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五子衍宗丸預防神經管畸形的機制研究?

2021-02-12 00:49:56楊嬋娟樊慧杰李艷榮王新亮趙志偉馬存根
中國中醫基礎醫學雜志 2021年12期
關鍵詞:氧化應激小鼠檢測

楊嬋娟, 樊慧杰△, 柴 智, 李艷榮, 王新亮, 趙志偉, 彭 濤, 馬存根,3△

(1.山西中醫藥大學神經生物學研究中心, 山西 晉中 030619;2.山西省中西醫結合醫院, 太原 030013;3.山西大同大學腦科學研究所, 山西 大同 037009)

神經管畸形(neural tube defects,NTDs)由神經管閉合不全所引起,以無腦畸形、腦膨出和顱脊柱裂為主要癥狀,部分可表現為無眼畸形、下肢癱瘓及二便失禁,是最嚴重的新生兒畸形[1]。我國是世界上已知的NTDs高發國,發病率是全球平均發病率的10倍[2,3],有些地區甚至高達5.57‰,這給患者家庭和社會帶來了無盡的痛苦和沉重的負擔。葉酸(folic acid,FA)是目前國際上預防NTDs的唯一用藥,將NTDs的發病率降低了60%~70%[4,5],但這并不能阻止所有NTDs的發生。氧化應激(oxidative stress,OS)是指體內氧化與抗氧化作用失衡,導致體內氧化程度超出抗氧化物的清除速度,從而產生大量氧化中間產物,并引起組織和細胞損傷的一種反應[6]。OS參與各種神經變性疾病的發生發展,研究表明,幾乎所有的NTDs都存在不同程度的氧化應激損傷[7,8]。

中醫學認為,腎藏先天之精,為生命之本源,腎中精氣具有促進生殖繁衍和促進生長發育的功能[9]。腎虛精虧是NTDs發生的基本病機。中醫經典補腎方劑五子衍宗丸(wuzi yanzong pill,WYP)有補腎益精填髓的功效,可有效預防NTDs的發生。課題組研究發現,WYP可以降低NTDs發病率,且4.2 g/kg預先給藥效果最佳[10]。前期采用超高液相色譜串聯質譜法在WYP中未檢測出FA成分,因此WYP對NTDs的預防作用與FA無關。在此基礎上,本課題采用全反式維甲酸(all-trans-retinoic acid,atRA)建立NTDs模型[11],運用分子生物學技術研究并比較WYP與FA對NTDs的預防作用,探討WYP預防NTDs可能的抗氧化應激機制。本研究已通過山西中醫藥大學實驗動物倫理委員會審查,倫理學批準號2019DW020。

1 材料

1.1 動物

SPF級清潔級未經產C57BL/6小鼠36只,8~10周齡,其中雌性24只,雄性12只,平均體質量18 g,購自北京維通利華實驗動物技術有限公司,實驗動物許可證號SCXK(京)2016-0006。飼養于無病原菌動物房適應性1周,繁殖期飼料喂養,動物自由進食和飲水,溫度控制在(22±2)℃,相對濕度40%~60%,自然光照,通風良好。

1.2 藥物

葉酸片(北京斯利安藥業有限公司,批號S181112,每片0.4 mg)。將藥片置于清潔的研缽中,用研杵磨成均勻的粉末,加入生理鹽水使其充分溶解,配制成濃度2.44 μg/mL的FA藥液,4 ℃冰箱避光儲存。

五子衍宗丸以枸杞子、菟絲子(炒)、覆盆子、五味子(蒸)和鹽車前子為原料,煉蜜為丸,由北京同仁堂股份有限公司同仁堂制藥廠生產(批號18035041)。將藥丸用中藥粉碎機打成超細粉末,過篩,加生理鹽水使其溶解均勻,配制成濃度為0.168 g/mL的WYP藥液,4 ℃冰箱儲存備用,臨用前取出回溫。

1.3 試劑與儀器

全反式維甲酸(all-trans-retinoic acid,atRA)(美國Sigma公司,批號WXBC4500V);還原型谷胱甘肽(glutathione,GSH)試劑盒(批號20190530)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)試劑盒(批號20190813)、谷胱甘肽過氧化物酶(glutathione peroxidase,GSH-Px)試劑盒(批號20190712),南京建成生物工程研究所;Western blot相關抗體:過氧化氫酶(catalase,CAT)(美國Cell Signaling Technology公司,批號14097);HRP標記的山羊抗兔二抗(愛必信(上海)生物科技有限公司,批號AS005);BCA蛋白定量檢測試劑盒(上海生工生物技術有限公司,批號F814DA0001);RIPA蛋白裂解液(批號011918100315)、PMSF(批號061918180704),碧云天生物技術有限公司。

EZ4D型體視顯微鏡(德國Leica公司);5840型高速冷凍離心機(德國Eppendorf公司);C-1150型酶標儀(德國Leica公司);PowerPacTM型電泳儀(美國Bio-Rad公司);HOOD-Ⅱ型凝膠成像分析儀(美國Bio-Rad公司)。

2 方法

2.1 NTDs模型制備

下午6時,將小鼠按雌性∶雄性=2∶1合籠交配,次日晨8時逐一檢查陰道栓,將觀察到有黃白色陰道分泌物的雌鼠標記并分籠喂養,當天中午12時記作孕0.5 d,未發現陰栓的雌鼠繼續合籠,5 d為1個周期。按照隨機數字表法將孕鼠分為正常組、模型組、FA組和WYP組4組各6只。實驗組于孕7.5 d(受孕第7天中午12時)給予一次性腹腔注射atRA混懸液0.2 mL,正常組給予相應量的橄欖油。atRA混懸液(7.5 mg/kg)用無水乙醇和橄欖油按8∶92比例配制,現配現用。

2.2 給藥

從檢出陰道栓第0.5天起進行藥物干預,持續至第11.5天。模型組和正常組給予生理鹽水灌胃,FA組給予FA藥液(2.44 μg/mL),WYP組給予WYP藥液(0.168 g/mL),灌胃體積25 μL·g-1·d-1。

2.3 取材

藥物干預至第11.5天脫頸處死孕鼠,用針頭固定于板上。剖腹取出子宮段,于冰上剝離子宮及胎膜,將胚胎置于4 ℃生理鹽水中。體視顯微鏡下觀察胚胎,拍照、鑒定畸形并計算畸形率。正常孕鼠子宮未見充血,吸收胎較罕見,鏡下觀察小鼠胚胎腦泡發育完整,有胎心搏動;NTDs孕鼠子宮充血,其胚胎可出現顱脊柱裂畸形、無眼畸形、單眼畸形、面部畸形等,吸收胎多見,鏡下觀察其發育多不完整,且較正常胚胎發育遲緩,其中顱脊柱裂畸形胚胎未見到完整的腦泡。本文將肉眼及鏡下觀察到的除正常胚胎外的所有胚胎記作NTDs胚胎,將4組收集到的胚胎分別裝入EP管,于-80 ℃冰箱中備用。

2.4 檢測指標及方法

2.4.1 微量酶標法檢測胚胎組織GSH含量 將液氮加入并浸滿研缽,先取出1個組的胚胎組織將其迅速轉移至研缽內,使用研杵在液氮中把組織研磨成粉末狀,其余各組制法相同。將各組所得粉末一分為二,取其中一半稱重,按照重量(g)∶體積(mL)=1∶9的比例加入4 ℃生理鹽水,冰上研磨至均勻,高速冷凍離心機(4 ℃,2500 r/min)離心10 min,取上清液制成10%組織勻漿液,一部分檢測組織濃度,其余分裝備用。取以上勻漿液按照GSH試劑盒說明書步驟規范操作,酶標儀檢測405 nm處各孔的吸光度值,根據測得的濃度計算組織中GSH的含量。

2.4.2 黃嘌呤氧化酶法檢測胚胎組織SOD活力 取2.4.1中10%組織勻漿液,依據SOD試劑盒說明書步驟規范操作,酶標儀檢測450 nm處各孔的吸光度值,計算胚胎組織中SOD抑制率及活力。

2.4.3 比色法檢測胚胎組織GSH-Px活力 取2.4.1中10%組織勻漿液,依據GSH-Px試劑盒說明書步驟規范操作,酶標儀檢測532 nm處各孔的吸光度值,計算胚胎組織中GSH-Px抑制率及活力。

2.4.4 Western blot檢測胚胎組織中CAT的蛋白表達 取2.4.1中各組剩余的一半胚胎組織粉末,加RIPA、PMSF在冰上裂解提取組織蛋白,BCA法測定蛋白濃度。各組按4∶1比例加Loading buffer制備蛋白上樣緩沖液樣品,用10% SDS-PAGE凝膠電泳分離蛋白,濕轉至PVDF膜(恒流200 mA,2 h),5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,TBST洗滌10 min×4次。加入抗CAT抗體(1∶1000,TBST稀釋),4 ℃冰箱過夜。洗膜并加入HRP耦聯的山羊抗兔二抗(1∶5000,TBST稀釋),室溫孵育2 h。膜洗凈,滴加ECL化學發光液(A∶B=1∶1),采用Bio-Rad凝膠成像分析儀檢測條帶,Image J 1.4軟件進行灰度值比較并進行統計分析。

2.5 統計學方法

3 結果

3.1 小鼠胚胎形態學觀察

圖1示,胚胎正常發育良好,頭顱飽滿,神經管完全閉合,外形完整,色澤正常(見圖1A);神經管畸形胚胎以顱脊柱裂為主,少數可見無眼畸形、單眼畸形和面部畸形。顱脊柱神經管未閉合伴發育遲緩,形態各異,有瘀血狀外觀表現(見圖1B);無眼畸形胚胎:胚胎未見眼泡及眼珠,發育遲緩,呈現瘀血狀外觀(見圖1C)。

注:A.正常胚胎;B.顱脊柱裂畸形胚胎;C.無眼畸形胚胎圖1 小鼠胚胎形態學觀察比較

3.2 小鼠NTDs發病率統計

圖2示,與正常組比較,模型組NTDs發病率顯著升高(P<0.01);與模型組比較,FA組、WYP組NTDs發病率均顯著降低(P<0.05,P<0.01);與FA組比較,WYP組NTDs發病率明顯降低(P<0.05)。結果表明,WYP與FA都可以降低NTDs發病率,且WYP的預防效果優于FA。

注:*P<0.05,**P<0.01圖2 各組小鼠NTDs發病率統計比較(n=6)

3.3 WYP對NTDs小鼠胚胎組織GSH含量,SOD和GSH-Px活力的影響

圖3、4示,與正常組比較,模型組GSH含量SOD、GSH-Px活力顯著降低(P<0.01);與模型組比較,FA組、WYP組GSH含量及SOD、GSH-Px活力均顯著升高(P<0.05,P<0.01);與FA組比較,WYP組GSH含量及SOD、GSH-Px活力明顯升高(P<0.05)。結果表明,WYP可能增加NTDs小鼠體內抗氧化酶的含量。

注:*P<0.05,**P<0.01圖3 各組小鼠胚胎組織中GSH含量差異比較(n=6)

注:*P<0.05,**P<0.01圖4 各組小鼠胚胎組織中SOD、GSH-Px活力差異比較(n=6)

3.4 WYP對NTDs小鼠胚胎組織CAT蛋白的影響

圖5示,Western blot結果顯示,與正常組比較,模型組CAT蛋白表達顯著降低(P<0.01);與模型組比較,FA組、WYP組CAT表達顯著升高(P<0.05,P<0.01);與FA組比較,WYP組CAT表達明顯升高(P<0.05)。結果表明,WYP組的CAT蛋白表達高于FA組。

注:與模型組比較:*P<0.05,**P<0.01圖5 各組小鼠胚胎組織中CAT蛋白表達差異比較(n=6)

4 討論

NTDs是由胚胎發育早期神經管閉合障礙所引起的,主要影響腦和脊髓的嚴重先天性畸形并有多種臨床表型,其中以無腦畸形和顱脊柱裂最具代表性[12]。氧化應激指機體內活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)生成過多,或機體抗氧化能力不足,導致神經元、髓鞘等被嚴重破壞,是引起NTDs的一個重要因素[13]。中樞神經系統傳遞各種信號,其耗能多、耗氧大、ROS產生多且易積累。神經元細胞富含不飽和脂肪酸,且自身GSH含量低,易與自由基發生反應,發生過氧化損傷。有專家研究證明[14],在諸多神經系統病變中均有ROS含量增加的現象。研究指出,使用抗氧化應激藥物可以減少自由基的生成,進而減緩機體內神經元的變性和死亡[13]。因此清除過多氧化中間產物,修復氧化應激所引起的損傷,可以有效地預防NTDs的發生[15]。

NTDs的基本病機是腎虛精虧,WYP是中醫補腎益精經典方,源于明代《攝生眾妙方》,由枸杞子、菟絲子(炒)、覆盆子、五味子(蒸)和鹽車前子組成,5味藥均為植物種子。枸杞子、菟絲子(炒)補腎陽、益精血,共為君藥;五味子(蒸)、覆盆子補腎固澀共為臣藥;鹽車前子瀉有形之邪,利尿固精[16]。現代藥理學研究表明,WYP具有抗氧化、抗炎細胞浸潤、抗腫瘤及增強免疫力等作用[17]。枸杞子可以抗脂質過氧化,降低組織中丙二醛含量;五味子可以提高SOD和GSH活性,減輕活性氧自由基損害,維持細胞膜在氧化損傷狀態下的穩定性;車前子具有抗氧化和清除氧自由基作用[18-20]。有研究表明,WYP維持氧化與抗氧化平衡,通過促進精子增殖治療男性不育癥[21]。

GSH和SOD是細胞內重要的抗氧化劑,能有效清除過氧化物,調節機體氧自由基代謝,發揮抗氧化作用[22,23]。CAT和GSH-Px是過氧化物分解酶,能將有毒的過氧化物催化成無毒的羥基化合物,使細胞膜結構保持完整,功能不受損害[24]。本研究結果顯示,WYP和FA都可以降低小鼠NTDs的發生率,增加GSH含量,提高SOD和GSH-Px的活力,上調CAT表達水平,且WYP的預防效果明顯優于 FA。

綜上所述,WYP能顯著降低小鼠NTDs的發病率,有效預防NTDs的發生,其作用機制可能是WYP激活小鼠體內抗氧化功能,減弱脂質過氧化程度,清除過氧化產物,阻止自由基的入侵,從而對抗氧化應激。本課題為WYP預防NTDs運用于臨床提供了實驗依據。

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