,酶解pH 10.2,超聲時間 39 min的條件下,亞麻籽油得率最大為30.53%。結合實際的儀器條件,以及實驗具體操作的可行性,修正為料液比1∶10.5,加酶量0.10 g,保溫溫度50 ℃,酶解pH 10,超聲時間 40 min,在修正后的實驗條件下,進行3次驗證實驗,所得亞麻籽油的得率為(30.52±0.04)%,與理論值30.57%接近,實驗值與理論值基本吻合,表明模型誤差小、可靠。

3 結論

響應面實驗得到亞麻籽油得率與各因素的二次方程模型為:Y=30.51+0.63A-0.26B-0.20C+1.07D-0.40E+0.008 833AB-0.52AC+0.84AD-0.23AE-0.81BC+0.20BD+0.14BE+0.060CD-0.22CE+0.46DE-3.65A2-2.38B2-3.59C2-3.43D2-2.39E2該模型回歸顯著,對實驗擬合較好,有一定的實用價值。

通過單因素實驗和響應面優化亞麻籽油的酶解法提取工藝后,得到酶解法提取亞麻籽油的最優工藝條件為:料液比 1∶10.5、加酶量 0.10 g、提取溫度 50 ℃、酶解pH 10、超聲時間 40 min,在該條件下所得亞麻籽油的得率為30.52%,所得的油品質好,為透明金黃色。

采用超聲輔助酶解法提取亞麻籽油的方法,與傳統壓榨方相比,外觀及穩定性方面更好。與溶劑浸提法相比,該方法過程簡單,耗時短。與CO2超臨界萃取相比,該方法設備簡單,成本低。

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