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華北耬斗菜不同組織總DNA提取效果比較試驗研究

2020-10-15 00:18:55高姣姣曾憲偉
種子科技 2020年16期

高姣姣 曾憲偉

摘? ?要:為進(jìn)一步開發(fā)利用華北耬斗菜資源并對其開展分子生物學(xué)研究,利用改良CTAB法提取華北耬斗菜植株的根、莖、葉、花和種子等5種組織總DNA,通過觀察提取過程中各組織的表現(xiàn)和紫外分光光度計檢測提取的總DNA,旨在找到最適宜提取總DNA的華北耬斗菜組織材料。結(jié)果表明:華北耬斗菜根、莖、葉、花和種子5種組織總DNA A260/A280比值依次為1.545、1.553、1.785、1.724、1.464,濃度為1 275 ng/μL、1 825 ng/μL、2 500 ng/μL、1 250 ng/μL、2 050 ng/μL。其中葉片總DNA提取效果最好,A260/A280比值接近純DNA(1.8~2.0),總DNA濃度達(dá)到2 500 ng/μL。因此,華北耬斗菜葉片更適宜用改良CTAB法提取其總DNA。

關(guān)鍵詞:華北耬斗菜;改良CTAB法;總DNA提取

文章編號: 1005-2690(2020)16-0004-03? ? ? ?中圖分類號: S63? ? ? ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼: B

耬斗菜屬(Aquilegia L.)植物的系統(tǒng)發(fā)育模式介于雙子葉植物擬南芥和單子葉植物水稻之間,是一種新興的模式植物[1]。因此,對其進(jìn)行分子生物學(xué)研究具有重要的意義。華北耬斗菜(Aquilegia yabeana Kitag.)為毛茛科耬斗菜屬多年生宿根草本植物,分布于華中、華北地區(qū)[2]。其葉型優(yōu)美,花型獨特似耬斗,花色深紫,花期較長,觀賞價值很高,常用作園林園藝花卉。此外,作為傳統(tǒng)中藥材,華北耬斗菜具有良好的治療月經(jīng)不調(diào)、痛經(jīng)等婦科疾病的作用[3]。

開展分子生物學(xué)和遺傳育種學(xué)研究,提取核酸總DNA是首要且基礎(chǔ)的任務(wù)[4]。華北耬斗菜為草本植物,富含多糖、多酚和酯類等各種次生代謝產(chǎn)物,且組織特異性和各組織分化程度差異較大,不同組織及部位產(chǎn)生的次生代謝產(chǎn)物種類和含量不一,各組織對試劑與提取過程各反應(yīng)條件的耐受能力強弱不同,因此,各組織總DNA提取效果存在一定的差異。研究表明,采用改良CTAB法提取植物總DNA,可以較為徹底地去除植物多糖,提取的核酸質(zhì)量和純度均較好,且提取方法簡單易操作[5-6]。

本研究采用改良CTAB法提取華北耬斗菜根、莖、葉、花和種子等5種不同組織的總DNA,通過觀察提取過程中各組織材料的表現(xiàn)差異和紫外分光法測定總DNA的A260和A280,比較分析各組織總DNA提取的效果,旨在找到適宜華北耬斗菜總DNA提取的最佳組織材料,從而提取到高質(zhì)量的總DNA,以期為華北耬斗菜的分子生物學(xué)研究提供一定的理論參考。

1? ?材料與方法

1.1? ?試驗材料

試驗材料采自呂梁學(xué)院藝術(shù)樓東側(cè)花圃,選擇生長狀況良好、無病蟲害的華北耬斗菜,為保證所獲取組織材料的均一性,根、莖、葉、花和種子均來自于同一植株。具體取材部位為:取自根系末端部位1 cm長度,直徑不超過0.2 cm的幼根;取自距離頂端幼芽1~2 cm且除去頂端幼芽及嫩葉的嫩莖;取自頂端幼芽處未展開至半展開的嫩葉;取自盛開的花朵,除去花蕾的花瓣;取自果莢里籽粒飽滿、種皮青綠色的半成熟種子。

1.2? ?試驗方法

1.2.1? ?改良CTAB法提取總DNA

在傳統(tǒng)CTAB法提取植物總DNA的基礎(chǔ)上,增加抗氧化劑和二次離心過程,具體操作方法及流程如圖1。

1.2.2? ?紫外分光光度計測定

通常核酸分子在紫外光260 nm處具有最大的光吸收值,而蛋白質(zhì)在紫外光280 nm處的光吸收值最大,在260 nm處的吸收僅為核酸的1/10或更低,故可以根據(jù)A260值和A260/A280比值分別推算出核酸濃度和DNA純度。1 μg/mL DNA在260 nm處光吸收值為0.02,DNA濃度(ng/μL)=[A260/0.020×比色皿厚度(cm)]×稀釋倍數(shù)。DNA純度可以根據(jù)A260/A280的比值來確定:當(dāng)A260/A280<1.8,表示蛋白質(zhì)含量較高;A260/A280>2.0,表示RNA含量較高;A260/A280=1.8~2.0,表示DNA較純。

2? ?結(jié)果與分析

2.1? ?各組織總DNA提取過程效果比較

在華北耬斗菜根、莖、葉、花和種子等5種不同組織總DNA提取過程中,各組織的總DNA提取效果差異較大,見表1。

2.1.1? ?各組織的研磨效果

各組織研磨后的表現(xiàn)如圖2所示,華北耬斗菜各組織都比較均勻,莖類較難研磨,存在少許纖維素,其中可能含有較多分化完全的導(dǎo)管與篩管細(xì)胞;根類組織變褐現(xiàn)象嚴(yán)重,可能含有較多的多酚,易氧化變黑;花類組織含有較多的水分,研磨過程中色澤淡化,且色素被β-巰基乙醇還原為黃色;葉類組織研磨效果較好,質(zhì)地細(xì)膩均勻,色素較多;種子內(nèi)部可能含有較多的脂類物質(zhì),研磨不夠充分,為淡黃色半流體膠狀物。

2.1.2? ?加入有機溶劑效果

加入24∶1氯仿/異戊醇結(jié)果如圖3所示,根、莖、葉和種子不易與24∶1氯仿/異戊醇分散,蛋白質(zhì)層較厚;花類組織材料與有機相分層明顯,大部分色素溶于基層有機相,少量色素溶于上清液,多糖、蛋白質(zhì)含量較少。

2.1.3? ?各組織離心分層效果

離心可使CTAB-蛋白質(zhì)/多糖絡(luò)合物加速沉淀,液體明顯分為3層,上層為溶解有DNA的高鹽緩沖液,中間層為CTAB-蛋白質(zhì)/多糖的復(fù)雜絡(luò)合物,下層為溶解有色素、酯類、酚類的氯仿/異戊醇。從圖4可以看出,根類組織上清液渾濁,有較多的多酚被氧化變?yōu)楹稚?莖、葉、種子類組織分層明顯,上清液清透,無明顯雜質(zhì),分離效果較好;花類組織上清液仍有少量色素,且中間層多糖,蛋白類沉淀較松散,導(dǎo)致DNA回收率較低。

2.1.4? ?各組織總DNA沉淀效果

由于DNA不溶于異丙醇等有機溶劑,通過離心可使其沉淀下來。離心后沉淀如圖5,可以看出根的總DNA沉淀最少,且沉淀中有褐色雜質(zhì);莖的總DNA沉淀少,顏色半透明偏白;葉和種子的總DNA沉淀適中,顏色白,效果好;花瓣的總DNA沉淀少,為淺黃色,有色素雜質(zhì)殘留。

2.2? ?紫外分光光度計結(jié)果

各組織總DNA溶液紫外分光光度計檢測結(jié)果見表2。

從表2可以看出,華北耬斗菜不同組織總DNA A260/A280均低于1.80,說明所提取的總DNA溶液均含有蛋白質(zhì)雜質(zhì)。其中,葉片總DNA A260/A280比值為1.785,最接近1.8~2.0,且總DNA濃度達(dá)到2 500 ng/μL,可初步得出5種組織中葉類的總DNA純度、濃度均為最高,花瓣總DNA純度次之,但其DNA濃度較低,為1 250 ng/μL,產(chǎn)率遠(yuǎn)遠(yuǎn)不如葉類組織,根、莖和種子的總DNA A260/A280比值均在1.5左右,表明其總DNA純度較低,蛋白質(zhì)雜質(zhì)較多。

3? ?討論

總DNA在植物不同組織內(nèi)分布不同,含量也有所差異,組織中不同的成分對總DNA提取的純度、濃度及產(chǎn)量均存在一定的影響[7]。楊運良等采用改良CTAB法對火龍果果肉、果皮、種子進(jìn)行總DNA提取發(fā)現(xiàn),來自同一紅肉火龍果果實不同組織的總DNA濃度各不相同[8]。通過本研究對華北耬斗菜不同組織總DNA提取效果的比較發(fā)現(xiàn),各組織總DNA濃度也各不相同,且A260/A280比值均在1.8以下,說明所提取的總DNA均存在一定量的蛋白質(zhì)雜質(zhì),需進(jìn)一步去除。

其中,根、莖、葉、花和種子等5種不同組織中,根含有較多酚類物質(zhì),褐變嚴(yán)重,大量雜質(zhì)影響總DNA純度,且總DNA發(fā)生降解,致使總DNA產(chǎn)量、純度都較低;莖干由于細(xì)胞高度分化,部分細(xì)胞形成大量纖維素,總DNA產(chǎn)量、純度一般;葉片含有大量葉綠體,總DNA含量豐富,色素易溶于氯仿,總DNA回收率高,產(chǎn)量、純度都較高;花瓣細(xì)胞含有大液泡,含水量多,蛋白質(zhì)/多糖成分少,離心后細(xì)胞碎片不易沉淀,導(dǎo)致總DNA純度較高但產(chǎn)量較低;種子中積累較多的可溶性糖與蛋白質(zhì)提取的總DNA存在較多雜質(zhì),是導(dǎo)致其純度低的主要原因。李健仔等研究證明,葉類組織含有豐富的葉綠體DNA,其總DNA濃度與純度等提取效果表現(xiàn)良好[9],與本試驗中葉類組織總DNA A260/A280比值和濃度均較高結(jié)果一致。

此外,李萌等以廟臺槭葉片和果實為試驗材料,探討了這2種不同組織DNA高效提取的方法[10]。劉泊鈺等分別采用了SDS法、CTAB法和試劑盒法共3種提取方法,比較分析了金線蓮根、莖、葉DNA提取的效果[11]。今后可繼續(xù)探究其他不同提取方法及其他影響總DNA提取效果的試驗因素等,對華北耬斗菜不同組織總DNA提取進(jìn)行優(yōu)化,為后續(xù)更好地進(jìn)行其分子生物學(xué)研究奠定基礎(chǔ)。

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