血府逐瘀湯提取過程中成分的量變規律研究*

薛夢潔，于卉娟，王璐瑤，柴欣，楊靜，王躍飛

（天津中醫藥大學中醫藥研究院，天津市中藥化學與分析重點實驗室，天津 301617）

血府逐瘀湯源自清代醫家王清任的《醫林改錯》，是“逐瘀湯”系列方中臨床應用較為廣泛的方劑，由桃仁、紅花、當歸、生地、牛膝、甘草等11味藥組成[1]。該方具有活血祛瘀、行氣止痛的功效，主要治療“胸中血府血瘀”所致諸證，多應用于心血管疾病、神經系統疾病、婦科疾病等。其組成藥味中含有黃酮、有機酸、生物堿等化合物，特別是含有大量黃酮類化合物[2]?，F代藥理研究證實，血府逐瘀湯具有抗動脈粥樣硬化，抑制心肌細胞壞死及凋亡，誘導內皮細胞增殖和血管新生，抗肺纖維化等藥理作用[3-4]。

血府逐瘀湯在防治心血管疾病方面具有顯著優勢，被開發成多種劑型，如片劑、膠囊劑、口服液等。課題組前期采用超高效液相色譜法開展了血府逐瘀湯主要劑型的12個成分差異分析，研究表明不同劑型中指標成分的差異較大，可能是由于提取工藝和制劑工藝不同引起的[5]。文獻也報道了傳統煎煮法、超臨界CO2萃取法對血府逐瘀湯主要化學成分的提取效果，超臨界CO2萃取物的有效成分提取率明顯高于煎煮法[6]。以芍藥苷為指標，系統開展不同提取時間、煎煮方法、干燥條件下血府逐瘀湯的提取效率研究，延長提取時間、減壓干燥有助于提高芍藥苷轉移率[7-8]。目前，關于不同提取條件下血府逐瘀湯水提液紫外光譜變化情況及不同極性成分提取過程中的量變情況鮮有報道。

本研究采用水提法系統研究不同提取時間和提取次數對血府逐瘀湯成分的提取效率的影響，通過紫外分光光度法和超高效液相色譜法測定不同提取液的吸收光譜和主要成分（苦杏仁苷、芍藥苷、阿魏酸、柚皮苷、新橙皮苷、異甘草素、甘草素、甘草酸、橙皮苷），揭示隨提取時間和提取次數變化血府逐瘀湯提取液吸收光譜和主要成分含量的動態變化規律，為更加有效的利用血府逐瘀湯提供數據支撐。

1 儀器與試藥

1.1 儀器 超高效液相色譜儀：Waters Acquity UPLC system（美國沃特世公司），ME204型電子天平（瑞士METTLER TOLEDO公司），Centrifuge 5430 R離心機（德國艾本德公司），VARIAN Cary 50紫外分光光度計（美國瓦里安技術有限公司）。

1.2 試藥 甲醇（色譜純，Sigma Aldrich），乙腈（色譜純，Sigma Aldrich），甲酸（色譜純，上海阿拉丁生化科技股份有限公司），超純水（實驗室自制，Milli-Q超純水），甲醇（天津市康科德科技有限公司）；柴胡、當歸、生地、赤芍、紅花、桔梗、炒桃仁、炒枳殼、甘草、川芎、牛膝均購于河北美威藥業股份有限公司，經企業提供檢驗報告均符合2015版中國藥典飲片質量要求；對照品：苦杏仁苷、芍藥苷、阿魏酸、柚皮苷、新橙皮苷、異甘草素、甘草素、甘草酸、橙皮苷均購于上海源葉生物科技有限公司，純度均大于98%。

2 水提液的制備

取當歸 12．0 g，生地 12．0 g，柴胡 4．0 g，赤芍8．0 g，紅花 12．0 g，桔梗 6．0 g，炒桃仁 15．0 g，炒枳殼8．0 g，甘草 8．0 g，川芎 6．0 g，牛膝 12．0 g，精密稱定，置于2 L圓底燒瓶中，加入8倍量水；分別提取0．5、1、1．5、2、2．5 h，過濾，得不同提取時間血府逐瘀湯的水提液；分別提取 1、2、3 次，每次提取 2 h，過濾，得不同提取次數血府逐瘀湯的水提液。

不同提取時間及次數的樣品各平行制備3份，分別量取水提液體積。

3 實驗方法

3.1 紫外分光光度法

3.1.1 檢測條件 檢測波長：200～500 nm。

3.1.2 供試品溶液的制備方法 精密移取水提液1 mL，與1 mL甲醇混勻，12 000 r/min離心10 min，離心半徑8．9 cm，吸取上清液1 mL，置于10 mL容量瓶中，用50%甲醇溶液定容至刻度，搖勻；精密移取1 mL，置于10 mL容量瓶中，用50%甲醇溶液定容至刻度，搖勻，即得。

3.2 超高效液相色譜法

3.2.1 色譜條件 色譜柱為ACQUITY UPLC BEH Shield RP18（2．1 mm×100 mm，1．7 μm，美國Waters公司）；進樣量：2 μL；流速：0．3 mL/min；柱溫：50 ℃；流動相：0．1%甲酸水（A）-乙腈（B），梯度洗脫程序如下：0～3 min，90%～17%B；3～13 min，17%～35%B；13～17 min，35%～43%B；17～19 min，43%～44%B；19～20 min，44%～50%B；20～23 min，50%～90%B；23～26 min，90%B；26～28 min，90%～10%B；28～32 min，10%B。

采用二極管陣列檢測器進行全波長掃描，同時采用波長切換方法以最大吸收波長分別檢測待測化合物，波長切換條件如下：0～2．34 min，254 nm；2．35～3．89 min，211 nm；3．90～5．24 min，230 nm；5．25～6．47 min，323 nm；6．48 ～7．39 min，283 nm；7．40 ～16．74 min，283 nm；16．75～17．99 min，250 nm；18．00～20．00 min，254 nm[5]。

3.2.2對照品溶液的配制 稱取苦杏仁苷、芍藥苷、阿魏酸、柚皮苷、新橙皮苷、異甘草素、甘草素、甘草酸、橙皮苷對照品，加入甲醇與二甲基亞砜（DMSO）（1∶1），制成濃度分別為 5．01、5．02、1．01、0．995、0．98、1．05、1．03、1．07、0．96 mg/mL 的對照品儲備液；取適量對照品儲備液混合，制得混合對照品溶液，濃度分別為苦杏仁苷 0．351 mg/mL、芍藥苷 0．100 mg/mL、阿魏酸 0．010 mg/mL、柚皮苷 0．289 mg/mL、新橙皮苷 0．289 mg/mL、異甘草素 0．012 mg/mL、甘草素0．014mg/mL、甘草酸 0．171mg/mL、橙皮苷 0．038mg/mL。

3.2.3 供試品溶液的制備 精密移取水提液1 mL，置于2 mL容量瓶中，加入甲醇定容至刻度，搖勻，12 000 r/min 離心 10 min，離心半徑 8．9 cm，取上清液，0．45 μm 濾膜過濾，即得。

4 結果與分析

4.1 紫外分光光度法研究不同提取時間和次數下血府逐瘀湯中化學成分量變規律 參照“2水提液的制備”“3．1紫外分光光度法”方法制備水提液樣品并檢測水提液的吸收曲線，不同提取時間和提取次數的血府逐瘀湯吸收曲線如圖1A、1C所示。為了消除血府逐瘀湯投料飲片質量、水提液體積差異對測定結果的影響，將最大吸收波長（278±1）nm處的測定結果A值按公式（1）進行處理。

上式中，A′代表水提液供試品溶液最大吸收波長處校正吸光度值，A代表水提液供試品溶液最大吸收波長處吸光度值，M代表血府逐瘀湯投料飲片的質量，V代表水提液的體積。

以血府逐瘀湯提取時間2．5 h水提液供試品溶液的最大吸收波長（278±1）nm處校正吸光度值為參照，以 A′t/A′2．5（t為提取時間）為縱坐標，提取時間為橫坐標，繪制不同提取時間血府逐瘀湯水提液供試品溶液最大吸收波長（278±1）nm處校正吸光度值變化趨勢圖，如圖1B所示。以血府逐瘀湯提取3次的水提液供試品溶液的最大吸收波長（278±1）nm 處校正吸光度值為參照，以 A′n/A′3（n 為提取次數）為縱坐標，提取次數為橫坐標，繪制不同提取次數血府逐瘀湯水提液供試品溶液最大吸收波長（278±1）nm處校正吸光度值變化趨勢圖，如圖1D所示。

如圖 1B 所示，提取時間為 0．5～2．5 h 時，水提液供試品溶液最大吸收波長（278±1）nm處校正吸光度隨提取時間延長不斷增加并趨于穩定，提示隨著提取時間的延長水提液中化合物濃度趨于飽和。如圖1D所示，提取次數為1～3次時，水提液供試品溶液最大吸收波長（278±1）nm處校正吸光度隨次數增加而增大，但增長的趨勢逐步減緩，提示隨著提取次數的增多藥渣留存的化合物逐步減少。

如圖1A和C所示，水提液在200～400 nm范圍內有較強的紫外吸收，最大吸收波長（278±1）nm；黃酮化合物基本母核為2-苯基色原酮，都具有C6-C3-C6的結構，因此，多數黃酮類化合物存在兩個特征吸收，即300～400 nm區間由桂皮?；到y電子躍遷引起的帶Ⅰ和240～285 nm區間由苯甲?；到y電子躍遷引起的帶Ⅱ，分子中取代基的類型、位置和數量影響吸收帶的峰位、強度和峰形[9-10]。本實驗中，血府逐瘀湯水提液供試品溶液存在300～400 nm區間和240～285 nm區間的強紫外吸收，結合黃酮類化合物紫外吸收光譜特征及文獻報道，說明血府逐瘀湯中含大量黃酮類化合物。

圖1 不同提取時間和提取次數血府逐瘀湯供試品溶液吸收曲線及最大吸收波長（278±1）nm處校正吸光度變化趨勢圖（n=3）Fig.1 Absorption curve and trend of corrected absorbance at maximum absorption wavelength(278±1)nm for sample solution of Xuefu Zhuyu Decoction obtained by the different extraction time and extraction frequency（n=3）

4.2 超高效液相色譜法研究不同提取時間和次數下血府逐瘀湯中化學成分量變規律 參照“2水提液的制備”“3．2超高效液相色譜法”方法制備水提液樣品并檢測水提液中的苦杏仁苷、芍藥苷、阿魏酸、柚皮苷、新橙皮苷、異甘草素、甘草素、甘草酸、橙皮苷，血府逐瘀湯水提液供試品溶液超高效液相色譜圖如圖2所示。

如圖2所示，血府逐瘀湯水提液檢測到苦杏仁苷、芍藥苷、阿魏酸、柚皮苷、新橙皮苷、甘草酸及少量橙皮苷，未檢測到甘草素、異甘草素。以“3．2．2”項下配制的混合標準品溶液為對照溶液，計算不同提取時間、提取次數血府逐瘀湯水提液中苦杏仁苷、芍藥苷、阿魏酸、柚皮苷、新橙皮苷、甘草酸的含量（為了便于比較，水提液中化合物的含量均以飲片計），根據公式（2）、（3）計算。

圖2 血府逐瘀湯供試品溶液（A）和混合對照品溶液（B）的超高效液相色譜圖（n=3）Fig.2 UPLC chromatograms of the sample solution of Xuefu Zhuyu Decoction(A)and mixed standard solution(B)（n=3）

上式中，A標代表對照品的峰面積，A樣代表供試品溶液中相應化合物的峰面積，C標代表對照品濃度，C樣代表供試品溶液中相應化合物的濃度，V代表供試品溶液的體積，V′代表水提液的體積，M代表血府逐瘀湯投料飲片的質量，W代表從單位質量飲片中提取的相應化合物的量。

如圖 3 A 所示，提取時間為 0．5～2．5 h，隨提取時間延長，飲片中被提出的化合物量逐步增加，其中，苦杏仁苷、柚皮苷、新橙皮苷等糖苷類成分增加明顯；阿魏酸基本保持穩定，至提取時間為2 h時各化合物提出的量趨于穩定。如圖3B所示，提取次數為1～3次時，隨著提取次數增加，飲片中被提出的化合物量越多，但增長的趨勢逐步減緩，而阿魏酸基本保持穩定，該研究結果與紫外分光光度法研究結果一致。

5 結論

本研究采用紫外分光光度法和超高效液相色譜法研究不同提取時間和不同提取次數血府逐瘀湯水提液中成分的動態變化規律，發現隨著提取時間的延長和提取次數的增加，飲片中被提出的化合物量逐漸增加，說明提取時間和次數的增加有助于飲片中成分的提取，在實際應用中應綜合考慮藥效、生產效率、成本等多方面因素確定提取次數和時間。

圖3 不同提取時間（A）和提取次數（B）血府逐瘀湯提取的指標成分趨勢圖（n=3）Fig.3 Trend of the index components extracted in XuefuZhuyu Decoction obtained by the different extraction time(A)and extraction frequency(B)（n=3）