張玲,丁衛(wèi)英,韓基明,張江寧,楊春
山西農(nóng)業(yè)大學(xué)(山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院),山西功能食品研究院(太原 030031)
紅棗為鼠李科(Rhamnaceae)棗屬(Ziziphus Mill.)植物的果實(shí),含有豐富的營(yíng)養(yǎng)成分,也是常用的中藥材,有興奮劑、緩解劑以及鎮(zhèn)咳等的作用[1]。此外,紅棗中還有很多功能活性成分,如棗多糖、環(huán)核苷酸、三萜類物質(zhì)、黃酮等,研究表明這些成分具有抗氧化[2]、改善記憶[3]、抗癌、抗艾滋病等生理活性功能[4-5]。中國(guó)棗的品種繁多,不同品種的棗中各營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)和活性成分含量有一定差異[6]。選取5個(gè)品種的紅棗并對(duì)其糖、氨基酸成分、黃酮含量和色澤進(jìn)行了比較分析,并進(jìn)一步利用電子舌對(duì)其進(jìn)行味覺(jué)分析,可為棗資源的綜合利用以及棗功能產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)與應(yīng)用提供一定理論依據(jù)。
灰棗、木棗、壺瓶棗、贊皇棗、板棗(2017年9月采自山西太谷國(guó)家棗種質(zhì)資源圃)。
真空冷凍干燥機(jī)(上海繼譜電子科技有限公司);電子舌((Alpha)M.O.S.,法國(guó));色差儀(美國(guó)Hunterlab公司);蔗糖儀(WAY-2S)、S-433D全自動(dòng)氨基酸分析儀(德國(guó)賽卡姆公司)。
1.3.1 處理方法
將鮮棗切片后,真空冷凍干燥,干燥好的棗片磨粉,過(guò)孔徑0.150 mm篩。
1.3.2 成分測(cè)定
水分的測(cè)定[7]:常壓直接干燥法(GB/T 5009.3—2003)。
總糖的測(cè)定[8-9]:采用苯酚硫酸法測(cè)定,分別稱取0.1 g棗粉,定容到100 mL,超聲處理20 min,過(guò)濾,取濾液稀釋100倍,取2.0 mL的樣品稀釋液,按照葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線制作方法測(cè)定其吸光度,并計(jì)算樣品中總糖的含量。
還原糖的測(cè)定[10]:采用DNS法略有改動(dòng),分別將上述濾液稀釋20倍,取1.0 mL的樣品稀釋液,按照標(biāo)準(zhǔn)曲線制作方法測(cè)定吸光度,計(jì)算還原糖含量。
總黃酮含量的測(cè)定:分別稱取5個(gè)品種鮮熟棗的凍干粉各1 g,用70%的甲醇在45 ℃下超聲波提取20 min,4 800 r/min離心10 min,收集上清液并定容至50 mL,備用。對(duì)照文獻(xiàn)[11]的方法略作改動(dòng),精密稱取0.04 g蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品,移入100 mL容量瓶中,加入甲醇,超聲波振蕩溶解,并用甲醇定容,制成質(zhì)量濃度為0.4 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別吸取0,0.5,1.0,2.0,3.0和4.0 mL標(biāo)準(zhǔn)溶液于10 mL的EP管中,用70%的甲醇補(bǔ)充至5 mL,加入0.3 mL 5% NaNO2溶液,搖勻,放置6 min后加入10%的Al3(NO3)3溶液,搖勻,放置6 min后加入4 mL 1 mol/L的NaOH溶液,混勻,用70%的甲醇補(bǔ)充至10 mL,10 min后在510 nm處測(cè)定吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
樣品含量測(cè)定:準(zhǔn)確移取2.0 mL各品種棗的提取液于10 mL的EP管中,測(cè)定方法與標(biāo)準(zhǔn)品一致,結(jié)果以紅棗中含有相當(dāng)蘆丁的毫克數(shù)表示(mg/g)。
1.3.3 氨基酸分析
采用茚三酮柱后衍生法進(jìn)行測(cè)定。色譜柱為:Na+型磺酸基酸性陽(yáng)離子交換樹(shù)脂,柱溫58 ℃。流動(dòng)相,檸檬酸鈉鹽。洗脫流速0.1 mL/min。檢測(cè)波長(zhǎng)440 nm,570 nm。稱取100 mg(精確至0.1 mg)樣品于2 mL安培管中,加入10 mL 6 mol/L HCl,將其放在110℃烘箱中,水解22 h。水解結(jié)束后,冷卻,混勻,開(kāi)管,過(guò)濾,取0.5 mL濾液置于濃縮儀中,低于60 ℃,抽真空,蒸發(fā)至干,之后加少許水。重蒸1~2次。加3~5 mL樣品稀釋液,振蕩混勻,用0.22 μm濾膜過(guò)濾后,上機(jī)測(cè)定。
1.3.4 棗粉色澤的測(cè)定[12]
采用SC-80C色差儀,室溫下以標(biāo)準(zhǔn)白板作為標(biāo)準(zhǔn),反射模式下測(cè)定L、a、b值。其中:L表示亮度,L值越大,色澤越白;a>0,表示紅色程度,a<0表示綠色程度;b>0表示黃色程度,b<0表示藍(lán)色程度。色澤指數(shù)如式(1)所示。

1.3.5 電子舌分析
樣品處理:稱取1 g不同品種的棗粉,定容到50 mL容量瓶中,超聲波處理20 min后過(guò)濾,濾液倒入電子舌專用燒杯至刻度線。按照設(shè)置的序列放置在電子舌自動(dòng)進(jìn)樣器上。試驗(yàn)采用蒸餾水清洗和棗汁樣本交替檢測(cè)序列進(jìn)行檢測(cè)。
數(shù)據(jù)采用SPSS軟件處理,用單因子方差分析(One-way ANOVN,LSD)進(jìn)行差異顯著性檢驗(yàn),數(shù)據(jù)以X±SD表示。
從表1可以看出不同棗粉黃酮、總糖和還原糖含量有所差異,木棗中黃酮含量顯著高于其他品種的棗粉(p<0.05),贊皇棗粉中總糖和還原糖的含量顯著低于其他品種棗粉(p<0.05),板棗粉中總糖含量顯著高于木棗和贊皇棗粉,與灰棗和壺瓶棗粉相比差異不顯著(p>0.05)。

表1 不同棗粉水分、黃酮和糖的含量

圖1 灰棗的氨基酸分析圖譜

圖2 木棗的氨基酸分析圖譜

圖3 壺瓶棗的氨基酸分析圖譜

圖4 贊皇棗的氨基酸分析圖譜

圖5 板棗的氨基酸分析圖譜
從表2可以得知,5個(gè)品種紅棗的氨基酸中蛋氨酸含量最低,灰棗中僅0.02%,木棗中含有0.032%;其次為半胱氨酸。脯氨酸含量最高,贊皇棗中含有0.979%,而壺瓶棗中可達(dá)1.557%;其次為天冬氨酸。
從表3得知不同品種的紅棗粉其色澤有所差異,壺瓶棗粉的色澤指數(shù)顯著低于其他棗(p<0.05),贊皇棗的色澤指數(shù)顯著高于其他棗(p<0.05)。木棗、灰棗和板棗的色澤差異不顯著(p>0.05)。
圖6為5個(gè)不同品種紅棗樣品的主成分PCA分析圖,第一主成分和第二主成分的總貢獻(xiàn)率達(dá)到了97.6%,足以收集特征信息。板棗和贊皇棗分布區(qū)域較近,其他品種分別聚類在PCA圖中的不同區(qū)域,相互之間能夠較好地區(qū)分。

圖6 不同品種紅棗粉的主成分分析圖
表4是5個(gè)不同品種紅棗電子舌相似性分析結(jié)果,板棗和贊皇棗兩者之間的距離值最小,可知兩者味覺(jué)的相似性較大。木棗和板棗的距離值最大,可知兩者的相似性最小。

表4 不同品種紅棗粉相似性分析
圖7為電子舌傳感器對(duì)5個(gè)不同品種棗樣品的原始數(shù)據(jù)雷達(dá)圖。7支傳感器響應(yīng)值差別明顯,傳感器性能良好,試驗(yàn)數(shù)據(jù)可靠。從表5得知5個(gè)不同品種紅棗的酸、甜、苦、咸、鮮味的相對(duì)值。木棗的酸味和鮮味值較大;板棗的甜味和咸味值最大,酸味最小;灰棗的苦味值最大,甜味值最小;木棗和壺瓶棗的苦味值較小;贊皇棗的鮮味值最小。

圖7 傳感器味覺(jué)分析雷達(dá)圖

表5 不同品種紅棗粉的味覺(jué)分析
研究表明,5個(gè)不同品種的紅棗粉水分含量差異較小,總糖含量有所差異,贊皇棗總糖含量顯著低于其他棗(p<0.05),木棗的黃酮含量顯著高于其他棗(p<0.05)。5個(gè)棗品種氨基酸中脯氨酸含量均高于其他氨基酸,且蛋氨酸和半胱氨酸含量均最低。采用電子舌技術(shù)可以很好地區(qū)分不同品種紅棗的味覺(jué)差異,還可利用主成分分析明確地辨別不同品種之間相似性大小。