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豬瘟病毒云南流行毒株E2基因遺傳變異分析

2020-07-14 17:55:40藍睿劉應華蘇云順王馨嫻趙謙尹革芬
國外畜牧學·豬與禽 2020年6期

藍睿 劉應華 蘇云順 王馨嫻 趙謙 尹革芬

摘? 要:為了解云南省豬瘟病毒(Classical Swine Fever Virus,CSFV)流行毒株E2基因的遺傳變異情況,試驗采用RT-PCR檢測云南省疑似豬瘟陽性樣品,并獲取4株E2全基因序列。對所獲的E2基因序列與國內外參考毒株進行同源性和遺傳進化樹比對分析。結果表明,獲得4條全長均為1 119 bp的云南省CSFV流行毒株E2全基因序列。4株云南毒株序列的同源性為81.7%~99.6%,與疫苗毒株的同源性為81.3%~94.5%,與其他參考序列的同源性為81.8%~99.6%。遺傳進化分析表明,4株云南流行毒株分為兩個不同的進化分支,1株流行毒株和疫苗毒株同屬于1.1基因亞型,其他3株流行毒株分布在另一進化分支上,屬于2.1c基因亞型,研究結果為云南地區豬瘟的防控提供了一定的理論參考。

關鍵詞:豬瘟病毒;E2基因;遺傳變異

中圖分類號:S852.65 文獻標志碼:A 文章編號:1001-0769(2020)06-0032-06

豬瘟(Classical Swine Fever,CSF)是由豬瘟病毒(Classical Swine Fever Virus,CSFV)引起豬的一種病毒性疾病,具有傳染性高和傳播范圍廣的特征,嚴重時發病劇烈、高燒不退甚至伴有全身敗血性癥狀,世界各地都有流行,是國際獸疫局要求必須上報的疾病之一,也是豬病中危害性最大且重視程度最高的動物傳染性疾病之一[1]。

CSFV只有一個血清型。根據5非編碼區、E2基因和NS5B聚合酶基因的序列數據系統發育分析,CSFV分為三種基因型:1型、2型和3型,每種基因型進一步分為3個或4個基因亞型。其中CSFV基因亞型2.1在國內外流行最廣,并被進一步分為CSFV基因亞型2.1a、CSFV基因亞型2.1b和CSFV基因亞型2.1c[2]。CSFV的四種基因亞型(1.1、2.1、2.2和2.3)在我國廣泛流行,其中CSFV基因亞型2.1b在過去10年中逐漸成為我國主要的流行毒株。本研究通過調查云南省CSFV流行株E2基因的遺傳變異,分析云南省部分地區CSFV流行毒株與疫苗毒株的突變情況,為豬瘟防治提供合理科學的理論依據。

1? 材料與方法

1.1? 樣品及疫苗

本試驗樣品為2018年云南省各地區豬場200份疑似豬瘟的送檢樣品,通過RT-RCR得到4個來自楚雄州某豬場、紅河州某豬場和曲靖市某豬場病豬的淋巴結、腎臟和脾臟等陽性樣品;新溫必沙豬瘟活疫苗購自吉林和元生物工程股份有限公司。

1.2? 試驗試劑

RNAiso Plus、DL2000 Marker和EcoR I限制酶購自寶生物工程(大連)有限公司;Easy First-Strand cDNA SuperMix和2×TransTag HIFI Mix II(-dye)購自北京全式金生物技術有限公司;瓊脂糖購自白賽勤化學技術有限公司;pClone007 Vector Kit和TreliefTM 5α Chemically Competent Cell購自北京擎科新業生物技術有限公司。

1.3 引物來源

擴增CSFV E2全基因引物參照文獻獲取和合成[3],引物信息如表1所示。

1.4 CSFV E2全基因擴增

按照RNAiso Plus試劑盒說明書處理樣品和提取核酸。將提取的RNA按照2×ES Reaction Mix 5 μL、EasyscriptTM RT/RI Emzyme Mix 0.5 μL、下游引物? ? ? 1 μL和模板RNA 3.5 μL的反應體系以及? ? 42 ℃ 30 min和85 ℃ 5 min的反應程序進行反轉錄。CSFV E2基因PCR擴增反應體系為:2×Trans HiFiII 12.5 μL、ddH2O 10.5 μL、上游引物0.5 μL、下游引物0.5 μL和cDNA 1.0 μL,反應體系為? ? ? 25 μL。擴增程序為94 ℃ 5 min、94 ℃ 30 s、60 ℃ 40 s和72 ℃ 40 s,循環35次;72 ℃ 5 min。取10 μL PCR擴增產物,用1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

1.5 CFSV E2全基因分子克隆

將1.3.2中擴增的PCR產物回收純化后連接到pClone007載體,轉化至感受態細胞TrelieTM 5α中,連接轉化具體操作步驟按照pClone007 Vector Kit和TreliefTM 5α Chemically Competent Cell試劑盒說明書進行。搖菌后按照試劑盒操作說明書提取重組質粒。

1.6 質粒酶切鑒定及測序

37 ℃水浴鍋中用EcoR I限制酶單酶切質粒1 h~3 h,接著用1.5%瓊脂糖凝膠對酶切產物進行電泳鑒定(酶切位點信息如表2所示),最后將鑒定正確的質粒送去測序。酶切體系:EcoR I限制酶1 μL、10×緩沖液2 μL、DEPC 16 μL、質粒? 1 μL,總反應體系20 μL。

1.7 基因同源性比較和遺傳進化樹分析

利用Megalign軟件比較本試驗獲取的流行毒株與GeneBank基因庫中參考毒株E2全基因序列的同源性,建立遺傳進化樹對遺傳關系進行分析,參考毒株序列信息如表3所示。

2? 結果

2.1 CFSV E2全基因PCR擴增

利用CFSV E2基因引物擴增云南省4個地區病豬的CFSV陽性組織樣品,PCR擴增產物電泳結果顯示,得到與預期片段大小(1 343 bp)相符的條帶(圖1)。

2.2 CSFV E2全基因目的片段的純化

PCR擴增目的基因并通過1%瓊脂糖凝膠電泳富集PCR產物,結果顯示目的片段大小為1 343 bp,與預期結果相符(圖2)。根據膠回收試劑盒操作說明進行目的片段回收,回收產物經電泳檢測,目的片段大小與預期結果相符(圖3)。

2.3 CSFV E2目的片段酶切鑒定結果

重組質粒用EcoR I限制酶進行單酶切,1.5%瓊脂糖凝膠電泳結果顯示,酶切結果出現1 408 bp和1 846 bp兩個片段,其中目的片段約為1 408 bp,與預期相符,見圖4。

2.4 CSFV E2全基因序列同源性分析

本次試驗將云南省不同地區獲得的4株CSFV云南流行毒株分別命名為YN-QJ、YN-HH、YN-HH2和YN-CX,疫苗毒株命名為YM-2,具體信息見表4。用DNA Star 6.0中Editseq、Seqman以及Megalign離線軟件對4株CSFV流行毒株的E2基因序列、1株疫苗毒株序列和17株參考序列進行比對分析,可知同源性為81.8%~99.6%,表明E2基因同源性存在較大差異,4株CSFV流行毒株間的基因同源性為81.7%~99.6%,與疫苗毒株同源性為81.3%~94.5%,見圖5。

2.5 CSFV E2基因遺傳進化分析

為進一步分析CSFV云南地方流行毒株與CSFV國內外分離株基因組之間的親緣關系,用GenBank中獲取的17株CSFV國內外參考毒株與4株CSFV云南地方流行毒株的E2基因序列構建基因遺傳進化樹,結果顯示本試驗獲得的4株CSFV云南流行毒株和疫苗毒株屬于1亞群和2亞群,主要分布在2.1分支和1.1分支上,而2.1亞型主要以2.1c為主。流行毒株YN-HH、YN-HH2和YN-CX分布在CSFV的2.1c基因亞型分支上,而毒株YN-QJ和疫苗毒株YM-2的親緣關系較近,均分布于CSFV的1.1基因亞型,并未發現CSFV的其他基因型或基因亞型(2.2亞型、2.3亞型和基因3型)的毒株,遺傳進化樹見圖6。

3? 討論

E2基因是CSFV基因組中最容易發生變異的區域,使CSFV更能適應環境的變化。這種變異性直觀地反映了CSFV流行毒株關鍵抗原表位的變異,這也是導致疫苗接種失效的原因之一。該基因的2 508~2 697位核苷酸序列(190 bp)是公認用于分析CSFV的遺傳變異的片段之一,具有最好的鑒別能力和最高的置信度,它能區分核苷酸差異很小的毒株。因此,該片段普遍用于CSFV的多樣性分析。E2基因的分析結果不僅可反映毒株的遺傳關系,還關聯著毒株間的免疫關系。此外,CSFV的中和性抗原表位都位于gp55囊膜糖蛋白上,該蛋白可以誘導機體產生保護反應,參與病毒感染細胞的過程,因此E2基因在CSFV分子流行病學研究中備受重視。

20世紀40年代分離到的石門毒株與70~80年代分離到的HeNZZ1/82毒株以及90年代分離到的BJCY1/96、BJTX3/96和GDGZ1/95毒株的E2基因同源性高達99.1%,說明E2基因的高變區在某種程度上呈現一定的穩定性;20世紀90年代分離到的3株毒株HeBHH1/95株、HeNXH2/98株和GHBH1/98株與豬瘟兔化弱毒C株的核苷酸的同源性均為100%,這表明CSFV流行株的E2變異呈現一定的多樣性,向遠離疫苗株的方向發生變異[4]。2006—2007年遼寧省CSFV流行毒株已經從基因1型向基因2型轉變,與CSFV的石門毒株和兔化弱毒株在基因序列間存在較大的差異,也在向遠離疫苗毒株的方向現發生變化[5]。本試驗通過RT-PCR和分子克隆及測序,獲得了4株CSFV云南流行毒株和1株CSFV疫苗毒株的E2基因核苷酸序列,基因全長均為1 119 bp。將獲取的4株CSFV流行毒株與國內外不同分型的18株CSFV參考序列進行基因同源性比較和構建基因遺傳進化樹分析。結果顯示,4株CSFV云南流行毒株間的核苷酸同源性為81.7%~99.6%;CSFV疫苗毒株與CSFV流行毒株的核苷酸同源性為81.3%~94.5%,其中3株CSFV流行毒株與CSFV疫苗毒株的同源性相對較低,表明云南省CSFV流行毒株在基因上產生了不同的遺傳變異。基因遺傳進化樹分析顯示,4株CSFV云南流行毒株中僅有1株CSFV流行毒株和CSFV疫苗毒株在一個分支上,屬于1.1基因亞型。其他3株CSFV流行毒株分布在另外一個進化分支上,屬于2.1c基因亞型,進一步表明在云南流行的CSFV流行毒株在遺傳上出現了進化的差異。云南省不同地區當前部分流行的CSFV呈現遺傳變異多樣性,這與國內其他區域研究CSFV的變化趨勢一致[6-7]。因此,有必要長期在云南省開展CSFV的分子流行病學調查,為豬瘟的防控提供理論和技術參考。

參考文獻:

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[2] 陶玉順,黃濤,袁東波,等. 目前我國豬瘟的流行現狀及防控策略[J]. 畜牧與獸醫,2008,(8):90-94.

[3] 毛澤明,加春生,毛澤天,等. 規模化豬場豬瘟發病新特征及預防[J]. 黑龍江畜牧獸醫,2014,(10):46-47.

[4] 郭煥成,席進,劉帥,涂長春. 豬瘟病毒基因分型寡核苷酸芯片方法的建立[J]. 中國獸醫學報,2012,32(2):177-181,211.

[5] Bhaskar N, Ravishankar C, Rajasekhar R, et al. Molecular typing and phylogenetic analysis of classical swine fever virus isolates from Kerala, India[J]. Virus Disease, 2015,26(4):260-266.

[6] Postel A, Schmeiser S, Bernau J, et al. Improved strategy for phylogenetic analysis of classical swine fever virus based on full-length E2 encoding sequences[J]. Veterinary Research, 2012, 43: 50.

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