中華竹鼠源致病性大腸桿菌分離鑒定、耐藥性及毒力基因檢測

閻朝華 張 旭 陳國權 周碧君，3*王開功，3 趙大杰 文 明，3* 張件軍

(1.貴州大學動物科學學院，貴陽，550025；2.貴州大學動物疫病研究所，貴陽，550025；3.貴州省動物疫病與獸醫公共衛生重點實驗室，貴陽，550025)

大腸埃希氏菌(Escherichiacoli)是普遍存在于人和動物機體中的條件性致病菌[1]，自1990年中華竹鼠(Rhizomyssinensis)馴化圈養以來竹鼠大腸埃希氏菌病就偶有報道，屈孝初等[2]在2002年首次報道大腸埃希氏菌引發竹鼠水腫病，此后大腸埃希氏菌病在竹鼠養殖中時有發生，且具有發病快，死亡率高的特點，已成為近年來造成竹鼠養殖企業重大經濟損失的細菌性疫病之一[3-4]。根據相關報道大腸埃希氏菌許多血清型都能夠使家畜、家禽發病，目前能夠引起竹鼠源大腸埃希氏菌病的血清型有O35、O111、O141等血清型[5-6]。

中華竹鼠又名竹貍、竹餾、竹根豬等，屬于哺乳綱(Mammalia)，嚙齒目(Rodentia)，竹鼠科(Rhizomyidae)，竹鼠屬，是中國南方珍貴的特種野生動物之一[7]。近年來隨著貴州省竹鼠養殖規不斷擴大，各類細菌性疫病也時常發生，因此對竹鼠疫病病原以及防控技術的研究也變得迫在眉睫[8]。2019年年初以來貴州省三穗縣某竹鼠養殖場陸續出現竹鼠發病死亡現象，其癥狀主要表現為竹鼠精神沉郁，被毛無光澤，厭食，體型消瘦，眼瞼腫脹，下牙脫落等。為查明此次竹鼠發病病因，筆者對病死竹鼠進行病原菌分離鑒定、藥敏實驗、耐藥基因檢測、動物感染試驗和毒力基因檢測，以期為該病的防治與分子流行病學研究提供參考依據。

1 材料與方法

1.1 送檢材料

貴州省三穗縣某竹鼠養殖場送檢病死竹鼠2只，經剖檢觀察發現病死竹鼠皮下有點狀出血點、腹水充盈、肺臟有白色斑塊、肝臟腫大、腸道內容物有血塊。

1.2 試驗材料

10只昆明系雜交SPF級小白鼠，購自貴州醫科大學實驗動物中心；革蘭染色試劑盒，購自北京索萊寶科技有限公司；細菌藥敏片，購自杭州微生物試劑有限公司；鮮血瓊脂培養基和LB液體培養基均由貴州大學動物疫病研究所獸醫實驗室自制；博檢革蘭氏陰性細菌鑒定系統購自青島海博生物技術有限公司。

1.3 細菌分離培養與形態學觀察

剖檢觀察病死竹鼠，無菌操作取送檢病死竹鼠的心臟、肝臟、脾臟畫線接種于鮮血瓊脂平板，置于37℃恒溫箱中培養24 h，待細菌長出。取單個優勢菌落進行純化培養，進行革蘭染色，在顯微鏡下觀察菌體形態。

1.4 細菌生化鑒定

參照博檢革蘭氏陰性細菌(Gram negative bacteria)鑒定系統說明書對純培養菌進行生化特性鑒定。

1.5 細菌16S rDNA基因檢測及序列分析

提取純培養菌DNA為模版，以細菌16S rDNA通用引物(由生工生物工程(上海)股份有限公司合成，上、下游引物為：27F：5′-AGAGTTTGATCATGGCTCAG-3′1492R5′-TACGGTTACCTTGTTACGACTT-3′；預計擴增片段大小為1 356 bp)進行PCR擴增。25 μL PCR反應體系：2×TaqPCR Markter Mix：12.5 μL，上、下游引物各1 μL，模板DNA 2 μL，剩下用雙蒸水補足25 μL。反應條件：94 ℃預變性5 min；94 ℃變性 30 s，54 ℃退火30 s，72 ℃延伸90 s，共 30 個循環；72 ℃ 延伸10 min。取10 μL PCR產物進行1.5% 瓊脂糖凝膠電泳檢測結果。將PCR產物送至生工生物工程(上海)股份有限公司進行基因測序，并將測序結果于NCBI數據庫中進行對比分析，用 Mega 7.0軟件建立系統發育樹。

1.6 細菌藥敏實驗和耐藥基因檢測1.6.1 細菌藥敏實驗

采用制片擴散法(K-B法)，取200 μL純培養菌液均勻涂布于LB瓊脂平板后粘貼藥敏紙片，37 ℃培養24 h后觀察并記錄抑菌圈直徑，判定菌株對不同藥物的敏感性。

1.6.2 細菌耐藥基因檢測

根據藥敏實驗參照相關文獻[8-10]設計細菌常見耐藥基因引物，即I類整合子基因(Intl1)、四環素耐藥基因(tetA、tetB、tetD)，引物序列見表1，由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。對分離菌純培養物DNA進行 PCR檢測，將PCR產物進行1.5%瓊脂糖凝膠電泳并觀察判定結果。

表1 耐藥基因引物信息Tab.1 Primer information of drug resistance genes

1.7 細菌人工感染試驗與毒力基因檢測1.7.1 細菌人工動物感染試驗

將10只健康昆明系雜交SPF級小白鼠分為試驗組與對照組，每組各5只。試驗組每只腹腔注射分離菌懸液0.3 mL(用滅菌生理鹽水將分離菌配制成濃度2.12×109cfu/mL)，對照組每只腹腔注射0.3 mL無菌生理鹽水，連續觀察3 d，記錄小鼠的死亡情況并及時分離鑒定死亡小鼠體內病原菌

1.7.2 細菌毒力基因檢測

參考文獻[11-12]設計并合成腸桿菌科常見8種毒力基因，即fyuA、irp-2、ompA、papA、papC、fimH、UidA、afa，引物序列見表2。

表2 毒力基因引物信息Tab.2 Virulence gene primer information

2 結果

2.1 細菌分離培養與形態學觀察結果

經剖檢觀察發現病死竹鼠皮下有點狀出血點，腹水充盈，肺臟有白色斑塊，肝臟腫大，腸道內容物有血塊。在無菌條件下取病死竹鼠心、肝、脾臟接種于鮮血瓊脂平板，37 ℃培養24 h可見細菌生長，形成圓形凸起、表面光滑、灰白色的菌落(圖1)；經革蘭氏染色后鏡檢，菌體為革蘭氏陰性短小桿菌(Gram negativeCurtobacterium)，兩端鈍圓，多數呈單個規則排列(圖2)。

圖1 分離菌的菌落形態Fig.1 Colony morphology of isolated bacteria

圖2 分離菌革蘭氏染色鏡檢(100×)Fig.2 Gram staining microscopic examination of isolated bacteria(100×)

2.2 生化鑒定結果

生化鑒定結果顯示該細菌可利用ONPG、賴氨酸、乳糖、葡萄糖、甘露醇、山梨醇、鼠李糖、蜜二糖，氧化酶、吲哚等反應為陽性，蔗糖、苦杏仁甙、VP等反應為陰性(表3)，將該生化試驗結果通過博檢革蘭氏陰性細菌鑒定系統檢索為大腸桿菌，并命名為GZSS。

表3 分離菌生化鑒定結果Tab.3 Biochemical identification of isolated bacteria

2.3 細菌16S rDNA基因檢測及序列分析結果

細菌16S rDNA基因經PCR擴增結果顯示，得到大小為1 356 bp 特異性片段(圖3)；將測序結果與 NCBI數據庫進行BLAST比對，結果顯示，分離菌株 GZSS與鴨源、雞源、牛源、羊源、貓源、鼠源性等13株大腸桿菌參考株相應序列同源性達95%—99.4%(圖4)；通過MegAlign軟件進行系統進化樹分析，發現分離菌GZSS與豬源大腸桿菌(swineE.coli)JF513979.1親緣關系最近(圖4)。綜合分離菌形態學特征、生理生化特性鑒定及16S rDNA基因測序分析，判斷該分離菌為大腸桿菌(GZSS)。

圖4 分離菌株16S rDNA與其他分離株的同源性比對Fig.4 Homology comparison of 16S rDNA isolates with other isolates

圖3 分離菌16S rDNA基因序列 PCR 擴增結果Fig.3 Amplification of 16S rDNA genesequence of isolated bacteria by PCR

2.4 細菌藥敏實驗結果

藥敏實驗結果顯示，該分離菌對苯唑西林、慶大霉素、復方新諾明、頭孢曲松、氟苯尼考、磺胺異噁唑、卡那霉素、氧氟沙星、妥布霉素、新霉素、羧芐西林、頭孢拉定、恩諾沙星、阿莫西林14種藥物敏感，對多黏菌素B中度敏感，對多西環素 、四環素、米諾環素3種藥物耐藥(表5)。

圖5 分離菌(GZSS)基于16S DNA基因序列的系統進化樹Fig.5 Phylogenetic(GZSS)tree of isolated bacteria based on 16s DNA genesequence

表5 藥敏試驗結果Tab.5 Drug susceptibility test result

2.5 細菌耐藥基因檢測結果

根據藥敏實驗結果設計4種耐四環素類基因引物進行PCR擴增，經1.5%瓊脂糖凝膠電泳顯示，分離菌攜帶有Intl1(146 bp)、tetA(831 bp)2種耐藥基因，未檢測出tetB、tetC2種耐藥基因(圖6)。

圖6 分離菌耐藥基因 PCR擴增電泳Fig.6 Amplified polymerase chain electrophoresis map of drug resistance genes of isolated bacteria M，DL2000 DNA Marker.1，Intl 1.2，tetA. 3，tetB.4，tetC

2.6 細菌人工感染試驗結果

經動物感染試驗發現，對照小鼠在觀察期內無明顯臨床癥狀和死亡，實驗組小鼠在注射24 h后開始出現精神沉郁，進食減少，卷縮，嗜睡等癥狀，于36 h開始出現死亡現象，至72 h小鼠全部死亡。從死亡小鼠肝臟、心臟等組織處均能分離到形態一致的菌落，對其進行革蘭染色鏡檢、生化特性鑒定和 16S r RNA 同源性比對，結果顯示分離出的感染菌在外部形態、生理生化特性與初始分離得到的感染菌為同一種菌。對照組正常飲食，沒有死亡現象。

2.7 細菌毒力基因 PCR檢測結果

設計大腸桿菌8種毒力基因特異性引物進行PCR擴增，經1.5%瓊脂糖凝膠電泳顯示，分離菌攜帶papA(761 bp)、UidA(264 bp)、afa(251 bp)3種毒力基因，未檢測出fyuA、irp-2、ompA、papC、fimH5種毒力基因(圖7)。

圖7 毒力因子PCR擴增結果Fig.7 Virulence factor PCR amplification results M，DL2000 DNA Marker；-，陰性對照Negative control；

3 討論

大腸埃希氏菌是一種革蘭氏陰性細菌，正常情況下主要分布于人和動物的消化道、呼吸道、泌尿系統內，當人或動物免疫力低下時在某些部位會成為致病菌[13]，即條件性致病菌。致病性大腸桿菌主要有產腸毒素大腸桿(enterotoxigenicEscherichiacoli，ETEC)、產類志賀毒素大腸桿菌(shigalike toxinEscherichiacoli，SLTEC)、 腸道致病性大腸桿菌(enteropathogenicEscherichiacoli，EPEC)、敗血性大腸桿菌(septicEscherichiacoli，SEPEC)及尿道致病性大腸桿菌 (urethral pathogenicEscherichiacoli，UPEC)，等，在動物群體中最常見的為產腸毒素大腸桿菌[14-17]。實驗從竹鼠體內分離到一株大腸埃希氏菌，在瓊脂平板上呈圓形凸起、表面光滑、灰白色的菌落，與曾喻兵等[18]報道一致。此外，不同分離源的大腸埃希氏菌生化戚特性具有差異。戚偉等[19]分離的豬源大腸桿菌能分解蔗糖、葡萄糖產酸產氣。本實驗分離菌與宋越等[20]和余佳[21]禽源性大腸桿菌(avianEscherichiacoli，AEC)的生化特性基本一致，但葡萄糖分解不產酸和產氣。因此在傳統的生化實驗上還需要通過16S rDNA基因序列分析鑒定才能得到準確的鑒定結果。

養殖場藥物的使用情況或來源不同(雞源、犬源)可使細菌對抗菌藥物的敏感性不同，劉硯涵等[13]在對具有免疫程序的養雞場藥敏實驗結果顯示該雞源大腸桿菌對氨芐西林、氯霉素、四環素、氟苯尼考等耐藥。蘇玉珍[22]對寵物犬源分離的大腸桿菌藥敏實驗結果顯示其分離菌對頭孢曲松、頭孢他啶、氟苯尼考等耐藥。通過該竹鼠養殖場技術人員的反饋，由于該養殖場規模較小和講求“綠色生態”的原因，并未對竹鼠投喂任何藥物。據上述研究表明不同來源的大腸埃希氏菌和藥物的使用情況對個別藥物的敏感性具有差異性。耐藥基因檢測出Intl1和tetA2種耐藥基因，結合藥敏僅對四環素類藥物耐藥，表明本研究分離的大腸埃希氏菌對四環素類耐藥與基因型相符合。

細菌所帶的毒力基因與其致病性密切相關，細菌所攜帶毒力因子與其致病性緊密相關，papA、UidA、afa，fyuA、irp-2、ompA、papC、fimH是大腸埃希氏菌的重要致病基因。王紹紅等[23]和王洪彬等[24]研究中把papA、UidA、afa等因子作為大腸埃希氏菌病致死的主要毒力基因。綜合上述研究分析引起本次竹鼠死亡的原因與分離株攜帶有這3種毒力基因有關。

4 結論

試驗對從貴州省三穗縣某竹鼠養殖場送檢病死竹鼠體內分離到1株攜帶3種毒力基因的竹鼠源大腸埃希氏菌致病菌，通過藥敏實驗、耐藥基因檢測顯示分離菌對磺胺異噁唑、阿莫西林、新霉素等藥物敏感，對四環素類藥物耐藥，建議養殖場用敏感藥物進行該細菌病的防治。