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柚皮油對心肺復蘇后大鼠心肌壞死性凋亡的影響

2021-01-27 15:06:44趙高陽謝露王文艷鄒鑫森田鑫悅陳蒙華
天津醫藥 2021年1期
關鍵詞:劑量

趙高陽,謝露,王文艷,鄒鑫森,田鑫悅,陳蒙華△

心搏驟停(cardiac arrest,CA)是指心臟泵血功能機械活動的突然停止,可造成全身血液循環中斷、呼吸停止和意識喪失。心肺復蘇后恢復自主循環(return of spontaneous circulation,ROSC)同時可引起嚴重的心肌缺血/再灌注損傷(myocardial ischemia/reperfusion injury,MI/RI)[1],其發生機制主要有氧化應激、細胞凋亡等[2]。壞死性凋亡(necroptosis)是2005年由Degterev等[3]報道的一種新的細胞死亡方式。壞死性凋亡時細胞發生水腫,細胞膜破裂以及細胞器腫脹、崩解,是一種可調控的程序性細胞死亡。最近研究發現壞死性凋亡廣泛參與心血管等多個系統疾病的發生,在組織器官缺血再灌注損傷中發揮重要作用[4]。柚皮油(pomelo peel oil,PPO)是從柚子皮中提取的揮發性油,研究證實其富含D-苧烯、黃酮類等多種化合物[5],具有抗氧化[6-7]、抗自由基[8]等生物活性。本研究通過建立大鼠心臟驟停/心肺復蘇(CA/CPR)模型,初步探討PPO能否通過抑制壞死性凋亡減輕心肺復蘇后大鼠的MI/RI。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 柚皮油的提取沙田柚購于廣西容縣,將50 g外果皮洗凈并剪成約5 mm×5 mm大小碎片,與250 mL蒸餾水混合后放入蒸餾瓶中,加熱約2 h,待冷卻后分離PPO,置于4℃冰箱保存備用。實驗前將所需體積的PPO溶解于10%甘油中緩慢進行靜脈注射。

1.1.2 實驗動物成年健康雄性SPF級SD大鼠50只,體質量250~300 g,購于廣西醫科大學實驗動物中心(許可證編號:SCXK桂2014-0002)。實驗設計及操作通過廣西醫科大學倫理委員會批準,動物處置方法均符合動物倫理學標準。

1.1.3 主要儀器與試劑小型動物呼吸機RWD407購于深圳市瑞沃德生命科技有限公司。Odyssey成像系統購于美國LI-COR公司。乳酸(LA)含量檢測試劑盒購于北京索萊寶科技公司。BCA蛋白質測定試劑盒購于博士德生物(AR0146)。一抗:兔抗大鼠腫瘤壞死因子(TNF)-α抗體(WL01896,萬類生物,中國)、兔抗大鼠磷酸化混合譜系激酶結構域蛋白(p-MLKL)抗體(AF7420,Affinity,中國)、兔抗大鼠GAPDH抗體(5174T,CST,美國)。山羊抗兔IgG熒光標記二抗(5366P,CST,美國)。通用SP試劑盒(鼠/兔鏈霉素卵白素-生物素法監測系統,SP-9000,中杉金橋,中國),其中包括:內源性過氧化物酶阻斷劑、封閉用正常山羊血清工作液、生物素標記山羊抗鼠/兔IgG聚合物、辣根酶標記鏈霉素卵白素工作液。

1.2 方法

1.2.1 動物分組及模型制備按隨機數字表法將大鼠分為假手術組(Sham組)、模型組(CA組)、甘油組(GLY組)、低劑量柚皮油組(低劑量組)和高劑量柚皮油組(高劑量組),每組10只。根據Chen等[9]的方法制備大鼠CA/CPR模型。所有實驗大鼠在術前禁食12 h,自由飲水。經大鼠右側腹腔內注射10%水合氯醛(3 mg/kg)進行麻醉,予以術區備皮,消毒,氣管插管,分離并暴露左側股動靜脈,心電監測心律。將2根充滿5 IU/mL肝素鈉鹽水的20號導管分別置入大鼠左側股動脈和股靜脈中用于監測血壓和給藥。采用經食管交流電刺激誘導大鼠心臟發生心室顫動(VF),建立CA/CPR模型。CA成功判定標準及ROSC的恢復標準參照Chen等[9]的研究。Sham組僅進行機械通氣,不誘導CA/CPR,并經股靜脈注射與藥物組等體積的生理鹽水;其余4組均進行機械通氣并誘導CA/CPR。恢復ROSC后30 min內,經股靜脈緩慢注射PPO,低劑量組20 mg/kg,高劑量組40 mg/kg,CA組注射等體積生理鹽水,GLY組注射等體積10%甘油。監測1 h后放回籠中繼續飼養。觀察24 h后,對所有大鼠進行取材、采集血樣并分離血清200μL于-80℃低溫冰箱備用,分離心肌組織進行HE染色、免疫組化染色及蛋白免疫印跡檢測。

1.2.2 HE染色病理觀察取ROSC后24 h心肌組織,經10%福爾馬林液固定后,梯度乙醇脫水,石蠟包埋后制作3μm厚度的切片,對切片進行脫蠟水化,常規HE染色,封片,光學顯微鏡下觀察病理變化。

1.2.3 血清乳酸檢測取ROSC后24 h各組大鼠血清,使用血清乳酸檢測試劑盒檢測乳酸含量,操作方法按照試劑盒說明書進行。

1.2.4 免疫組化染色檢測TNF-α及p-MLKL的表達取石蠟切片,常規脫蠟脫水,高壓修復抗原,滴加血清封閉液;加TNF-α(1∶2 000)、p-MLKL(1∶2 000)一抗稀釋液抗體,4℃孵育過夜;PBS沖洗后,加適量生物素標記的山羊抗鼠/兔IgG聚合物,37℃孵育15 min,PBS沖洗3次(2.5 min/次);加辣根過氧化物酶標記鏈霉素卵白素工作液室溫孵育10 min,PBS沖洗3次(2.5 min/次);DAB顯色,蘇木素染色,鹽酸乙醇分化,水洗返藍,晾干,中性樹膠封片,鏡檢。光學顯微鏡下拍照,每片隨機讀取3個視野,陽性反應為棕黃色或黃色顆粒,陽性表達率為每視野內呈現陽性反應面積占每視野面積的比率,采用Image J軟件定量分析,結果以3個視野陽性表達率的平均值表示。

1.2.5 蛋白免疫印跡檢測TNF-α及p-MLKL的表達取-80℃超低溫冰箱保存的心肌組織,勻漿,離心取上清液,通過BCA蛋白質測定試劑盒進行總蛋白質濃度測定,然后與適量上樣緩沖液混合,100℃煮沸10 min,冷卻后進行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳,并轉移到PVDF膜(0.22μm孔徑),然后用5%脫脂牛奶封閉60 min。用含有0.1%Tween 20的Tris緩沖液(TBST)洗滌5min×3次后,與TNF-α(1∶500)、p-MLKL(1∶1 000)和GAPDH(1∶1 000)抗體孵育過夜,TBST洗滌后,再與山羊抗兔IgG熒光二抗(1∶20 000)進一步室溫孵育1 h。通過3次TBST洗滌后,使用Odyssey成像系統分析蛋白條帶的灰度值。各條帶的灰度值用Image J軟件進行定量分析,以GAPDH為內參校正,量化值以目的蛋白/GAPDH表示。

1.3 統計學方法采用SPSS 17.0軟件進行統計分析,符合正態分布的計量資料以均數±標準差(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析(ANOVA),組間多重比較行LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 HE染色結果Sham組心肌組織細胞排列整齊,胞質及胞核清晰,細胞膜完整,細胞間隙適中;CA組及GLY組心肌纖維排列明顯紊亂,部分區域細胞壞死明顯,細胞明顯腫脹,部分核固縮,間質水腫;低劑量組心肌組織排列較紊亂,細胞水腫及細胞破壞程度稍減輕。高劑量組上述損傷明顯減輕,見圖1。

2.2 血清乳酸水平Sham組、CA組、GLY組、低劑量組、高劑量組血清乳酸水平(mmol/L)分別為0.91±0.10、1.50±0.11、1.45±0.11、1.21±0.08、1.07±0.09,5組間比較差異有統計學意義(F=37.692,P<0.05)。與Sham組相比,CA組、GLY組顯著升高(P<0.05);CA組與GLY組差異無統計學意義(P>0.05);低劑量組、高劑量組較CA組、GLY組降低,高劑量組較低劑量組降低(均P<0.05)。

2.3 心肌組織中TNF-α及p-MLKL免疫組化染色結果與Sham組比較,CA和GLY組心肌組織中TNF-α及p-MLKL的陽性表達率升高(P<0.05);低劑量組及高劑量組心肌組織中TNF-α及p-MLKL陽性表達率較CA組下降(P<0.05),且高劑量組心肌組織中TNF-α及p-MLKL陽性表達率較低劑量組更低(P<0.05),CA組與GLY組間比較差異無統計學意義(P>0.05),見圖2、3,表1。

Tab.1 The positive expression rates and relative protein expressions of TNF-αand p-MLKL in myocardium of rats in five groups表1 5組大鼠心肌TNF-α和p-MLKL免疫組化陽性表達率及蛋白相對表達量

2.4 心肌組織中TNF-α及p-MLKL蛋白表達蛋白免疫印跡結果與Sham組比較,CA和GLY組心肌組織中TNF-α及p-MLKL蛋白的表達明顯升高(P<0.05);低劑量及高劑量組心肌組織中TNF-α及p-MLKL蛋白表達較CA組明顯下降(P<0.05),且高劑量組心肌組織中TNF-α及p-MLKL蛋白表達較低劑量組更低(P<0.05)。見圖4、表1。

Fig.4 The expressions of TNF-α與p-MLKL at 24 h of ROSC in five groups圖4 ROSC后24 h 5組大鼠心肌TNF-α與p-MLKL蛋白的表達

3 討論

臨床上,心臟驟停患者在經歷心肺復蘇后,組織器官存在缺血再灌注損傷,其中MI/RI一定程度上會影響患者的心臟功能及其預后。本研究采用食管電刺激法誘導大鼠心室顫動,建立CA/CPR模型,模擬臨床CA/CPR所致的MI/RI,結果表明,CA組和GLY組HE染色可見明顯心肌組織損傷,血清乳酸水平顯著升高;接受PPO治療后的大鼠,心肌病理損傷程度明顯減輕,血乳酸水平明顯下降,提示PPO能夠改善心肺復蘇后心肌灌注和減輕MI/RI。壞死性凋亡是一種不同于自噬和凋亡的細胞死亡過程,其特征是同時具備壞死的形態學特征和凋亡的規律性調控機制[3]。多個信號分子以及信號通路參與體內壞死性凋亡的調控,其中TNF-α誘導發生的分子途徑是壞死性凋亡最重要的一條途徑,而MI/RI的TNF-α水平明顯升高[10]。混合譜系激酶結構域蛋白(MLKL)是壞死性凋亡終末效應器,p-MLKL破壞細胞結構使細胞膜破裂,最終導致細胞死亡[11]。目前已有研究證實壞死性凋亡參與動脈粥樣硬化、MI/RI、心肌梗死等心血管疾病的病理生理過程[12-13],抑制壞死性凋亡對心肌具有保護作用[14]。本研究結果顯示ROSC后大鼠心肌壞死性凋亡關鍵蛋白TNF-α和p-MLKL表達均上調,表明壞死性凋亡參與了心肺復蘇后MI/RI。Chtourou等[15]研究發現對高膽固醇飲食大鼠給予柚皮素可抑制壞死性凋亡,從而保護大鼠心臟。本研究發現心肺復蘇后大鼠給予PPO后也可顯著抑制壞死性凋亡關鍵蛋白TNF-α和p-MLKL的表達,減輕心肌病理損傷,改善心肌灌注損傷,提示PPO可能通過抑制壞死性凋亡緩解心肺復蘇后MI/RI。

PPO含有黃酮類物質等成分,具有抗氧化、抗自由基等生物活性[8]。心肺復蘇后缺血再灌注損傷引起氧自由基(過氧化氫等)的生成增多,過氧化氫可以激活p38促有絲分裂蛋白激酶(p38MAPK),從而啟動TNF-α基因的瀑布反應,導致缺血再灌注心肌TNF-α的產生增多[10]。依據本研究結果,推測PPO可能通過抗氧化,抑制TNF-α表達及其介導的壞死性凋亡來減輕心肺復蘇后心肌損傷。

綜上所述,PPO可抑制壞死性凋亡,減輕心肺復蘇后MI/RI。本研究尚有不足之處,首先PPO為混合物,需進一步分離純化PPO并鑒定其具體有效成分。其次,需要研究PPO減輕MI/RI的量效關系以確定其最佳劑量,為進一步的機制探討提供參考依據。

Fig.1 The comparison of hematoxylin-eosin staining results in five groups(×400)圖1 5組大鼠心肌HE染色結果(×400)

Fig.2 Immunohistochemical staining of TNF-αin myocardium of rats in five groups(×400)圖2 5組大鼠心肌TNF-α免疫組化染色圖(×400)

Fig.3 Immunohistochemical staining of p-MLKL in myocardium of rats in five groups(×400)圖3 5組大鼠心肌p-MLKL免疫組化染色圖(×400)

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