東方百合轉化探究

馮慧敏 張 偉 洪 波

（大興安嶺職業學院 黑龍江大興安嶺 165099）

百合花姿優美，色彩豐富，位列四大鮮切花，深受人們的喜愛。百合花粉顏色較深，附著性強，一般使用前需要人工摘除，以防止污染花瓣和衣物等。如何解決花粉污染問題一直是百合育種的研究熱點之一。文章應用轉基因技術，對東方百合進行轉化改造，將外源基因ZM401 導入東方百合基因組，促使花藥特異性表達，花藥不能正常發育形成，也就不能形成花粉，從而解決花粉污染問題，為培育百合無花粉新品種進行探索研究。

1 實驗材料

應用東方百合的組培苗生長的小鱗莖鱗片為植物實驗材料。目標基因借助根癌農桿菌菌株LBA4404 進行轉化，菌株含攜帶ZOM401 基因的質粒pBI121，目標片斷大小為702 個bp。

2 實驗方法

2.1 建立東方百合鱗片外植體的高頻再生體系

取組培苗直徑約1.5 cm 小鱗莖的鱗片，切成四周都有傷口約0.5 cm2的小塊，注意切掉鱗片基部可能存在潛伏芽的部位，將處理好的外植體接種在含生長素0.2 mg/L NAA的基礎培養基（單位符號為mg/L，以下無特殊說明均省略），細胞分裂素BA 設5 個濃度梯度，依次為0.5、1.0、1.5、2.0、2.5。每種濃度處理接種30 個外植體，30 d 繼代一次。45 d 后統計鱗片分化情況。

再生苗生長至2～3 cm 高時轉入1/2MS 生根培養基，設2 個NAA 濃度梯度，分別為NAA0.2 和NAA0.5。生根培養45 d 統計生根結果。苗高5～6 cm、根長3～5 cm 時進行移栽馴化，最后栽植到蛭石∶草炭土=1∶1 的基質中。

2.2 潮霉素選擇濃度試驗

鱗片高頻再生培養基（MS + NAA 0.2 + BA 1.5）中添加潮霉素，濃度梯度為0、10、20、30、40、50，每種濃度接種鱗片40 個，培養一個月后統計結果。

2.3 農桿菌介導的遺傳轉化

2.3.1 培養基組成

通過再生實驗結果分析，確定東方百合鱗片再生培養基為MS + NAA0.2 + BA1.5。選擇培養基在此基礎上添加Hy40 和Cb300。為了促進鱗片芽的形態建成降低BA濃度，即發育培養基為MS + NAA0.2 + BA0.5 + Hy40 + Cb300。生根培養基為1/2MS + NAA0.5+ Hy40 + Cb300。

2.3.2 轉化實驗步驟

把東方百合鱗片外植體接入分化培養基誘導3 d 后放入OD600 =0.4～0.6 的菌液中侵染5 min，取出后用無菌濾紙吸干菌液，接種在預培養基中，暗培養2～4 d，溫度控制在26 左右。然后將鱗片外植體轉入選擇培養基培養，30 d 繼代轉接一次，培養60 d 后轉入發育培養基繼續培養。當抗性再生苗高約2 cm 時轉入生根培養基。

3 結果與分析

3.1 東方百合鱗片外植體高頻再生體系的建立

3.1.1 不同濃度BA 對鱗片不定芽誘導的影響

鱗片接種7 d 左右顏色加深，體積膨大，10 d 后開始出現淡黃色或白色芽點，14 d 后開始分化不定芽。30 d 后除含BA2.0 的培養基外其他各BA 濃度培養基誘導的鱗片外植體都分化出芽，并形成小植株。培養45 d，含BA1.5 的培養基中再生芽長1.2 cm 左右。不同BA 濃度梯度培養基中，再生芽增殖系數分別為2.25、2.41、3.08、2.25、1.58，所有鱗片外植體都可分化出芽，其中含BA1.5培養基中的外植體分化芽數最多，增殖系數最高，可作為鱗片外植體誘導分化培養基。試驗結果見表1。

3.1.2 不同濃度NAA 和MS 或1/2MS 組合對東方百合再生苗生根的影響

再生苗高2～3 cm 時轉入生根培養基，生根培養基為MS 和1/2MS 培養基中添加NAA（0.2 和0.5），培養8 d 左右再生苗開始生根，根黃綠色，生長健壯，并有大量白色根毛。

生根培養45 d 結果如下：1/2MS+NAA0.5 培養基中的幼苗葉叢基部多數形成小鱗莖，每株葉4～6 片，具長柄，葉披針形，綠色。根黃綠色，根毛長約2 mm，根徑約1.5 mm以上根長3～4 cm，平均每株生根11.2 根。該培養基誘導根的質量最高，根較長且粗壯，而且平均每株生根數量11條以上，能夠保證正常的營養供應，盆栽成活率和大田移栽成活率都是最高的。

表1 鱗片外植體不定芽誘導分化的情況

3.2 潮霉素對鱗片外植體再生的影響

將百合鱗片外植體接種到含潮霉素的再生培養基中誘導培養7 d 后，鱗片褪綠變白，潮霉素濃度越高白化現象愈嚴重。接種Hy40 中的鱗片外植體87.5%褐化死亡，可選擇Hy40 為亞致死濃度。當Hy 濃度達到50，所有外植體都死亡，為致死濃度。選擇鱗片潮霉素抗選擇壓為40 mg/L，能抑制或殺死非轉化細胞，又不抑制轉化細胞正常生長。

3.3 鱗片遺傳轉化的結果

東方百合鱗片外植體侵染培養4 d 后轉接到選擇培養基中繼續誘導，生長13 d 后多數外植體切口出現褐化的現象，培養時間越長，外植體褐化死亡越多，僅有少數的外植體膨脹變大。培養30 d 后有3～7 個的外植體（接種100個/重復）出現淡黃色芽點，大部分外植體死亡或失去再生能力。培養50 d 獲得2～4 抗性芽，培養60 d 抗性芽1 cm左右，轉入發育培養基。再培養至芽長2 cm 左右，轉入生根培養基。18 d 后抗性芽生根，（對照10 d 開始生根），培養45 d 根長1～3 cm（對照2～5 cm），再生芽葉片伸長，植株基部開始形成小鱗莖。

東方百合鱗片外植體遺傳轉化試驗共獲得23 個抗性芽，占侵染總數3 000 塊的0.76%。

3.4 轉基因植株的PCR 檢測

對東方百合轉化篩選出的23 株苗進行PCR檢測，其中9 株顯示為陽性，初步確認ZM401 基因整合到東方百合基因組中。東方百合共侵染3000 塊鱗片外植體，獲得陽性轉基因株系9 個，遺傳轉化率0.3%。

4 討論

百合鱗片培養可直接形成不定芽和愈傷組織，是良好的遺傳轉化材料[4]。用組培無菌苗作轉化受體材料，取材不受季節的限制，還能避免消毒劑的影響，較適合作為受體外植體材料。而且直接分化成苗，變異率小，分化率較高。鱗片外植體再生苗主要分布在鱗片的傷口處，鱗片的底部較多，上部稍少，兩側切口形成的最少，有可能是鱗片內部的激素分布不均造成的。所以外植體材料應盡可能選擇鱗片底部部位。而且再生芽多是從切口處誘導形成的，有利于農桿菌侵染，可提高轉化率。[5～7]菌液侵染濃度對百合轉化效率影響較大，實驗過程中菌液稀釋20 倍以上時進行侵染實驗，侵染幾百個鱗片外植體，僅獲得1 個抗性芽，經PCR 檢測還是假陽性的。雖然侵染菌液濃度低，抗生素應用量少，對外植體影響小，但是極難成功轉化，可見菌液濃度不能太低。