芒果清除自由基活性成分及抗氧化作用研究

韋會平 鄭毅 韓洪波

摘要：【目的】明確不同部位、不同成熟度芒果中清除自由基的活性成分含量及其對不同自由基的清除能力、對脂質過氧化（LPO）的抑制能力，為芒果的深度開發及新產品研制提供基礎數據。【方法】以凱特芒果為研究對象，采用高效液相色譜法（HPLC）測定不同成熟度（嫩、綠熟和后熟）芒果不同部位（葉片、果皮、果肉和果仁）中的β-胡蘿卜素和芒果苷含量，2，6-二氯靛酚滴定法測定維生素C含量，紫外分光光度法測定總酚含量，Fenton反應法檢測對羥基自由基（·OH）的清除作用，鄰苯三酚自氧化法檢測對超氧陰離子自由基（O[2]）的清除作用，卵磷脂過氧化法測定抗LPO活性。【結果】綠熟期果肉和果皮中的β-胡蘿卜素和維生素C含量均最高，分別超過2.10和120.00 mg/100 g，顯著高于其他樣品（P<0.05，下同），但果肉與果皮間無顯著差異（P>0.05）;嫩葉中的芒果苷和總酚含量最高，分別為3.45和6.92 g/100 g，顯著高于其他樣品。濃度為30 g/L的嫩葉提取物對·OH的清除率達96.71%，對LPO的抑制率達95.83%，芒果嫩葉對 ·OH和LPO的半數清除率或半抑制濃度（IC50）分別為8.89和8.01 g/L。果仁的總酚含量高于4.20 g/100 g，濃度為40 g/L的綠熟果仁提取物對O[2]的清除率達94.61%，IC50為10.76 g/L。【結論】不同成熟度芒果不同部位中，清除自由基的活性成分含量及其對不同自由基的清除率和對LPO的抑制率均存在顯著差異。因此，在芒果深加工及開發利用過程中，除了要充分重視葉片、果仁和果皮的重要價值外，還應重視成熟度對果實和葉片成分和品質的影響。

關鍵詞： 芒果;清除自由基;抗脂質過氧化;活性成分;藥理作用

0 引言

【研究意義】芒果是我國南方及世界熱帶地區最主要的特色水果之一。芒果苷、多酚、β-胡蘿卜素和維生素C是芒果中具有清除自由基和抗氧化藥理作用最主要的4種活性成分（Kabukia et al.，2000;周新遠和劉帥，2010;Jahurul et al.，2015;郭新穎等，2019），明確這些成分在芒果各部位的含量及清除自由基、抗氧化作用變化規律，對芒果的深層次開發利用具有十分重要的意義。【前人研究進展】近30年來，國內外對芒果清除自由基、抗氧化活性成分及抗氧化藥理作用等已有較多研究報道。在抗氧化活性成分含量方面，周玉蟬等（1994）的研究結果表明，芒果采收時，果肉的β-胡蘿卜素含量很低，隨后熟期延長，含量逐漸增加;趙家桔等（2014）研究表明，芒果肉中的胡蘿卜素類成分在果實發育初期已合成，之后隨著果實長大含量逐漸增加，但果肉中β-類胡蘿卜素含量在果實成熟前后的變化因品種而異，金煌在采收前后10 d內含量最高且無明顯變化，而紅玉和貴妃在采收前10 d左右的含量最高，之后隨著成熟度增加含量逐漸降低;韋會平等（2016，2018）研究發現，芒果葉中含有豐富的芒果苷，并因品種和季節不同而產生規律性變化。在清除自由基和抗氧化藥理作用方面，Kabukia等（2000）、高云濤等（2009）、張麗婧等（2015）、劉煥云等（2019）研究發現，芒果仁和芒果皮中含有多酚類物質，并對脂質過氧化（Lipid peroxidation，LPO）具有一定抑制作用;Kanwal等（2010）研究發現，芒果葉中含有豐富的黃酮類物質;Singh等（2014）在芒果樹皮中發現多種三萜類成分，且具有一定抗菌活性;李曉博等（2016）研究表明，芒果肉中含有較高含量的β-胡蘿卜素和維生素C等抗氧化物質，并對羥基自由基（·OH）和超氧陰離子自由基（O[2]）具有一定清除作用。【本研究切入點】目前有關芒果清除自由基、抗氧化活性成分及抗氧化藥理作用的研究資料過于零星和片段，尚無全面而系統分析的研究報道，而無法揭示這些成分含量及藥理作用在芒果中的變化規律。【擬解決的關鍵問題】在前人已有研究基礎上，對芒果各主要部位清除自由基的活性成分及抗氧化藥理作用進行系統分析，揭示其變化規律，為芒果精深加工和藥用開發提供基礎數據和科學依據。

1 材料與方法

1. 1 試驗材料

所有芒果樣品均來自四川省攀枝花市大面積種植的凱特品種，由攀枝花三博士科技有限公司提供。芒果嫩葉為枝條頂端嫩綠色葉片，成熟葉為枝條中部深綠色葉片，老葉為枝條下部老黃葉片;所有葉片均60 ℃烘干，粉碎過40目篩。嫩果為成熟采收前1個月左右的果實，綠熟果為剛達成熟采收標準的果實，后熟果為采摘后經5～10 d后熟達到食用標準的果實;將果實的果皮、果肉和果仁分別取出，打漿機打碎，勻漿機磨成勻漿備用。共有嫩葉、成熟葉、老葉、嫩果皮、綠熟果皮、后熟果皮、嫩果肉、綠熟果肉、后熟果肉、嫩果仁、綠熟果仁和后熟果仁12個樣品。試驗稱取的樣品量均為干品量（果皮、果肉及果仁根據其干燥率折算成鮮品量）。

β-胡蘿卜素、L-抗壞血酸、芒果苷標準品和沒食子酸標準品均購自中國藥品生物制品檢定所，高效液相色譜（HPLC）流動相用甲醇為色譜純，水為重蒸水，其余試劑均為分析純。主要儀器設備：Agilent 1200高效液相色譜儀及化學工作站（Agilent公司）、Evolution300紫外可見分光光度計（上海澤權儀器設備有限公司）、XS205DU電子天平（梅特勒—托利多公司）、電熱恒溫鼓風干燥箱（上海瑯玕實驗設備有限公司）、FS-6D流水式粉碎機（廣州雷邁機械設備有限公司）、SYU-3-100D超聲波提取器（鄭州生元儀器有限公司）和T-25型勻漿機（德國IKA公司）。

1. 2 β-胡蘿卜素含量測定

參照GB 5009.83—2016及李胤均和謝德芳（2015）的HPLC法稍作修改。稱取1.0 g各樣品分別置于塑料燒杯中，分別加入15.0 mL 500 g/L氫氧化鉀溶液和40.0 mL脫醛無水乙醇，用玻璃棒攪拌均勻后移至250 mL圓底燒瓶內，在60 ℃水浴鍋中皂化30 min，用乙醚提取至無色，氮氣蒸汽吹干，再用甲醇定容于5 mL容量瓶內，過膜后進行HPLC測定。色譜條件：Eclipse XDB-C18色譜柱（4.6 mm×150 mm，5 μm）;流動相：A（水）∶B（甲醇）=2∶8;流速1 mL/min。用β-胡蘿卜素標準品溶液測定繪制標準曲線，得到y=18291x+124.81（R2=0.9981），并用標準曲線法測定計算樣品中β-胡蘿卜素含量。

1. 3 維生素C含量測定

參照GB/T 6195—1986中的2，6-二氯靛酚滴定法稍作修改。稱取2.0 g各樣品，加入少量20 g/L草酸溶液，冰浴條件研磨成漿，再用20 g/L草酸溶液清洗定容至1000 mL，靜置10 min，收集濾液。準確吸取10.0 mL濾液，用2，6-二氯靛酚溶液（已用抗壞血酸標準品標定）滴至微紅色、靜置15 s不褪色后即為滴定終點，以10.0 mL 20 g/L草酸溶液作空白。每100 g樣品中維生素C（Vc）含量計算公式如下：

1. 4 芒果苷含量測定

參照韋會平等（2016，2018）的HPLC法進行測定。取芒果葉樣品0.1 g或其他樣品1.0 g分別置于具塞錐形瓶中，精密加入30%乙醇25.0 mL，超聲處理（400 W，40 kHz）30 min，放冷，取續濾液用HPLC進行測定。色譜條件：Eclipse XDB-C18色譜柱（4.6 mm×150 mm，5 μm），流動相為乙腈-0.2%冰醋酸水溶液（15∶85，v/v），檢測波長258 nm，柱溫為室溫，進樣量20 μL。用芒果苷標準品配制標準溶液，測定得到標準曲線方程為y=28203x+277.07（R2=0.9991）。用標準曲線法測定計算各樣品中芒果苷含量。

1. 5 總酚含量測定

參照李曉博等（2016）采用紫外分光光度法進行測定。用1%鹽酸—甲醇溶液作溶劑，配制濃度為0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 mmol/L的沒食子酸標準溶液，于280 nm處測其吸光值，測定繪制標準曲線，得到y=8.51x+0.039（R2=0.9972）。稱取0.4 g各樣品，加入少許經預冷的1%鹽酸—甲醇溶液，冰浴條件研磨勻漿后，轉入20 mL刻度試管中，研缽經1%鹽酸—甲醇溶液沖洗后一并轉至試管中，定容至刻度，混勻，于4 ℃避光振蕩提取20 min，過濾，收集濾液，在280 nm處測其吸光值，并根據標準曲線計算樣品中總酚含量。

1. 6 ·OH清除率測定

1. 6. 1 不同樣品·OH清除率比較 參照張建勝等（2008）的方法稍作修改，利用Fenton反應檢測抗氧化物對·OH的清除作用。稱取各樣品1.0 g，用含1%鹽酸和50%甲醇（v/v）的鹽酸—甲醇溶液勻漿，定容至40.0 mL，避光放置2 h后離心，期間晃動數次，上清液用甲醇稀釋定容至50.0 mL作樣品溶液備用。同時配制濃度為20 g/L的甘露醇作陽性參照品溶液備用。按順序分別取1.5 mL 0.15 mol/L PBS緩沖液（pH 7.4）、0.2 mL 260 μg/mL番紅溶液、0.7 mL 2 mmol/L EDTANa2-Fe2+、1.0 mL上述樣品溶液和0.8 mL H2O2混勻后，于37 ℃水浴保溫30 min，在510 nm處測其吸光值。空白組以等體積的蒸餾水代替樣品溶液，對照組以等體積的蒸餾水代替樣品溶液和EDTANa2-Fe2+溶液，每組3個平行，根據下式計算清除率：

1. 6. 2 清除·OH量效曲線分析 分別取0.25、0.5、1.0、1.5和2.0 g芒果嫩葉樣品，按1.6.1方法進行樣品處理，并測定·OH清除率。處理得到的芒果葉提取物濃度分別為5、10、20、30和40 g/L。

1. 7 O[2]清除率測定

1. 7. 1 不同樣品O[2]清除率比較 參照李曉博等（2016）的方法稍作修改，利用鄰苯三酚自氧化體系測定總抗氧化物對O[2]的清除作用。樣品溶液配制方法同1.6.1，同時配制濃度為20 g/L的維生素C作陽性參照品溶液備用。取4.5 mL 0.05 mol/L Tris-HCl緩沖液（pH 8.25），加入1.0 mL樣品溶液，25 ℃保溫25 min，再加入0.4 mL 25 ℃預溫的3 mmol/L鄰苯三酚;混勻反應4 min后，加入0.5 mL濃鹽酸，迅速測定325 nm處吸光值。空白組以等量Tris-HCl代替樣品液。每組3個平行。根據下式計算清除率：

1. 7. 2 清除O[2]量效曲線分析 分別取0.5、1.0、1.5、2.0和2.5 g綠熟芒果仁樣品，按1.7.1方法進行樣品處理，并測定O[2]清除率。處理得到的芒果仁提取物濃度分別為10、20、30、40和50 g/L。

1. 8 LPO抑制率測定

1. 8. 1 不同樣品抗LPO作用比較 參照張建勝等（2008）的方法稍作修改，用卵磷脂過氧化法測定各樣品的抗LPO作用。樣品溶液和維生素C陽性參照品溶液配制方法同1.6.1。取0.5 mL卵磷脂溶液[用200 mg卵磷脂溶解于30.0 mL 10 mmol/L PBS（pH 7.4），冰浴振蕩]，加入1.0 mL PBS緩沖液（pH 7.4）、0.5 mL樣品溶液和1.0 mL 2.5 mmol/L EDTANa2-Fe2+，混勻后于37 ℃水浴中反應45 min，再加入28%（w/v）的三氯乙酸2.0 mL和1%（w/v）的2-硫代巴比妥1.0 mL，混勻后置于100 ℃沸水浴中加熱10 min，冷卻后在532 nm處測其吸光值A樣，用PBS緩沖液調零，空白管用PBS緩沖液代替樣品測吸光值A0。根據下式計算LPO抑制率：

1. 8. 2 抗LPO量效曲線分析 分別取0.25、0.5、1.0、1.5和2.0 g芒果嫩葉樣品，按1.8.1方法進行樣品處理，并測定LPO抑制率。處理得到的芒果葉提取物濃度分別為5、10、20、30和40 g/L。

1. 9 統計分析

各處理每個樣品3次重復，取其平均數作測定值，用SPSS 19.0（LSD法）對試驗數據進行差異顯著性分析。用Excel 2017繪制藥物量效曲線，進行曲線擬合得到曲線方程，并計算半數清除率或半抑制濃度（IC50）。

2 結果與分析

2. 1 β-胡蘿卜素含量及變化規律

各樣品β-胡蘿卜素含量測定結果見表1。芒果果肉、果皮、果仁和葉片中均含有β-胡蘿卜素，以果肉中含量最高，果皮次之，葉片含量最低;無論嫩果、綠熟果和后熟果，其果皮與果肉中的β-胡蘿卜素含量均無顯著差異（P>0.05，下同）;果實成熟程度對果肉和果皮中的β-胡蘿卜素含量有顯著影響（P<0.05，下同），綠熟期果肉和果皮中的含量在2.15 mg/100 g以上，分別是嫩果和后熟果的1.90和2.10倍以上。葉片老嫩程度對其β-胡蘿卜素含量也有顯著影響，葉片越嫩，含量越高，嫩葉中的β-胡蘿卜素含量為0.52 mg/100 g，分別是成熟葉和老葉的2.26和2.74倍。

2. 2 維生素C含量及變化規律

各樣品維生素C含量測定結果見表1。芒果果肉、果皮、果仁和葉片中均含有維生素C，以果肉中含量最高，果皮次之，葉片的含量最低;無論嫩果、綠熟果和后熟果，其果皮與果肉中的維生素C含量均無顯著差異;果實成熟程度對果肉和果皮中的維生素C含量有顯著影響，綠熟期果肉和果皮中的維生素C含量在120.50 mg/100 g以上，分別是嫩果和后熟果的1.40和1.60倍以上;葉片老嫩程度對其維生素C含量也有顯著影響，葉片越嫩，含量越高，嫩葉中的維生素C含量為12.98 mg/100 g，分別是成熟葉和老葉的1.91和10.30倍。

2. 3 芒果苷含量及變化規律

各樣品芒果苷含量測定結果見表1。以葉片中的芒果苷含量最高，果仁次之，而果皮和果肉中含量極少;葉片老嫩程度對其芒果苷含量影響顯著，嫩葉的含量為3.45 g/100 g， 分別是成熟葉和老葉的1.62和2.38倍;嫩果仁的芒果苷含量為0.92 g/100 g，分別是綠熟果仁和后熟果仁的1.35和3.83倍。

2. 4 總酚含量及變化規律

各樣品總酚含量測定結果見表1。以嫩葉含量最高，果仁含量次之，果皮和果肉中含量相對較少。總體來看，葉片或果實的老嫩程度對葉片或果實中總酚含量有顯著影響，果實成熟度越高，總酚含量越低，尤其是已完成后熟的果皮或果肉中含量極低。嫩葉中的總酚含量高達6.92 g/100 g，分別是成熟葉和老葉的1.26和4.19倍。嫩果仁和綠熟果仁中的含量無顯著差異，均在5.25 g/100 g以上，顯著高于后熟果仁（4.22 g/100 g）。

2. 5 ·OH清除率及變化規律

各樣品對·OH清除率的測定結果見表2。嫩葉、成熟葉、嫩果皮和綠熟果皮對·OH的清除率顯著高于同濃度的對照甘露醇，排序為嫩葉>成熟葉>綠熟果皮>嫩果皮>甘露醇;老葉、嫩果肉和綠熟果肉對·OH的清除率與同濃度的甘露醇相當，彼此間無顯著差異;果仁也具有一定的清除·OH作用，但弱于同濃度的甘露醇。葉片老嫩程度對·OH清除率有顯著影響，葉片越嫩，清除率越高，嫩葉的清除率達93.86%，分別是成熟葉和老葉的1.10和1.29倍。后熟過程顯著降低果肉和果皮對·OH的清除率。

從上述結果可知，所有樣品中以嫩葉對·OH的清除率最高，故選用嫩葉進行量效曲線分析，結果見圖1。隨著嫩葉提取物濃度增加，其對·OH的清除率逐漸升高;提取物濃度為30和40 g/L時，·OH清除率分別為96.71%和97.12%，二者間差異不顯著。說明當提取物濃度達30 g/L后，·OH清除率不再隨著濃度的增加而顯著升高。通過Excel曲線擬合得到的量效曲線方程為y=-0.1109x2+6.8444x-2.0796（R2=0.9719），由此推算得到芒果嫩葉對·OH清除率的IC50為8.89 g/L。

2. 6 O[2]清除率及變化規律

由表2可知，果仁、嫩葉和成熟葉對O[2]的清除率顯著高于同濃度的對照維生素C;果肉和果皮也有一定的清除O[2]作用，但均非常弱;葉片老嫩程度對O[2]清除率有顯著影響，葉片越嫩，清除率越高;后熟過程顯著降低果肉和果皮對O[2]的清除率，但果仁成熟程度對O[2]的清除率無顯著影響。

從上述測定結果可知，果仁對O[2]的清除效果最佳，且成熟度對果仁清除O[2]的效果無顯著影響，故選用綠熟果仁作試驗材料進行量效曲線分析，結果見圖2。隨著綠熟果仁提取物濃度的增加，其對O[2]的清除率也不斷提高;提取物濃度為40和50 g/L時，清除率分別為94.61%和94.92%，二者間無顯著差異，說明當提取物濃度達40 g/L后，O[2]清除率不再隨著濃度增加而顯著升高。通過Excel曲線擬合得到的量效曲線方程為y=-0.0488x2+4.0741x+11.8380（R2=0.9815），由此推算得到芒果綠熟果仁對O[2]清除率的IC50為10.76 g/L。

2. 7 抗LPO活性及變化規律

由表2可知，各樣品對LPO均有一定的抑制作用，抑制率由高到低依次為葉>果仁>果皮>果肉;芒果葉（老葉除外）和果仁對LPO的抑制率均顯著高于同濃度的對照維生素C，而果肉和果皮對LPO的抑制率均顯著低于同濃度的維生素C;老嫩程度對芒果葉的LPO抑制率影響極大，葉片越嫩，抑制率越高;成熟度對果仁的LPO抑制率無顯著影響，但對果皮和果肉的LPO抑制率有顯著影響，成熟度越高，抑制率越低。

從上述結果可知，所有樣品中以嫩葉對LPO的抑制率最高，故選用嫩葉進行量效曲線分析，結果見圖3。隨著嫩葉提取物濃度增加，LPO抑制率不斷提高;提取物濃度為30和40 g/L的抑制率分別為95.83%和96.31%，二者間無顯著差異，說明當提取物濃度達30 g/L后，抑制率不再隨濃度的增加而顯著升高。通過Excel曲線擬合得到的量效曲線方程為y=-0.0775x2+5.1357x+13.8530（R2=0.9916），由此推算得到芒果嫩葉抗LPO的IC50為8.01 g/L。

3 討論

在所有水果中，芒果中的維生素A含量最高，故芒果有“熱帶水果之王”的稱號。β-胡蘿卜素作為維生素A原，在抗癌、預防心血管疾病、防止老化和衰老引起的多種退化性疾病方面具有重要作用;維生素C則在人體抗體及膠原形成、組織修補、氨基酸和葉酸代謝、鐵和碳水化合物利用、脂肪和蛋白質合成，以及維持免疫功能、保持血管完整、促進非血紅素鐵吸收、抑制酪氨酸酶形成等方面發揮重要作用;芒果苷作為一種強氧化劑，具有抗炎、修復細胞、護肝利膽及降尿酸等重要藥理作用;酚類化合物常作為還原劑、單線態氧猝滅劑、超氧自由基清除劑、金屬螯合劑和氧化酶抑制劑，具有很強的抗氧化作用（Kanwal et al.，2010;李燕，2017;郭新穎等，2019）。這4類物質是目前研究較多的芒果生物活性成分，且均具有較強的清除自由基和抗氧化作用。近年來大量的研究證明，氧自由基（特別是·OH和O[2]）及其誘導的LPO反應與許多疾病的發生有密切聯系，如老年性白內障、動脈粥樣硬化、腦動脈痙攣、老年性癡呆、癌癥和衰老等（郭新穎等，2019）。因此，國內外學者正積極地篩選具有清除氧自由基和抗LPO功能的有效藥物（周新遠和劉帥，2010;Jahurul et al.，2015;郭新穎等，2019）。與前人的相關研究相比，本研究對芒果清除自由基的活性成分含量、抗氧化藥理作用及其變化規律進行了更全面細致地分析。研究結果表明，不同成熟度芒果不同部位中，4種清除自由基活性成分含量的差異顯著，且對不同自由基的清除率及對LPO的抑制率存在明顯差異。了解這些變化規律，對芒果的精深加工和藥用開發具有重要意義。

從成分分析結果來看，果肉和果皮中的β-胡蘿卜素和維生素C含量最高，果仁次之，葉片中含量最低。果實成熟度越高，果肉和果皮中的β-胡蘿卜素和維生素C含量越低，而果仁的含量無顯著差異。對β-胡蘿卜素的測定結果與周玉嬋等（1994）的研究結果相反，而與趙家桔等（2014）對金煌芒果的研究結果基本一致，可能與研究材料的品種、產地、采收時期等不同有關。

本研究結果表明，芒果嫩葉的芒果苷和總酚含量均最高，果仁中的總酚含量也較高，而果肉和果皮中的芒果苷和總酚含量均非常低，與Kabukia等（2000）、張麗婧等（2015）、韋會平等（2016）、劉煥云等（2019）的研究結果基本一致。但本研究進一步發現，老嫩程度或成熟程度對葉和果仁中芒果苷和總酚含量均有顯著影響，且呈一定的規律性變化。

芒果葉片、果仁、果皮和果肉對·OH和O[2]均有清除作用，對LPO也有抑制作用，與Kabukia等（2000）、李曉博等（2016）、劉煥云等（2019）的研究結果基本一致。本研究還發現，不同成熟度芒果的不同部位對不同自由基的清除能力及對LPO的抑制能力存在顯著差異，且呈一定的規律性變化。此外，本研究首次測定了芒果對不同自由基進行清除及對LPO進行抑制的量效曲線，求出各自的IC50，可為今后芒果新產品的研發提供基礎數據。

4 結論

不同成熟度芒果不同部位中，β-胡蘿卜素、維生素C、芒果苷和總酚等活性成分含量及對不同自由基的清除率、對LPO的抑制率均存在顯著差異，且呈一定的規律性變化。總體而言，以嫩葉中芒果苷和總酚含量最高、清除·OH和抑制LPO的能力最強;綠熟期果肉和果皮中β-胡蘿卜素和維生素C含量最高;果仁對O[2]的清除能力最強。在芒果深加工及開發利用過程中，除了要充分重視芒果葉、果仁和果皮獨特的價值外，還應重視成熟度對果實和葉片成分及品質的影響。

參考文獻：

高云濤，付艷麗，李正全，蔣進超. 2009. 超聲與雙水相體系耦合提取芒果核多酚及活性研究[J]. 食品與發酵工業，35（9）：167-172. [Gao Y T，Fu Y L，Li Z Q，Jiang J C. 2009. Study on the ultrasound extraction coupling with two-phase aqueous system in the extraction of polyphenols from mango nuclear and its antioxidantion activity[J]. Food and Fermentation Industries，35（9）：167-172.]

郭新穎，史玉坤，陳峰，陸娟. 2019. 5種中藥提取物清除自由基的體外抗氧化活性研究[J]. 化學工程師，33（9）：74-78. [Guo X Y，Shi Y K，Chen F，Lu J. 2019. Study on scavenging free radicals and antioxidant activity in vitro for 5 kinds of traditional Chinese medicine extracts[J]. Chemical Engineer，33（9）：74-78.]

李曉博，胡文忠，姜愛麗，劉程惠. 2016. 芒果果肉抗氧化成分測定及其對自由基清除能力的研究[J]. 食品工業科技，37（10）：161-164. [Li X B，Hu W Z，Jiang A L，Liu C H. 2016. Study on the antioxidant components and antioxidant capacity of the Mangifera indica Linn pulp[J]. Scien-ce and Technology of Food Industry，37（10）：161-164.]

李燕. 2017. 芒果核多酚分離、純化及其抗氧化活性研宄[D]. 大連：大連工業大學. [Li Y. 2017. Study on separation，purification and antioxidant activity of polyphenol from mango kernel seeds[D]. Dalian：Dalian Polytechnic University.]

李胤均，謝德芳. 2015. 套袋對芒果營養品質的影響研究[J]. 熱帶農業科學， 35（4）：11-15. [Li Y J，Xie D F. 2015. Effects of bagging on the nutritional quality of mango[J]. Chinese Journal of Tropical Agriculture，35（4）：11-15.]

劉煥云，王艷哲，李敬，李飛. 2019. 芒果皮多酚的微波輔助提取及體外抗氧化活性研究[J]. 中國調味品， 44（3）：1-4. [Liu H Y，Wang Y Z，Li J，Li F. 2019. Study on microwave-assisted extraction of polyphenols from mango peel and their antioxidant activities in vitro[J]. China Condiment，44（3）：1-4.]

韋會平，趙牧，田金鳳，李勇，劉文權，王丹，何妍羲. 2016. 四川攀西干熱河谷區芒果葉中芒果苷含量變化規律研究[J]. 南方農業學報，47（12）：2134-2138. [Wei H P，Zhao M，Tian J F，Li Y，Liu W Q，Wang D，He Y X. 2016. Mangizferin content variation of mango leaves in dry-hot valley area of Panxi region，Sichuan[J]. Journal of Sou-thern Agriculture，47（12）：2134-2138.]

韋會平，鄭毅，韓洪波，尚遠宏. 2018. 酯提除雜法高效提取分離芒果葉芒果苷[J]. 南方農業學報，49（1）：130-135. [Wei H P，Zheng Y，Han H B，Shang Y H. 2018. Extraction and isolation of mangiferin from mango leaves by ethylacetate impurity-removing[J]. Journal of Southern Agriculture，49（1）：130-135.]

張建勝，王雪梅，高云濤，董學暢，李吉昌，李干鵬. 2008. 伸筋草提取物體外清除活性氧自由基及抗氧化作用研究[J]. 云南中醫中藥雜志，29（3）：38-39. [Zhang J S，Wang X M，Gao Y T，Dong X C， Li J C，Li G P. 2008. Study on scavenging free radicals of reactive oxygen and antioxidant activity of extracts of Euphorbiae in vitro[J]. Yunnan Journal of Traditional Chinese Medicine and Materia Me-dica，29（3）：38-39.]

張麗婧，張嶺，李林子，胡文敏，陳建國，梅松，劉冬英，劉臻，王茵. 2015. 芒果皮提取物對高脂血癥大鼠血脂、肝功能及脂質過氧化的影響[J]. 毒理學雜志，29（4）：294-298. [Zhang L J，Zhang L，Li L Z，Hu W M，Chen J G，Mei S，Liu D Y，Liu Z，Wang Y. 2015. Effects of mango peel extract on blood lipid，liver function and lipid peroxidation in rats with hyperlipidemia[J]. Journal of Toxicology，29（4）：294-298.]

趙家桔，周兆禧，朱敏，趙麗，高愛平，陳業淵，王家保. 2014. 3個品種芒果發育及后熟過程中類胡蘿卜素含量的變化研究[J]. 西南農業學報，27（5）：2124-2130. [Zhao J J，Zhou Z X，Zhu M，Zhao L， Gao A P，Chen Y Y，Wang J B. 2014. Changes of carotenoids during dynamic deve-lopment and ripening of mango fruits[J]. Southwest China Journal of Agricultural Sciences，27（5）：2124-2130.]

周新遠，劉帥. 2010. “希望之果”——芒果[J]. 中老年保健，（2）：36-37. [Zhou X Y，Liu S. 2010. Fruit of hope-mango[J]. Elderly Health Care，（2）：36-37.]

周玉蟬，唐友林，譚興杰. 1994. 紫花芒果后熟過程中主要類胡蘿卜素含量的變化[J]. 熱帶亞熱帶植物學報，2（2）：77-79. [Zhou Y C，Tang Y L，Tan X J. 1994. Changes of major carogenoid contents during ripening of mango fruit（Mangifera indica L. cv. Zihua）[J]. Journal of Tropical and Subtropical Botany，2（2）：77-79.]

Jahurul M H A，Zaidul I S M，Ghafoor K，Al-Juhaimi F Y，Nyam K L，Norulaini N A N，Sahena F，Omar A K M. 2015. Mango（Mangifera indica L.） by-products and their valuable components：A review[J]. Food Chemistry，183：173-180.

Kabukia T，Nakajimaa H，Araia M，Arai M，Ueda S，Kuwabara Y，Dosako S. 2000. Characterization of novel antimicrobial compounds from mango（Mangifera indica L.） kernel seeds[J]. Food Chemistry，71（1）：61-66.

Kanwal Q，Hussain I，Latif Siddiqui H. 2010. Antifungal activity of flavonoids isolated from mango（Mangifera indica L.） leaves[J]. Natural Product Research，24（20）：1907-1914.

Singh R，Singh S K，Maharia R S，Garg A N. 2014. Identification of new phytoconstituents and antimicrobial activity in stem bark of Mangifera indica（L.）[J].Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis，105：150-155.

（責任編輯 羅 麗）