李瀟,楊彤,李小兵,趙國麗,高譽欣,王浩,牛世英,張月英
1濟南大學 山東省醫學科學院醫學與生命科學學院,濟南250200;2山東第一醫科大學(山東省醫學科學院);3臨沂市第三人民醫院
糖尿病腎病(DN)是糖尿病病情進展過程中發生的一種嚴重的致死性微血管并發癥,其主要病理變化為腎臟功能和結構的改變,包括腎小球和腎小管肥大、基底膜增厚、足突融合等,后期發生腎臟不同程度的纖維化,導致腎臟功能喪失,是終末期腎病的主要病因之一[1]。微小RNA(miRNA)是一類非編碼RNA,含21~25個核苷酸,轉錄后調控生命體各器官的生物學功能,在細胞活性、增殖、炎性反應、纖維化等信號通路中起到重要作用[2]。近年研究發現,miR-21與多種臟器纖維化關系密切,而轉化生長因子β1(TGF-β1)/Smad通路可影響腎臟間質中纖維連接蛋白(FN)、Ⅰ型膠原蛋白(ColⅠ)的聚集,從而參與DN纖維化過程。2019年2~11月,我們采用miR-21基因敲除(miR-21 KO)小鼠構建DN模型,觀察miR-21基因敲除對腎臟的保護作用,并初步探討其可能的作用機制。
1.1 實驗動物 8周齡雄性C57BL/6小鼠20只,體質量18~20 g,其中野生型(WT)小鼠10只、miR-21 KO小鼠10只。飼養于SPF標準實驗室,自由飲食攝水,環境溫度18~25 ℃、相對濕度60%~80%,每日更換墊料、飼料和水。所有實驗操作均符合山東第一醫科大學動物倫理學要求。
1.2 動物分組與造模方法 將WT鼠分成WT-Con組、WT-DN組各5只,miR-21 KO鼠分成KO-Con組、KO-DN組各5只。禁食24 h后,WT-DN組、KO-DN組腹腔注射STZ 60 mg/kg(溶解于pH為4.5的檸檬酸緩沖液),WT-Con組、KO-Con組腹腔注射等量生理鹽水作為對照。1周后采集尾靜脈血檢測空腹血糖及尿微量白蛋白、尿肌酐,以空腹血糖≥16.8 mmol、尿微量白蛋白和尿肌酐顯著升高為DN造模成功。
1.3 標本采集 造模成功12周后,使用水和氯醛麻醉小鼠,快速灌注4%多聚甲醛進行固定。快速剝離雙腎,一側腎臟置于4%甲醛溶液固定,常規脫水,石蠟包埋,連續切3 μm厚切片,用于組織病理學的觀察和免疫組化檢測;另一側腎臟用于制作電鏡標本,固定在2.5%戊二醛溶液中。
1.4 腎組織病理觀察 采用HE染色。取腎組織切片,二甲苯脫蠟至水,蘇木素浸染10 min;流水沖洗,鹽酸乙醇分化,流水返藍,伊紅染色5 min;隨后至70%、80%、90%、95%、100%梯度乙醇脫色,二甲苯Ⅰ、Ⅱ透明;樹膠封片,顯微鏡下觀察腎小球和腎小管的病理改變。
1.5 腎臟纖維化程度觀察 采用Masson染色。取腎組織切片,常規脫蠟至水。取出切片,在重鉻酸鉀-醋酸溶液中浸洗1 h以上除去汞鹽沉淀。蒸餾水洗滌,經Masson麗春紅酸性復紅染液浸染5 min,再用0.2%冰醋酸水溶液浸洗片刻,之后用1%磷鉬酸水溶液分化處理3~5 min。直接加入苯胺藍染色5~10 min,再以0.2%冰醋酸浸洗片刻,95%乙醇及無水乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片。顯微鏡下觀察腎臟纖維化改變,重點觀察腎小管間質是否出現膠原纖維增多。
1.6 腎組織超微結構觀察 將腎臟組織切成1 mm×1 mm×1 mm的小塊,2.5%戊二醛固定;使用電子透射顯微鏡(日本JEOL公司)掃描,觀察腎小球、腎小管、系膜區的亞顯微結構改變。
1.7 腎組織TGF-β1、FN、ColⅠ蛋白表達檢測 采用免疫組化法。取腎組織切片,常規脫蠟至水,3% H2O2溶液孵育20 min,加入pH 6.0的檸檬酸鈉緩沖液中,加蓋煮20 min進行抗原修復。滴加小鼠血清封閉液,37 ℃孵箱中封閉30 min。滴加一抗(TGF-β1稀釋比例為1∶200,FN為1∶500,ColⅠ為1∶100),4 ℃過夜。PBS沖洗5 min×3次,滴加辣根過氧化物酶標記的鼠抗山羊二抗,37 ℃孵育1 h。PBS沖洗5 min×3次,DAB顯色,蘇木素復染,1%鹽酸乙醇分化,流水返藍。梯度乙醇脫水,二甲苯透明,樹膠封片。顯微鏡下觀察棕黃色陽性信號表達部位,并對免疫組化結果進行評分。隨機選取5個高倍鏡視野(×400),計數陽性細胞數占計數細胞的百分比,并觀察免疫反應著色強度。陽性細胞百分比評分標準:0~5%為0分,6%~25%為1分,26%~50%為2分,51%~75%為3分,>75%為4分;著色強度評分標準:無著色為0分,淺黃色為1分,棕黃色為2分,棕褐色為3分。以兩者積分相乘所得數值作為蛋白表達量。

2.1 各組腎組織病理學結果比較 WT-Con組和KO-Con組腎臟組織腎小球及腎小管結構正常,未見明顯病理變化。WT-DN組和KO-DN組均出現腎小球肥大,腎臟基底膜增厚或薄厚不均一改變,腎小管出現空泡樣改變,偶見腎小管間質纖維化及系膜區有異樣物質沉積。與WT-DN組相比,KO-DN組病變改變明顯減輕。
2.2 各組腎組織纖維化程度比較 WT-Con組和KO-Con組腎小球、腎小管及間質未見異常膠原增多現象。WT-DN組和KO-DN組腎間質可見藍色膠原纖維,腎小球基底膜不同程度增厚;WT-DN組腎小管間質可見大量膠原纖維聚集。與WT-DN組相比,KO-DN組腎小管間質纖維化明顯減輕。
2.3 各組腎組織超微結構病理變化 WT-Con組和KO-Con組腎臟基底膜厚度均勻,足細胞伏于基底膜外側,胞質伸出許多足突,系膜區由系膜細胞和系膜基質組成。WT-DN組腎臟可見明顯基底膜彌漫性增厚,足細胞數量減少,足突間不同程度融合,系膜區有復合物沉積。與WT-DN組比較,KO-DN組腎臟超微結構損傷得到緩解,可見基底膜部分增厚,部分足突融合,少量膠原纖維聚集(見圖1)。

圖1 各組腎臟超微結構病理變化(15 000×)
2.4 各組腎組織TGF-β1、FN、ColⅠ蛋白表達水平比較 與WT-Con組和KO-Con組相比,WT-DN組和KO-DN組腎臟TGF-β1、FN、ColⅠ蛋白表達水平升高;與WT-DN組相比,KO-DN組TGF-β1、FN、ColⅠ蛋白表達水平降低(P均<0.05)。見表1。

表1 各組腎組織TGF-β1、FN、ColⅠ蛋白表達水平比較
注:與WT-Con組相比,aP<0.05;與KO-Con組相比,bP<0.05;與WT-DN組相比,cP<0.05。
DN是糖尿病最常見的并發癥之一,其病理特征伴有嚴重的微血管病變,是各種慢性腎病所導致的終末期腎病的主要原因,最終會引發腎小管間質纖維化的發生[3]。近年研究發現,miR-21與肝臟、肺臟、腎臟的纖維化病變關系密切[4~8],但其在DN損傷及腎纖維化中的作用尚存在爭議。Liu等[9~11]報道,下調miR-21表達可減輕腎纖維化進展的程度,但具體機制尚未闡明。然而Zhang等[12]認為miR-21對DN患者可能是一種保護性因素,早期DN病變過程中miR-21表達下降,miR-21的表達有利于抑制系膜細胞增生,緩解腎臟纖維化過程。因此,有必要進一步明確miR-21在DN中的作用及機制。
本研究采用miR-21 KO小鼠構建DN模型,觀察miR-21 KO對腎臟的保護作用,并初步探討其可能的作用機制。HE染色顯示,WT-DN小鼠腎臟出現明顯腎小球肥大,腎小球基底膜改變及系膜區細胞外基質增多,而KO-DN小鼠腎臟出現輕微病變,僅表現為腎小球基底膜增厚,腎小管空泡化。表明miR-21基因缺失可以緩解DN的基本病理改變。進一步采用透射電鏡觀察小鼠腎臟超微結構病理變化,發現WT-DN小鼠腎臟基底膜增厚且厚薄不一,足細胞足突融合,系膜區有高密度物質沉積,并且有大量腎小管阻塞,幾乎看不到正常的腎小管;而KO-DN小鼠腎臟超微結構病理變化明顯減輕,主要表現為基底膜輕度增厚,部分足突融合,少量高密度物質沉積。進一步表明miR-21基因缺失可以抑制DN腎損傷。
Masson染色可以觀察組織膠原纖維積聚情況,評價纖維化病變程度。本研究結果顯示,WT-DN小鼠腎間質可見藍色膠原纖維,腎小球基底膜有不同程度增厚;WT-DN小鼠腎小管間質可見大量膠原纖維聚集;與WT-DN小鼠比較,KO-DN小鼠腎小管間質纖維化明顯減輕。這表明miR-21基因缺失可以減少膠原纖維的沉積,也就是說,miR-21對于DN是一種不利因素。
TGF-β1廣泛分布于腎小球、腎小管及腎間質,可促進腎小球系膜細胞增生,加強基質蛋白的分泌,導致腎小球纖維化及炎癥反應[13,14],被認為是致纖維化的重要因子,在DN的發展過程中起關鍵作用。DN的早期改變主要是腎小球肥大、系膜細胞增生、足突融合甚至消失,系膜細胞進一步分泌大量基質蛋白如FN、ColⅠ,大量聚集致腎臟纖維化[15]。一方面,TGF-β1可以促進細胞外基質蛋白聚集,引起腎小球基底膜增厚,從而加劇腎間質纖維化進程;另一方面,TGF-β1介導的Smad通路可以誘導腎間質發生上皮間質轉化,從而引起腎間質的纖維化過程[16~18]。杜正馳等[19]報道,DN患者尿液中FN、ColⅠ水平與TGF-β1呈正相關,說明TGF-β1可能有刺激FN、ColⅠ在腎小管間質增多、聚集的作用。本研究結果顯示,與與WT-Con組和KO-Con組相比,WT-DN組和KO-DN組腎臟TGF-β1、FN、ColⅠ蛋白表達水平升高;與WT-DN組相比,KO-DN組TGF-β1、FN、ColⅠ蛋白表達水平降低。這表明miR-21基因缺失可以緩解DN小鼠的腎臟病變,其作用機制可能與抑制TGF-β1分子從而減少腎臟基質蛋白表達有關。
綜上所述,miR-21缺失能夠抑制DN小鼠的腎臟纖維化改變,其機制可能與調控腎臟纖維化因子TGF-β1及相關基質蛋白FN、ColⅠ表達有關。因此認為,miR-21缺失可能對腎臟具有保護作用,有望作為DN纖維化的治療靶點。