棗粉對陜北白絨山羊肉抗氧化性能的影響

馮 平，孫旺斌，張 騫，薛瑞林，付 琪

（1. 榆林學院生命科學學院，榆林 719000；2. 榆林市佳縣方塌鎮瑞興種羊場，榆林 719208）

0 引 言

陜北白絨山羊是肉絨兼用型品種，其肉質具有細嫩、口感好、高蛋白、低脂肪、低膽固醇等特點[1]。近年來隨著生態環境的限制和羊肉需求量的增多，絨山羊養殖方式從傳統的放牧轉變為舍飼和半舍飼集約化養殖，但高密度的集約化養殖會造成絨山羊生長發育遲緩、免疫功能減弱，抗氧化能力低，從而導致羊肉品質下降。目前，通過營養調控提高羊肉的抗氧化能力，改善肉品質已成為一種重要的手段。許多學者進行相關研究，胡宇超等[2]發現發酵麩皮多糖能提高肉羊肌肉中調控抗氧化酶相關基因的表達量，可增強肌肉的抗氧化能力；Hukerdi 等[3]在羔羊飼糧中補充橄欖葉發現，隨著橄欖葉水平的增加，羔羊肌肉中的脂質氧化程度降低，谷胱甘肽過氧化物酶（GSH-Px）活力增加；Adeyemi 等[4]發現棕櫚油和菜籽油能提高山羊肌肉組織中的抗氧化物質，如α-生育酚和類胡蘿卜素的含量；Deng 等[5]在湖羊的飼糧中添加紫蘇籽，發現紫蘇籽能降低背最長肌中丙二醛（Malondialdehyde，MDA）的含量，增加抗氧化酶活性，改善肌肉氧化狀態和肉品質。但飼糧中添加棗粉改善山羊肉抗氧化性能方面的研究還比較少[6]。棗粉中含有豐富的多糖、皂甙、黃酮類等活性物質，是天然的抗氧化劑[7]。

鑒于此，本文以陜北白絨山羊為研究對象，旨在探討飼糧添加棗粉對絨山羊肉色，脂質氧化，蛋白氧化狀態、抗氧化系統和抗氧化酶基因的影響，明確棗粉在絨山羊飼糧中的適宜添加量，從而為指導生產高品質的絨山羊肉提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

從陜西省榆林市佳縣瑞興羊場選取舍飼條件下健康的6 月齡陜北白絨山羊（初始體質量（20.15±1.63）kg）40 只，按照每組8 只（公母各4 只）分成5 組，分別飼喂棗粉添加量為0（對照組）、10%（I 試驗組）、15%（II 試驗組）、20%（III 試驗組）、25%（IV 試驗組）的飼料，棗粉等比例代替基礎日糧中的玉米秸稈，棗粉由當地同一批次的殘次陜北紅棗全棗加工而成，所用棗粉均為同一批次生產，棗粉的營養成分與抗氧化性能見表1。日糧參照配方配制并制成顆粒狀，試驗日糧組成見表2。每日飼喂兩次，分別為08：00 和20：00，自由飲水，并定期清理羊舍。飼養試驗預試期10 d，飼喂期70 d。飼喂試驗結束后進行屠宰，宰前禁食24 h，禁水2 h，宰后1 h 內用已消毒剪刀迅速從羊背最長肌取約2 g 肌肉放入無菌無酶管中，于-80 ℃保藏待用，另各取約20 g 左右肌肉于-20 ℃保藏，進行肉色、脂質氧化和蛋白氧化指標測定。

表1 棗粉的營養成分與抗氧化性能 Table 1 Nutritional content and antioxidant capability of jujube power

表2 日糧組成 Table 2 Dietary composition %

磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、氯化鈉（均為分析純），北京國藥試劑有限公司；超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase，SOD）試劑盒（檢測范圍：5.0～122.1 U/mg）、谷胱甘肽過氧化物酶（Glutathione Peroxidase，GSH-Px）試劑盒（檢測范圍：20.0～330.0 U/mg）、過氧化氫酶（Catalase，CAT）試劑盒（檢測范圍：0.2～24.8 U/mg）、丙二醛（Malondialdehyde，MDA）試劑盒（檢測范圍：0～113.0 nmol/mg）、總抗氧化能力（Total Antioxidant Capacity，T-AOC）試劑盒（檢測范圍：0.2～55.2 U/mg），南京建成生物工程研究所；2, 2-聯氮基-雙-（3-乙基苯并噻唑啉-6- 磺酸） 二銨鹽（ 2, 2'-Azino-Bis（3-Ethylbenzothiazoline-6-Sulfonic acid），ABTS），美國Amresco 公司；焦碳酸二乙酯，美國Thermo Fisher 公司；RNAiso Plus、6×loading buffer、Marker DL2000、Premix Taq?Version 2.0、PremeScript TM RT reagent Kit with gDNA Eraser、SYBR?Premix Ex TaqTM，大連寶生物工程有限公司。

1.2 儀器與設備

XHF-DY 型高速分散器，寧波新芝生物科技股份有限公司；5810-R 型低溫臺式冷凍離心機，德國Eppendorf公司；TU-1810 型紫外/可見分光光度計，北京普析通用儀器有限公司；CR-400 型色差儀，日本柯尼卡美能達公司；電熱恒溫箱，上海一恒科學儀器有限公司；BG-power 5000 型穩壓穩流電泳儀，北京百晶生物科技有限公司；水平電泳槽、凝膠成像分析儀、CFX96TM 型實時定量聚合酶鏈式反應（Real-time Quantitative Polymerase Chain Reaction，qPCR）儀，美國Bio-Rad 公司；普通PCR 儀，美國Applied Biosystems 公司。

1.3 方法

1.3.1 瘤胃降解率的測定

參照姜富貴等[8]的方法并稍作修改，對安裝有永久性瘤胃瘺管的陜北白絨山羊進行營養物質48 h 瘤胃降解率的測定，計算試驗羊的瘤胃的干物質消化率（Dry Matter Digestibility，DMD）和粗蛋白消化率（Crude Protein Digestibility，CPD），計算公式如下

1.3.2 生長性能測定

分別在試驗開始和結束時對試驗羊進行空腹稱量，試驗期間記錄每次的投料量和料槽中剩余的料量，以計算每只羊每天的采食量。由此計算試驗羊的平均日采食量（Average Daily Feed Intake，ADFI）、平均日增重（Average Daily Gain，ADG）和料肉比（Feed Conversion Ratio，FCR），計算公式如下

1.3.3 肉色的測定

用CR-400全自動色差儀測定絨山羊背最長肌的亮度（L*值）、紅度（a*值）以及黃度（b*值），每個樣品測定3 次，取平均值。

1.3.4 肌紅蛋白含量的測定

參照羅玉龍等[9]的方法，切碎部分背最長肉樣，稱取5 g，按1∶9 g/mL 比例加入45 mL 磷酸鹽緩沖液（40 mmol/L、pH 值6.8），4 000 r/min 冰浴勻漿20 s 后靜置5 min 后過濾，在525 nm 波長下測定濾液的吸光度，空白對照為磷酸鹽緩沖液。肌紅蛋白（Myoglobin，Mb）質量分數（mg/g）按下式計算

式中7.6 為Mb 在波長525 nm 處的吸光系數，L/（mol·cm）；1 cm 為比色皿寬度；17 000 為Mb 的平均分子質量，Da；10 為稀釋倍數；A525為525 nm 波長下濾液的吸光度。

1.3.5 蛋白氧化狀態的測定

參照Kim 等[10]的方法，稱取已剪碎肉樣5 g，按1∶5 g/mL 比例加入25 mL 磷酸鹽緩沖液（40 mmol/L、pH值6.8），4 000 r/min 冰浴勻漿20 s 后靜置1 h，混液離心25 min（4 ℃，3 000 r/min）后取上清液，濾紙過濾后收集濾液，分別在525、545、565、572 nm 波長下測定濾液的吸光度，結合Krzywicki[11]的方法分別計算出氧合肌紅蛋白（Oxymyoglobin，OMb）和高鐵肌紅蛋白（Metmyoglobin，MMb）的相對含量（%），如下式所示

式中R1、R2、R3分別為572、565、545 nm 波長與525 nm波長處吸光度的比值。

1.3.6 抗氧化指標測定

將預冷的生理鹽水漂洗絨山羊背最長肌，濾紙吸干表面水分后剪碎肉樣，準確稱取0.5 g 肉樣，按1∶5 g/mL比例加入生理鹽水，8 000 r/min 冰浴勻漿30 s，混液離心10 min（4 ℃，4 000 r/min）后取上清液，即得到10%的肌肉提取液。采用硫代巴比妥酸法測定組織中的丙二醛（Malondialdehyde，MDA）含量，采用比色法測定總抗氧化能力（Total Antioxidant Capacity，T-AOC），超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase，SOD），谷胱甘肽過氧化物酶（Glutathione Peroxidas，GSH-Px）和過氧化氫酶（Catalase、CAT）活力，所用試劑盒均購自南京建成生物工程研究所，測定時按試劑盒說明書進行操作。

1.3.7 自由基清除率的測定

參照Wen 等[12]的方法，并稍作修改。首先配制ABTS+自由基溶液，14 mmol/L 的ABTS 原液與2.45 mmol/L 的過硫酸鉀等體積混合，在室溫避光條件下反應16 h，將ABTS+自由基溶液用磷酸鹽緩沖液（pH 值7.4）稀釋，使其在30 ℃下，734 nm 波長處的吸光度為0.75±0.02，即得到ABTS+自由基工作液。取上述10%肌肉提取液50 μL加入試管中，再加6 mL ABTS＋自由基工作液，空白管用去離子水代替樣品溶液，30 ℃避光水浴6 min 后，在734 nm 波長處測定其吸光度。自由基清除率（Radical Scavenging Ability，RSA，%）計算公式為

式中A空白為空白溶液吸光度，A 為樣品溶液吸光度。

1.3.8 基因表達量的測定

稱取約100 mg 肉樣，參照羅玉龍等[13]的方法提取肉樣的總RNA，提取的RNA 通過瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA 質量，并測定吸光度（A260nm/A280nm）及質量濃度。樣品吸光度在1.8-2.2 之間可用于后續試驗。將RNA 樣品稀釋至500 ng/μL 后反轉錄為cDNA，反轉錄方法參照試劑盒說明操作，反轉錄后的cDNA 于－80 ℃保存待用。以cDNA 為模板，參照試劑盒說明書，采用兩步法測定SOD、CAT、GSH-Px、LOX 的mRNA 相對表達量。以18S 為管家基因，采用2－ΔΔCt法計算目的基因的相對表達量，SOD、CAT、GSH-Px、LOX、18S 引物由上海生工生物工程有限公司設計并合成，引物序列如表 3 所示。

表3 qPCR 引物 Table 3 Primers of qPCR

PCR 體系為：12.5 μL SYBR?Premix Ex Taq TMII（TLi RNaseH Plus），引物F 和R 各1.0 μL，2.0 μL cDNA模板，8.5 μL RNase Free dH2O。升溫程序為：預變性95 ℃、30 s；變性95 ℃、5 s，退火60 ℃、30 s，延伸72 ℃、30 s，35 個循環；延伸72 ℃、10 min。

1.4 數據統計分析

用SPSS 20.0 軟件對數據進行ANOVA 統計分析，采用雙變量相關分析法（Pearson）對數據進行相關性分析，采用Excel 2003 軟件進行圖表處理。

2 結果與分析

2.1 不同棗粉添加水平對絨山羊瘤胃降解率及生長性能的影響

粗飼料DMD 和CPD 的瘤胃降解率是評價飼料可消化性的重要指標[14]。由表4 可知，II、III 和IV 組的干物質消化率顯著高于對照組和I 組（P＜0.05），并隨著棗粉添加量提高，DMD 值逐漸增加，說明棗粉飼料能在瘤胃中被較好的降解利用。與對照組相比，II、III 和IV 組的平均日采食量（ADFI）和平均日增重（ADG）均顯著增加（P＜0.05），并且IV 組的料肉比顯著高于對照組（P ＜0.05），由于棗粉中含有多糖、皂甙、黃酮類等活性物質，能改善飼料的適口性，從而利于白絨山羊生長性能的提高。

表4 棗粉對絨山羊瘤胃降解率及生長性能的影響 Table 4 Effects of jujube powder on rumen degradation rate and growth performance of Cashmere goat

2.2 不同棗粉添加水平對絨山羊肉色的影響

肉色是評定肌肉外觀的重要指標，能反映肉質性狀[15]。肉色的指標分別是L*、a*和b*值，其中L*代表亮度，與肌肉的光澤度有關；a*代表紅度，肌紅蛋白含量與a*有關，在一定范圍內a*值越高，則肉色越好，b*值則代表黃度。由表5 可知，棗粉水平對絨山羊的肉色有顯著影響，其中對照組的L*值（32.81）最低，隨著棗粉水平的提高，L*值增加，與對照組相比，I、II、III、IV 組的L*值分別提高了14.29%、6.49%、17.25%和18.23%；b*值在II 組中最大，顯著高于對照、I 和IV 組（P＜0.05）；對照組和I 組的a*值較低，顯著低于II、III 和IV 組（P ＜0.05），III 組的a*值最高（20.62），表明棗粉水平為20%時，絨山羊的肉色較好。

表5 棗粉對絨山羊肉色的影響 Table 5 Effects of jujube powder on meat color of Cashmere goat

2.3 不同棗粉添加水平對絨山羊肉脂質氧化程度的影響

丙二醛（MDA）是組織內脂質氧化的終產物，其含量越高說明機體產生的過氧化脂質越多，氧化損傷就越嚴重[16]。由表6 可知，對照組、I 組的MDA 含量顯著高于其他3 組（P＜0.05），并隨著棗粉水平提高，絨山羊肉中的丙二醛含量逐漸降低，在 IV 組中達到最低（1.788 nmol/mg），但與III 組（2.123 nmol/mg）沒有顯著差異（P＞0.05）。脂質氧化能生成氫過氧化物、共軛二烯烴等，這些氧化產物有介導肌紅蛋白氧化的能力，進而影響色澤。隨著MDA 值的降低，a*值增加，說明a*值的變化可能是由脂質氧化驅動肌紅蛋白氧化導致的[17]。棗粉水平能影響肌肉中丙二醛的含量，有效應對氧化應激，抑制組織內的氧化，其原因是棗粉中含有豐富的多糖、黃酮類物質，能及時清除組織中的自由基，抑制自由基誘導產生的氧化損傷[18]。

2.4 不同棗粉添加水平對絨山羊蛋白氧化狀態的影響

肌紅蛋白是紅色素的主要成分，其含量及氧化還原狀態與肉色密切相關[19]。由表6 可知，肌紅蛋白（Mb）含量隨棗粉水平的提高而增加，對照組的Mb 含量最低（7.85 mg/g），顯著低于II、III 和IV 組（P＜0.05）。III組的Mb 含量最高（11.48 mg/g），顯著高于對照組、I和II 組（P＜0.05），但與IV 組差異不顯著（P＞0.05），這與a*值的趨勢一致，進一步印證了III 組肉色最好。棗粉中含有豐富的礦物質元素，羊攝食后，這些礦物質元素能參與組織中Mb 的合成，增加了Mb 的含量[20]。

表6 棗粉對絨山羊肉脂質及蛋白氧化狀態的影響 Table 6 Effects of jujube powder on lipid and myoglobin oxidation of Cashmere goat meat

肌紅蛋白的氧化還原態包括鮮紅色的氧合肌紅蛋白（OMb）和褐色的高鐵肌紅蛋白（MMb），肉中OMb 越高，肉色越深，而MMb 含量高對肉色不利[21]。一般肉中的MMb 高于20%時，肉的紅色逐漸變暗，達到50%時，肉呈現紅褐色，若高于70%則肉變為褐色，失去銷售價值。在表6 中，對照組的OMb 最低（28.32%），顯著低于I、II、III 和IV 組（P＜0.05），而MMb 最高（35.14%）。隨著棗粉水平提高，絨山羊肉中的OMb 增加，而MMb減少，III、IV 組中OMb 的相對含量顯著高于對照組、I和II 組（P＜0.05），而MMb 含量顯著低于對照組、I和II 組（P＜0.05），兩者呈相反的結果。III 組的OMb和MMb 的相對含量與IV 組沒有顯著差異，可以推斷20%棗粉添加量能有效抑制蛋白氧化，防止肉色劣變。肌肉組織的內源抗氧化保護機制能在一定程度上防止蛋白質的氧化，在飼糧中添加棗粉能夠增加抗氧化性能，影響絨山羊肉的OMb 和MMb 相對含量，進而改善肉色。

2.5 不同棗粉添加水平對絨山羊抗氧化能力的影響

動物組織中的抗氧化防御體系主要由酶系統和非酶系統組成，酶系統主要包括過氧化氫酶（Catalase，CAT）、超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase，SOD）和谷胱甘肽過氧化物酶（Glutathione Peroxidase，GSH-Px）等抗氧化酶；非酶系統主要包括維生素E、維生素C、胡蘿卜素等抗氧化物質[22-23]。T-AOC 能衡量肉中總的抗氧化能力，RSA 則反映組織中所有抗氧化物質對自由基的清除能力。由表7 可知，對照組中總抗氧化能力（Total Antioxidant Capacity，T-AOC）（0.653 U/mg）和自由基清除率（Radical Scavenging Ability，RSA）值（17.421%）均為最低（P＜0.05），隨著棗粉添加量的提高，絨山羊肉中的T-AOC 和RSA 值均顯著增加（P＜0.05），IV 組中的T-AOC 和RSA 值最大，試驗結果表明在飼糧中添加棗粉能顯著提高肌肉的抗氧化能力。

表7 棗粉對絨山羊肉抗氧化能力的影響 Table 7 Effects of jujube powder on antioxidant capacity of Cashmere goat meat

在抗氧化酶中，SOD 能清除組織內的自由基，產生H2O2和O2；CAT 廣泛存在于動物組織中，能繼續催化H2O2分解成H2O 和O2，清除細胞中的H2O2；GSH-Px 可直接清除組織和胞液內的脂質過氧化物，并與維生素E 協同作用阻止脂質過氧化[24-25]。由表7 可知，SOD 活力隨棗粉水平的提高而增加，與對照組相比，I、II、III 和IV 組的SOD活力分別提高了26.08%、32.92%、48.90%和57.01%，均與對照組差異顯著（P＜0.05）。對照組的CAT 活力最低（7.465 U/mg），與對照組相比，I、II、III 和IV 組的CAT活力分別提高了12.53%、54.74%、55.10%和26.27%，CAT活力在III 組達到峰值（11.578 U/mg），顯著高于對照組、I 和IV 組（P＜0.05），這表明飼糧添加棗粉能提高肌肉的CAT 活力，但添加量并不是越高越好。隨著棗粉水平的提高，肌肉中GSH-Px 活力增加，與對照組相比，I、II、III和IV組的GSH-Px活力分別提高了47.21%、15.73%、77.30%和86.62%，IV 組的GSH-Px 活力最高，顯著高于對照組、I、和II 組（P＜0.05），但與III 組差異不顯著（P ＞0.05）。綜合分析，III 和IV 組的抗氧化酶活力最高，說明20%和25%棗粉添加量能有效提高絨山羊肉的抗氧化酶活力，但兩者部分指標差異不顯著，因此可選20%棗粉添加量。

2.6 不同棗粉添加水平對絨山羊相關酶基因的影響

調控抗氧化酶的基因包括SOD、CAT 和GSH-Px 基因，這些基因的表達量的高低能反映抗氧化酶的活性[26]；而脂氧合酶（Lipoxygenase，LOX）基因能調控LOX酶活性，并反映肉中MDA 含量。由表8 可知，對照組的SOD、CAT 和GSH-Px 基因表達量均最低（P＜0.05），隨著棗粉水平的提高，抗氧化酶的基因表達量增加，SOD 和GSH-Px 基因表達量增加趨勢一致。III、IV 組的SOD、GSH-Px 基因表達量顯著高于對照、I 和II 組（P＜0.05）；II、III 和IV 組的CAT 基因表達量顯著高于對照組和I 組（P＜0.05），這從分子水平上驗證了飼糧中添加棗粉能提高絨山羊肉的的抗氧化能力。在肌肉組織中，LOX 催化生物膜中的不飽和脂肪酸發生氧化反應，生成脂質過氧化物后分解形成小分子物質，LOX 基因表達量越高，脂質氧化程度越高[27]。由表8可知，對照組和I 組的LOX 基因表達量顯著高于II、III 和IV 組（P＜0.05），在棗粉水平為20%和25%時，絨山羊肉中LOX 基因表達量最低（1.013 和1.083），說明棗粉抑制了LOX 基因的表達，改善了絨山羊肉的抗氧化性能。

表8 棗粉對絨山羊相關酶基因表達量的影響 Table 8 Effects of jujube powder on related gene expression of Cashmere goat meat

2.7 抗氧化酶與酶基因表達量之間的相關性分析

絨山羊肉中抗氧化酶與酶基因的相關性分析見表9，SOD 基因表達量與SOD 酶活、CAT 酶活、GSH-Px 酶活之間呈極顯著正相關（P＜0.01），與MDA 呈極顯著負相關（P＜0.01），說明SOD 基因的高表達能提高SOD 酶活、CAT 酶活和GSH-Px 酶活，并抑制了組織中的MDA 含量。CAT 基因表達量與CAT 酶之間呈顯著正相關（P ＜0.05），CAT 基因表達活躍時，CAT 酶活力隨著增加，這更好地解釋了肌肉中CAT 酶的活性依賴于基因表達調控[28]。GSH-Px基因表達量與SOD 酶活、GSH-Px 酶活之間呈極顯著正相關（P＜0.01）。在本研究中，棗粉能顯著提高絨山羊肌肉中SOD、CAT 和GSH-Px 的基因表達量，并提高了抗氧化酶的活性，進而提高肌肉的抗氧化能力，這可能與棗粉中較高的多糖、黃酮類物質有關[29]。LOX 基因表達量與MDA呈極顯著正相關（P＜0.01），與SOD 酶活、CAT 酶活和GSH-Px 酶活之間呈極顯著負相關（P＜0.01）。

2.8 絨山羊肉中抗氧化指標的相關性分析

由表10 可知，絨山羊肉中SOD 酶與a*值呈顯著正相關（P＜0.05），Mb 與T-AOC、CAT 酶呈極顯著正相關（P＜0.01），OMb 與RSA、GSH-Px 呈極顯著正相關（P＜0.01），說明肉中的抗氧化酶能夠影響肉的色澤，組織的抗氧化系統可協同作用清除自由基，影響Mb 的氧化狀態，使OMb 的含量處于主導地位，進而改善肉色[30]。

表9 絨山羊肉中抗氧化酶與酶基因的相關性分析 Table 9 Correlation analysis between antioxidant enzyme and related gene of Cashmere goat meat

表10 絨山羊肉中抗氧化指標的相關性分析 Table 10 Correlation analysis of antioxidant parameters for Cashmere goat meat

MDA 與MMb 之間呈顯著正相關（P＜0.05），組織中的MDA 含量高時，能促進OMb 向MMb 轉化，破壞肉色穩定性，使羊肉肉色發生劣變[16]。CAT 酶與SOD 酶呈顯著正相關（P＜0.05），與T-AOC 呈極顯著正相關（P ＜0.01），GSH-Px 酶活力與RSA 呈極顯著正相關（P ＜0.01），說明抗氧化酶之間能協同作用，并且組織中的非酶抗氧化物質能促進酶活力的提高，提高絨山羊肉的抗氧化能力[31]?？軡萚32]發現添加二甲基甘氨酸鈉后，雞肉中的SOD 酶、GSH-Px 酶活力和T-AOC 值均增加，這與本試驗的研究結果一致。羊肉中的MDA 含量與a*值呈顯著負相關（P＜0.05），與OMb 值呈極顯著負相關（P＜0.01），說明MDA 含量高能加速OMb 的氧化，促進MMb 含量生成，并造成a*值下降；本試驗結果表明，T-AOC、CAT 酶與MMb之間呈極顯著負相關（P＜0.01）；Xiao 等[33]和Zhou等[34]研究表明組織中抗氧化系統能抑制肌紅蛋白氧化，降低MMb 的生成。本研究未對血液指標進行討論，從肌肉組織角度可以推斷飼糧中添加棗粉能通過增強山羊的抗氧化系統抑制肌紅蛋白氧化來改善肉色；RSA、CAT 和GSH-Px 酶與MDA 呈顯著負相關（P＜0.05），SOD 酶與MDA 呈極顯著負相關（P ＜0.01），機體中的抗氧化系統能發揮抗氧化作用，清除組織中的自由基，抑制脂質氧化，因此在飼糧中添加棗粉能夠改善抗氧化性能，穩定肉色。

3 結 論

本研究通過飼糧中的不同棗粉水平（0，10%，15%，20%和25%）研究了陜北白絨山羊肉的抗氧化性能，具體如下：

1）棗粉提高了白絨山羊的瘤胃降解率和生長性能，其中15%、20%和25%添加組的干物質消化率、平均日采食量和平均日增重均顯著高于對照組（P＜0.05）。

2）棗粉改善了羊肉的肉色，20%棗粉水平時，羊肉的紅度（a*）值（20.63）、肌紅蛋白（Myoglobin，Mb）含量（11.48 mg/g）和氧合肌紅蛋白（Oxymyoglobin，OMb）（43.28%）相對含量最高，高鐵肌紅蛋白（Metmyoglobin，MMb）（25.12%）相對含量最低，絨山羊肉的蛋白氧化程度低。

3）飼糧中添加棗粉能顯著提高肌肉的抗氧化能力，20%和25%添加組的總抗氧化能力（Total Antioxidant Capacity，T-AOC）和自由基清除率（Radical Scavenging Ability，RSA）值顯著高于對照組（P ＜0.05），20%添加組的超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase，SOD）、過氧化氫酶（Catalase，CAT）和谷胱甘肽過氧化物酶活（Glutathione Peroxidase，GSH-Px）均顯著高于對照組（P ＜0.05）；20%添加組的SOD、CAT 和GSH-Px 基因表達量顯著高于對照組（P＜0.05）。棗粉水平為20%時，抗氧化效果最好。綜合上述指標，推薦20%為適宜的棗粉添加量。