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6?姜酚對(duì)馬兜鈴酸A 誘導(dǎo)的HK?2 腎小管上皮細(xì)胞損傷的保護(hù)作用

2020-11-02 13:14:32邵珠瑩潘金火張?jiān)聥?/span>蔣志濤馮星月王建春
中成藥 2020年10期

邵珠瑩 潘金火 張?jiān)聥? 蔣志濤 王 雪 馮星月 王建春?

(1.南京中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院, 江蘇 南京210023; 2.南京中醫(yī)藥大學(xué)附屬?gòu)埣腋坩t(yī)院, 江蘇省企業(yè)研究生工作站, 江蘇 張家港215600)

關(guān)木通含馬兜鈴酸,20 世紀(jì)90 年代,國(guó)內(nèi)外一些學(xué)者報(bào)道顯示,應(yīng)用關(guān)木通可導(dǎo)致以進(jìn)展性腎小管間質(zhì)損傷為主的腎毒性,國(guó)家藥監(jiān)局于2003 年取消了關(guān)木通的藥用標(biāo)準(zhǔn)[1?3]。但馬兜鈴酸A 作為馬兜鈴屬和細(xì)辛屬植物中所共有的成分,在很多常用的中藥中都含有,馬兜鈴、青木香、天仙藤、細(xì)辛、尋骨風(fēng)、朱砂蓮、廣防己等[4],這些中藥臨床應(yīng)用廣泛,所以一味地禁用或者全面否定并不是解決這些藥物臨床應(yīng)用的最佳方法。在古代醫(yī)藥文獻(xiàn)中藥物毒性常是指這種藥物的偏性,在中醫(yī)理論看來,作為藥物都有毒性,關(guān)鍵是要正確使用。筆者的前期研究報(bào)道顯示[5],UPLC?TQD?MS 法基于“辛開苦降” 理論探討關(guān)木通配伍干姜的減毒存效機(jī)制,前期的結(jié)果顯示干姜?關(guān)木通(2 ∶1)配伍煎煮后,關(guān)木通中的馬兜鈴酸A 降低率達(dá)87.79%,而配伍后的方劑對(duì)大鼠的利尿作用沒有影響,且對(duì)大鼠急性腎功能損傷明顯低于關(guān)木通生品。

干姜作為常用的藥食同源中藥材,據(jù) 《本草綱目》《本草經(jīng)疏》 等記載,其性熱,有溫中散寒、回陽(yáng)通脈、溫肺化飲等功效[6]。6?姜酚是干姜中的主要有效成分,研究發(fā)現(xiàn)其有抗炎、抗腫瘤、抗氧化以及降壓等作用[7]。為了驗(yàn)證藥物配伍后對(duì)關(guān)木通的腎臟減毒作用,為含馬兜鈴酸A 的中藥飲片現(xiàn)有臨床應(yīng)用問題提供一定的指導(dǎo),本實(shí)驗(yàn)在體外觀察比較了馬兜鈴酸A 和6?姜酚+馬兜鈴酸A 對(duì)正常人腎小管上皮細(xì)胞HK?2 的影響。

1 材料

1.1 細(xì)胞 人正常腎小管上皮細(xì)胞(HK?2 細(xì)胞,批號(hào)20180322),購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù)。

1.2 試劑與藥物 馬兜鈴酸A(批號(hào)PRF8010623)、6?姜酚(批號(hào)PRF8012005)購(gòu)自上海源葉生物科技有限公司(純度>98%);DMEM 培養(yǎng)基(以色列Biological Industries公司,批號(hào)171115?374);胎牛血清(以色列Biological In?dustries 公司,批號(hào)Nu12955);0.25% 胰蛋白酶(以色列Biological Industries 公司,批號(hào)J340823);雙抗混合液(青霉素、鏈霉素,以色列Biological Industries 公司,批號(hào)170218?385);熒光素二乙酸酯(阿拉丁試劑有限公司,批號(hào)201804);SOD 試劑盒、MDA 試劑盒、GSH 試劑盒、GSH?Px 試劑盒(南京建成生物工程研究所,批號(hào)分別為20180234、20180626、20180321、20180422 );GAPDH Rabbit IgG(美國(guó)Santa Cruz 公司,批號(hào)A6765);Rabbit polyclonal to NF?kB p65(英 國(guó) Abcam 公 司,批 號(hào)GR568343?1);Rabbit polyclonal to p?NF?kB p65(英 國(guó)Abcam 公 司,批 號(hào) GR530813?2 );Caspase?3 Rabbit polyclonal IgG(美 國(guó) Bioworld 公 司,批 號(hào) CJ54654);Cleaved?Caspase?3 Rabbit polyclonal IgG(美 國(guó)Bioworld 公司,批號(hào)JJ761202)。其他試劑均為分析純,購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

1.3 儀器 MicroCL 17R 高速低溫離心機(jī)(美國(guó)Thermo Fisher Scientific 公司);ELx800 酶標(biāo)儀(美國(guó)伯騰儀器公司);DMI3000B 倒置光學(xué)顯微 鏡(德國(guó)徠卡公司);Master?D UVF 超純水機(jī)(上海和泰儀器有限公司);SK?O180?E 圓形搖床(大龍醫(yī)療設(shè)備有限公司);EPS300 電泳電源、VE?180 垂直電泳槽、5300 凝膠成像系統(tǒng)(上海天能科技有限公司);FS?500 封口儀(德清拜杰電氣有限公司)。

2 方法

2.1 HK?2 細(xì)胞的培養(yǎng) 細(xì)胞置含10%胎牛血清的DMEM完全培養(yǎng)液中,于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),按生長(zhǎng)狀況用胰酶消化后,換液傳代培養(yǎng),取4~6 代用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

2.2 馬兜鈴酸A 處理HK?2 細(xì)胞 精密稱取馬兜鈴酸A 對(duì)照品適量,DMEM 培養(yǎng)液溶解稀釋,得到40、20、10、5、1 μg/mL 對(duì)照品溶液,使用前用0.22 μm 微孔濾膜過濾。

將HK?2 細(xì)胞以5×105/mL 濃度接種于96 孔板中,每孔100 μL。實(shí)驗(yàn)分組為0(正常組)、1、5、10、20、40 μg/mL馬兜鈴酸A 組,每組10 個(gè)復(fù)孔,培養(yǎng)24 h,各孔加入CCK?8 試劑20 μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h 后,在450 nm 波長(zhǎng)下用酶標(biāo)儀測(cè)定光密度(OD),計(jì)算細(xì)胞存活率,空白孔每孔加入200 μL DMEM 培養(yǎng)液,細(xì)胞存活率=[(OD藥物組-OD空白孔)/(OD正常組?OD空白孔)]×100%。

2.3 6?姜酚處理?yè)p傷的HK?2 細(xì)胞 精密稱取6?姜酚對(duì)照品適量,用DMEM 培養(yǎng)液溶解并進(jìn)行稀釋,得到300、200、100、50 μg/mL 對(duì)照品溶液,使用前用0.22 μm 微孔濾膜過濾。

4~6 代HK?2 細(xì)胞用細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)后,以DMEM 培養(yǎng)液稀釋細(xì)胞,細(xì)胞濃度約為5×105/mL,接種于96 孔板,每孔100 μL,24 h 細(xì)胞孵育貼壁后,棄去原培養(yǎng)液。將細(xì)胞分為正常組、馬兜鈴酸A 組(10 μg/mL)、6?姜酚(50、100、200、300 μg/mL)+馬兜鈴酸A(10 μg/mL)共處理組,每組10 個(gè)復(fù)孔,培養(yǎng)48 h 后每孔加入20 μL CCK?8 試劑,培養(yǎng)箱內(nèi)繼續(xù)培養(yǎng)4 h,在450 nm 波長(zhǎng)下用酶標(biāo)儀測(cè)定光密度(OD),確定6?姜酚最佳濃度。

2.4 FDA 活細(xì)胞熒光染色觀察細(xì)胞形態(tài) 將細(xì)胞分為正常組、馬兜鈴酸A 組(10 μg/mL)、6?姜酚(200 μg/mL)+馬兜鈴酸A(10 μg/mL)組,將細(xì)胞孵育完畢后,用移液槍棄去孔中的培養(yǎng)基。5 mg FDA 溶解于1 mL 丙酮,作為FDA/丙酮母液(5 mg/mL),PBS(1 ∶ 1 000)稀釋 成10 μg/mL FDA/PBS 溶液,各孔加入200 μL 孵育10 min,棄去孔中液體,再加入PBS 緩沖液200 μL,5 min 后棄液,再加入PBS 緩沖液200 μL,倒置熒光顯微鏡于488 nm 波長(zhǎng)處激發(fā)熒光并拍照。

2.5 Hoechst 熒光染色觀察細(xì)胞凋亡 將細(xì)胞分為正常組、馬兜鈴酸A 組(10 μg/mL)、6?姜酚(200 μg/mL)+馬兜鈴酸A(10 μg/mL)組,將細(xì)胞孵育完畢后,用移液器棄去孔中的培養(yǎng)基,各孔加入細(xì)胞固定液200 μL,固定10 min后棄固定液,各孔以200 μL PBS 緩沖液清洗3 次,棄所有液體,加入200 μL Hoechst 染色液,5 min 后棄染色液,各孔以200 μL PBS 緩沖液清洗3 次,最后1 次清洗后不丟棄上清液,倒置熒光顯微鏡于350 nm 波長(zhǎng)處激發(fā)熒光并拍照。

2.6 吸光度法檢測(cè)細(xì)胞上清SOD、MDA、GSH 和GSH?Px水平 將細(xì)胞分為正常組、馬兜鈴酸A 組(10 μg/mL)、6?姜酚(200 μg/mL)+馬兜鈴酸A(10 μg/mL)組,孵育完畢后收集各孔上清液,按照SOD、MDA、GSH 和GSH?Px檢測(cè)試劑盒的說明書,分光光度計(jì)測(cè)定吸光度,計(jì)算各組酶活性。

2.7 Western blot 檢測(cè)蛋白表達(dá) 4~6 代HK?2 細(xì)胞計(jì)數(shù)后,DMEM 培養(yǎng)液稀釋至細(xì)胞濃度約為1×106/mL,接種于6 孔板,每孔1 mL,12 h 細(xì)胞孵育貼壁后棄液。設(shè)正常組、馬兜鈴酸A 組(10 μg/mL)、6?姜酚(200 μg/mL)+馬兜鈴酸A(10 μg/mL)組,每組設(shè)置6 個(gè)復(fù)孔,共3 組,各組加入含有對(duì)應(yīng)藥物的培養(yǎng)基2 mL,對(duì)照組加入DMEM 單培2 mL,培養(yǎng)48 h,細(xì)胞刮剝離細(xì)胞,收集至EP 管,裂解細(xì)胞并離心收集上清后,Bradford 法進(jìn)行蛋白定量,蛋白變性后取等量總蛋白進(jìn)行SDS?PAGE 電泳,將凝膠上的蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF 膜,封閉液封閉2 h,分離PVDF 膜,分開孵育GAPDH(1 ∶4 000)和NF?κB p65(1 ∶1 000)、p?NF?κB p65(1 ∶1 000)、caspase?3(1 ∶1 000)、cleaved?caspase?3(1 ∶1 000)抗體,4 ℃過夜后清膜3 次,兔二抗(1 ∶10 000)孵育2 h 后清洗膜3 次,凝膠成像體統(tǒng)化學(xué)發(fā)光成像。

2.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 熒光圖片數(shù)據(jù)應(yīng)用Image pro plus 軟件計(jì)數(shù),Western blot 數(shù)據(jù)應(yīng)用Quatity one 軟件統(tǒng)計(jì)灰度值,計(jì)量數(shù)據(jù)用()表示,結(jié)果用Graph Pad Prism 5.0 軟件進(jìn)行方差分析和作圖,多組間的比較采用單因素方差分析,組間比較采用t檢驗(yàn)。以P<0.05 為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

3 結(jié)果

3.1 馬兜鈴酸A 對(duì)HK?2 細(xì)胞活性影響 與正常組相比,馬兜鈴酸A(5~40 μg/mL)降低HK?2 細(xì)胞存活率(P<0.01),且呈濃度依賴性(表1);5 μg/mL 馬兜鈴酸A 組細(xì)胞存活率接近75%,20、40 μg/mL 馬兜鈴酸A 組細(xì)胞損傷太強(qiáng),死亡太多,故選定10 μg/mL 馬兜鈴酸A 來刺激細(xì)胞。

表1 不同質(zhì)量濃度馬兜鈴酸A 對(duì)HK?2 細(xì)胞存活率的影響(, n=10)

表1 不同質(zhì)量濃度馬兜鈴酸A 對(duì)HK?2 細(xì)胞存活率的影響(, n=10)

注:與正常組比較,??P<0.01。

3.2 6?姜酚對(duì)馬兜鈴酸A 誘導(dǎo)的HK?2 細(xì)胞存活率的影響 與正常組對(duì)比,10 μg/mL 馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞存活率降低(P<0.01);不同濃度6?姜酚處理后,HK?2 細(xì)胞凋存活率有不同程度的升高,在200 μg/mL 時(shí)最高,達(dá)到72%左右,故選取200 μg/mL。見表2。

表2 6?姜酚對(duì)馬兜鈴酸A 誘導(dǎo)的HK?2 細(xì)胞存活率的影響(, n=10)

表2 6?姜酚對(duì)馬兜鈴酸A 誘導(dǎo)的HK?2 細(xì)胞存活率的影響(, n=10)

注:與正常組比較,??P<0.01。

3.3 6?姜酚對(duì)馬兜鈴酸A 誘導(dǎo)的HK?2 細(xì)胞形態(tài)的影響 與正常組相比,馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞數(shù)目減少;與馬兜鈴酸A 組相比,6?姜酚+馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞數(shù)目增加。正常組細(xì)胞形態(tài)清晰,細(xì)胞體積飽滿,細(xì)胞之間聯(lián)系緊密;給藥組細(xì)胞稍固縮,細(xì)胞間分散;與馬兜鈴酸A 組相比,6?姜酚+馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞間分散度較小,飽滿細(xì)胞的數(shù)目較多。見圖1。

圖1 各組HK?2 細(xì)胞形態(tài)(×100)

3.4 6?姜酚對(duì)馬兜鈴酸A 誘導(dǎo)的HK?2 細(xì)胞凋亡的影響 正常組HK?2 細(xì)胞幾乎無凋亡,細(xì)胞核無分裂固縮形態(tài);與正常組相比,馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞凋亡率升高(P<0.01);與馬兜鈴酸A 組相比,6?姜酚+馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞凋亡率降低(P<0.01)。見表3、圖2。

表3 各組HK?2 細(xì)胞凋亡率(, n=10)

表3 各組HK?2 細(xì)胞凋亡率(, n=10)

注:與正常組比較,??P<0.01;與馬兜鈴酸A 組比較,##P<0.01。

圖2 各組HK?2 細(xì)胞凋亡(×100)

3.5 6?姜酚對(duì)馬兜鈴酸A 誘導(dǎo)的HK?2 細(xì)胞上清液中酶的影響 與正常組相比,馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞上清液中MDA、GSH?Px 水平升高(P<0.01),SOD、GSH 水平降低(P<0.01);與馬兜鈴酸A 組相比,6?姜酚+馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞上清液中MDA、GSH?Px 水平降低(P<0.01),SOD、GSH 水平升高(P<0.01)。見表4。

表4 各組HK?2 細(xì)胞上清液中酶水平(, n=10)

表4 各組HK?2 細(xì)胞上清液中酶水平(, n=10)

注:與正常組比較,??P<0.01;與馬兜鈴酸A 組比較,#P<0.05,##P<0.01。

3.6 6?姜酚對(duì)馬兜鈴酸A 誘導(dǎo)的HK?2 細(xì)胞蛋白表達(dá)的影響 與正常組相比,馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞中p?NF?κB p65、cleaved?capase?3 蛋白表達(dá)升高(P<0.01);與馬兜鈴酸A 組相比,6?姜酚+馬兜鈴酸A 組HK?2 細(xì)胞中p?NF?κB p65、Cleaved?Capase?3 蛋白表達(dá)降低(P<0.01)。見圖3。

圖3 各組HK?2 細(xì)胞中蛋白表達(dá)(×100)

4 討論

關(guān)木通曾在臨床被廣泛應(yīng)用,在大量研究人員報(bào)道了其腎毒性后被限制使用。課題組早年對(duì)關(guān)木通進(jìn)行了系統(tǒng)的綜述[8],詳細(xì)總結(jié)了關(guān)木通的化學(xué)成分、藥理學(xué)研究、臨床應(yīng)用及毒理學(xué)研究。既往研究也顯示,關(guān)木通的不同炮制品中的馬兜鈴酸A 的含有量差異顯著,且馬兜鈴酸A的水平與炮制品對(duì)大鼠腎臟功能的損傷有相關(guān)性[9?10]。

吳建紅等[11]研究了導(dǎo)赤散配伍關(guān)木通對(duì)人腎小管上皮細(xì)胞周期的影響。陳燕玲等[12]通過6?姜酚保護(hù)由丙酮醛損傷的HK?2 細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)6?姜酚具有保護(hù)HK?2 細(xì)胞減輕受損傷程度的作用。本研究結(jié)果顯示,與馬兜鈴酸A 組相比,6?姜酚+馬兜鈴酸A 組夠顯著升高HK?2 細(xì)胞的活性,改善細(xì)胞的形態(tài),減少細(xì)胞凋亡的數(shù)目,降低細(xì)胞上清液中MDA 和GSH?Px 的水平,并增強(qiáng)上清液中SOD 和GSH 水平,降低HK?2 細(xì)胞內(nèi)p?NF?κB p65 和Cleaved?Capase?3 蛋白表達(dá),表明6?姜酚可能通過提高HK?2 細(xì)胞的抗氧化應(yīng)激能力及抑制NF?κB 介導(dǎo)的炎癥通路對(duì)抗馬兜鈴酸A 引起的HK?2 細(xì)胞損傷。由此表明,在使用含馬兜鈴酸的中藥時(shí),可給予干姜或其有效成分以降低患病風(fēng)險(xiǎn),從而為關(guān)木通臨床應(yīng)用提供理論依據(jù)。

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