miR-145-5p靶向TPM3通過ERK信號通路抑制甲狀腺癌TPC-1細胞侵襲和轉(zhuǎn)移

蘭天，劉巍夢，鄒陽，邱平

·論著·

miR-145-5p靶向TPM3通過ERK信號通路抑制甲狀腺癌TPC-1細胞侵襲和轉(zhuǎn)移

蘭天，劉巍夢，鄒陽，邱平

610500 成都醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院內(nèi)分泌代謝科（蘭天、邱平）；617023 四川，攀枝花市第六人民醫(yī)院婦科（劉巍夢）；400700 重慶市第九人民醫(yī)院內(nèi)科（鄒陽）

探討 miR-145-5p 對甲狀腺癌細胞侵襲和轉(zhuǎn)移的影響。將miR-145-5p mimic 質(zhì)粒、mimic-NC 質(zhì)粒、TPM3 質(zhì)粒分別或聯(lián)合轉(zhuǎn)入甲狀腺癌細胞，RT-qPCR 檢測 miR-145-5p 與 TPM3 mRNA 的表達，雙熒光素酶報告檢測靶向關(guān)系，Transwell 法檢測細胞侵襲能力，劃痕實驗檢測細胞遷移能力，Western blot 檢測 ERK1/2 和 p-ERK1/2 的表達；采用裸鼠右后肢腹側(cè)皮下注射構(gòu)建甲狀腺癌移植瘤模型，測定移植瘤體積和重量，免疫組化檢測 Vimentin 的表達，Western blot 檢測 TPM3、ERK1/2 和 p-ERK1/2 的表達。miR-145-5p 在甲狀腺癌細胞中低表達，miR-145-5p 靶向抑制 TPM3 表達；miR-145-5p 過表達能夠明顯降低甲狀腺癌細胞的侵襲數(shù)目和傷口愈合率，并下調(diào) p-ERK 表達，而 TPM3 過表達和 ERK 通路激活劑均可以逆轉(zhuǎn)這些現(xiàn)象；miR-145-5p 過表達會使體內(nèi)移植瘤的重量和體積明顯減少，并使移植瘤的 Vimentin 陽性細胞比率明顯減少，TPM3 和 p-ERK1/2 蛋白表達明顯下調(diào)。miR-145-5p 靶向 TPM3 通過 ERK 信號通路抑制甲狀腺癌細胞侵襲和轉(zhuǎn)移。

miR-145-5p； 甲狀腺癌； 原肌球蛋白 3； ERK； 侵襲； 遷移

甲狀腺癌是最常見的內(nèi)分泌腫瘤，在女性腫瘤發(fā)病率中高居第五位，發(fā)病率呈逐年上升趨勢，全世界每年近 4 萬人死于甲狀腺癌[1]。雖然大多數(shù)患者預(yù)后良好，10 年生存率約為 90%，但有相當比例的患者在 10 年內(nèi)出現(xiàn)局部復發(fā)或遠處轉(zhuǎn)移[2]。因此，在甲狀腺癌的發(fā)生、發(fā)展過程中尋找新的分子靶點是迫切需要的。miR-145 被認為是一種腫瘤抑制因子，在多種癌癥細胞中均表現(xiàn)為下調(diào)，如結(jié)腸癌、乳腺癌、前列腺癌等，已有研究表明其在甲狀腺癌細胞中也表現(xiàn)為下調(diào)[3]。原肌球蛋白（TPMs）是一系列存在于骨骼肌、平滑肌和一些非肌肉組織中的肌動蛋白結(jié)合蛋白[4]。在骨骼肌中，TPMs 介導肌動蛋白對鈣離子的反應(yīng)，并參與細胞骨架微絲的穩(wěn)定[5]。已有研究表明，非肌肉性 TPMs 可能參與了癌癥的發(fā)展。TPM1 作為一種腫瘤抑制因子，在抑制腫瘤發(fā)展中發(fā)揮作用[6]。而 TPM3是一種重要的致癌基因，已被報道參與造血腫瘤、黑色素瘤、膠質(zhì)瘤等腫瘤的遷移和侵襲[7-8]。本文主要探討 miR-145-5p 對甲狀腺癌細胞侵襲和轉(zhuǎn)移的影響。

1 材料與方法

1.1 主要材料

DMEM 培養(yǎng)基購自上海善然生物科技有限公司；胎牛血清購自素爾生物科技有限公司；miR-145-5p mimic 質(zhì)粒、mimic-NC 質(zhì)粒、TPM3 質(zhì)粒及各引物均由上?；蛑扑幱邢薰驹O(shè)計并合成；Lipofectamine2000轉(zhuǎn)染試劑購自上海恪敏生物科技有限公司；QIAzol 裂解試劑購自北京鴻躍創(chuàng)新科技有限公司；cDNA 逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購自上海捷瑞生物工程有限公司；雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒購自北京原平皓生物技術(shù)有限公司；SYBR-Green PCR 試劑盒購自賽默飛世爾科技公司；RIPA 裂解緩沖液購自南京海克爾生物科技有限公司；BCA 試劑盒購自上海易色醫(yī)療科技有限公司；TPM3 抗體和 p-ERK1/2 抗體購自上海鈺博生物科技有限公司；ERK1/2 抗體和 Vimentin 抗體購自碧云天生物科技有限公司；12-O-14 烷酰醇-13-乙酸酯（TPA）購自上海偉寰生物科技有限公司；裸鼠購自四川夏派森醫(yī)藥科技有限公司，許可證：SYXK（川）2017-203。

1.2 方法

1.2.1 細胞及其培養(yǎng) 正常甲狀腺細胞系 Nthy-ori3-1和 BC-PAP、K1、TPC-1人甲狀腺癌細胞系均購自 ATCC，于含 10% 胎牛血清的 DMEM 培養(yǎng)基中培養(yǎng)，在 37 ℃、5% CO2孵育箱保存。

1.2.2 分組及處理 將 TPC-1 細胞分為對照組、mimic-NC 組、miR-145-5p mimic 組、TPM3 組、TPM3 + miR-145-5p mimic 組，研究 miR-145-5p 對甲狀腺癌細胞的影響。mimic-NC 組、miR-145-5p mimic 組、TPM3 組、TPM3 + miR-145-5p mimic 組細胞在對數(shù)期時，接種于 6 孔板（1 × 106個/孔）。當達到 80% 融合，根據(jù) Lipofectamine2000說明書將 100 nmol/L miR-145-5p mimic 質(zhì)粒、mimic-NC 質(zhì)粒、TPM3 質(zhì)粒分別或聯(lián)合轉(zhuǎn)染進入 TPC-1 細胞。將 TPC-1 細胞分為對照組、miR-145-5p mimic 組、TPA 組、miR-145-5p mimic + TPA 組，研究 miR-145-5p 對甲狀腺癌細胞的作用通路。miR-145-5p mimic 組：根據(jù) Lipofectamine2000說明書將 miR-145-5p mimic 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至TPC-1 細胞處理 6 h；TPA 組：50 μmol/L TPA 處理細胞 6 h；miR-145-5p mimic + TPA 組：根據(jù) Lipofectamine2000說明書將 miR-145-5p mimic 質(zhì)粒用 50 μmol/L TPA 處理細胞 6 h。

1.2.3 RT-qPCR 檢測 miR-145-5p 與 TPM3 mRNA 的表達 采用 QIAzol 裂解試劑提取總RNA，采用 cDNA 逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成 cDNA。RT-qPCR 采用 SYBR-Green PCR 試劑盒說明書操作進行。GAPDH 作為 mRNA 的內(nèi)參，使用 2-ΔΔct法計算。miR-145-5p 的上游引物序列：5' GTCCAG TTTTCCCAGGAAT 3'；miR-145-5p 的下游引物序列：5' TGGTGTCGTGGAGTCG 3'。TPM3 的上游引物序列：5' GCGGGAAGTGGAGGGAGAAA 3'；TPM3 的下游引物序列：5' TAGACTCTGCCAGCT CGGCG 3'。GAPDH 的上游引物序列：5' ACAACTTT GGTATCGTGGAAGG 3'；GAPDH 的下游引物序列：5' GCCATCACGCCACAGTTTC 3'。

1.2.4 雙熒光素酶報告檢測靶向關(guān)系 收集生長至對數(shù)期的 TPC-1 細胞，鋪于 96 孔板，每孔約4 × 103個細胞，24 h 后，分別轉(zhuǎn)染mimic-NC + TPM3 WT、mimic-NC + TPM3 MUT、miR-145-5pmimic + TPM3 WT、miR-145-5p mimic + TPM3 MUT，根據(jù)雙熒光素酶報告基因試劑盒說明進行測定，用螢火蟲熒光素酶活性和腎熒光素酶活性比值表示熒光素酶的相對活性。

1.2.5 Transwell 法檢測細胞侵襲能力 培養(yǎng) 48 h后，將細胞消化成單細胞懸液（5 × 104個/ml）。在 Transwell 小室上室用 Matrigel 包被，下室加入含有 10% 胎牛血清的 DMEM 細胞培養(yǎng)液 1 ml。孵育 24 h 后，除去膜上層細胞，將通過膜侵襲的細胞固定染色，在顯微鏡下觀察。侵入細胞數(shù)表示為每視野的平均細胞數(shù)。

1.2.6 劃痕實驗檢測細胞遷移能力 將各組 TPC-1 細胞消化鋪滿單層后用小號槍頭垂直劃痕，加入無血清培養(yǎng)基，在5% CO2、37 ℃恒溫的培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h 后，分別在顯微鏡下拍照，用 Image J 軟件分析。

1.2.7 Western blot 檢測 TPM3、ERK1/2 和 p-ERK1/2 的表達 用 RIPA 裂解液提取各組 TPC-1 細胞總蛋白，并用 BCA 試劑盒檢測總蛋白濃度，然后經(jīng) SDS-PAGE 分離蛋白后，用半干轉(zhuǎn)膜儀轉(zhuǎn)移蛋白質(zhì)至 PVDF 膜，并用脫脂牛奶室溫封閉蛋白 2 h，再加入一抗（TPM3：1:400；ERK1/2：1:1000；p-ERK1/2：1:200）在 4 ℃封閉過夜，接著加入對應(yīng)二抗室溫封閉 1 h，最后滴 ECL 曝光。

1.2.8 移植瘤實驗 將裸鼠隨機分為 TPC-1 組和 miR-145-5p mimic 組，每組 10 只，雌雄各半。在各組裸鼠右后肢腹側(cè)皮下分別注射 0.2 ml TPC-1 細胞和轉(zhuǎn)染 miR-145-5p mimic 的 TPC-1 細胞懸液。然后，繼續(xù)在無特定病原（SPF）條件下正常飲食飼養(yǎng)，觀察裸鼠皮下成瘤情況，測定移植瘤體積。第 30 天頸椎脫位法處死裸鼠，完整取出皮下移植瘤，電子天平稱重，Western blot 檢測 TPM3、ERK1/2 和 p-ERK1/2 的表達。

1.2.9 免疫組化檢測 Vimentin的表達 經(jīng)常規(guī) 10% 中性甲醛溶液固定，石蠟包埋切片，脫蠟水化過氧化物酶阻斷內(nèi)源性過氧化物酶活性，非免疫性動物血清阻斷非特異性反應(yīng)。再分別加入鼠抗人 Vimentin抗體（1:100），4 ℃過夜。滴加生物素標記二抗，DAB 顯色，蒸餾水沖洗，蘇木素復染，梯度酒精脫水，二甲苯透明。最后，封片觀察統(tǒng)計。免疫組化陽性細胞其細胞核有棕色顆粒沉著，顯微鏡下隨機選取 5 個視野，每個視野陽性率 = 陽性細胞數(shù)/總細胞數(shù) × 100%。

1.3 統(tǒng)計學處理

2 結(jié)果

2.1 miR-145-5p 在甲狀腺癌細胞中下調(diào)

RT-qPCR 檢測正常甲狀腺細胞系 Nthy-ori3-1 和 BC-PAP、K1、TPC-1 等 3 個甲狀腺癌細胞中 miR-145-5p 的表達發(fā)現(xiàn)，與正常甲狀腺細胞系 Nthy-ori3-1 相比，BC-PAP、K1、TPC-1 等 3 個甲狀腺癌細胞中miR-145-5p mRNA 的表達明顯下調(diào)（< 0.01），且以TPC-1 下調(diào)最顯著（圖 1），故選擇甲狀腺癌細胞系 TPC-1 作為后續(xù)實驗研究對象。

2.2 miR-145-5p 靶向抑制 TPM3 表達

根據(jù) TargetScan 數(shù)據(jù)庫的預(yù)測，TPM3 3'UTR 區(qū)與 miR-145-5p 存在結(jié)合位點（圖2A）。為了進一步驗證 miR-145-5p 直接作用于 TPM3，進行了熒光素酶報告基因?qū)嶒?，結(jié)果如圖 2B 所示。miR-145-5p 高表達明顯抑制了含有野生型 TPM3 質(zhì)粒的熒光素酶活性，但對突變型 TPM3 質(zhì)粒的熒光素酶活性無影響（< 0.01）。為了進一步證實轉(zhuǎn)染效果，RT-qPCR 檢測各組細胞 TPM3 mRNA 的表達，結(jié)果如圖 2C 所示，與 control 組細胞相比，mimic-NC 組細胞中 TPM3 mRNA 的表達無明顯變化，miR-145-5p mimic 組細胞中TPM3 mRNA 表達明顯下調(diào)（< 0.01），TPM3 組細胞中 TPM3 mRNA 表達明顯上調(diào)（< 0.01）；與 miR-145-5p mimic 組相比，TPM3 + miR-145-5p mimic 組細胞中 TPM3 mRNA 表達明顯上調(diào)（< 0.01）。因此，miR-145-5p 直接靶向抑制 TPM3。

miR-145-5p mRNA 表達水平Expression of miR-145-5p mRNA1.2 1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0 Nthy-ori3-1 BC-PAP K1 TPC-1

Figure 1 Expression of miR-145-5p in each group of cells was detected by RT-qPCR (**< 0.01 vs Nthy-ori3-1)

A

Figure 2 miR-145-5p targeted inhibition of TPM3 (A: The binding site of the TPM3 3'UTR region to miR-145-5p is predicted by the TargetScan database; B: miR-145-5p and TPM3 targeting relationship was detected by a dual luciferase reporter gene assay,**< 0.01 compared with the mimic-NC group; C: Expression of TPM3 mRNA in each group of cells was detected by RT-qPCR,**< 0.01 compared with the control group,##< 0.01 compared with the miR-145-5p mimic group)

2.3 miR-145-5p 靶向 TPM3 抑制甲狀腺癌細胞侵襲和遷移

Transwell 法檢測各組細胞侵襲能力，結(jié)果如圖 3A 所示。與 control 組細胞相比，mimic-NC 組每視野侵襲數(shù)目無明顯變化，miR-145-5p mimic 組每視野侵襲數(shù)目明顯降低（< 0.01），TPM3 組每視野侵襲數(shù)目增高（< 0.01）；與 miR-145-5p mimic 組相比，TPM3 + miR-145-5p mimic 組每視野侵襲數(shù)目明顯增高（< 0.01）。因此，miR-145-5p 靶向TPM3 抑制甲狀腺癌細胞侵襲。

劃痕實驗檢測細胞遷移能力，結(jié)果如圖 3B 所示，與 control 組細胞相比，mimic-NC 組細胞傷口愈合率無明顯變化，miR-145-5p mimic 組細胞傷口愈合率明顯降低（< 0.01），TPM3 組細胞傷口愈合率明顯增高（< 0.01）；與 miR-145-5p mimic 組相比，TPM3 + miR-145-5p mimic 組細胞傷口愈合率明顯增高（< 0.01）。因此，miR-145-5p 靶向 TPM3 抑制甲狀腺癌細胞遷移。

2.4 miR-145-5p 靶向 TPM3 抑制 ERK 信號通路

Western blot 檢測各組細胞 ERK 和磷酸化 ERK 蛋白表達量，結(jié)果如圖 4A 所示。與 control 組相比，mimic-NC 組細胞中 ERK 和磷酸化 ERK 蛋白表達均無明顯變化，miR-145-5p mimic 組細胞中 ERK 蛋白表達無明顯變化、磷酸化 ERK 蛋白表達明顯下調(diào)（< 0.01），TPM3 組細胞中 ERK 蛋白表達無明顯變化、磷酸化 ERK 蛋白表達明顯上調(diào)（< 0.01）；與 miR-145-5p mimic 組相比，TPM3 + miR-145-5p mimic 組細胞中 ERK 蛋白表達無明顯變化、磷酸化 ERK 蛋白表達明顯上調(diào)（< 0.01）。因此，miR-145-5p 靶向 TPM3 對甲狀腺癌的作用可能與抑制 ERK 信號通路有關(guān)。

添加 ERK 信號通路激活劑TPA驗證該預(yù)測。通過 Transwell 法檢測各組細胞侵襲能力，結(jié)果見圖4B。與 control 組相比，miR-145-5p mimic組每視野 TPC-1 細胞侵襲數(shù)目明顯減少（< 0.01），TPA 組每視野 TPC-1 細胞侵襲數(shù)目明顯增多（< 0.01）；與 miR-145-5p mimic 組相比，TPM3 + miR-145-5p mimic 組每視野 TPC-1 細胞侵襲數(shù)目明顯增多（< 0.01），說明 miR-145-5p 通過 ERK 信號通路抑制甲狀腺癌細胞侵襲。通過劃痕實驗檢測細胞遷移能力，結(jié)果如圖 4C 所示。與 control 組相比，miR-145-5p mimic 組傷口愈合率明顯降低（< 0.01），TPA 組傷口愈合率明顯升高（< 0.01）；與 miR-145-5p mimic 組相比，TPM3 + miR-145-5p mimic 組傷口愈合率明顯升高（< 0.01）。因此，確證miR-145-5p 通過 ERK 信號通路抑制甲狀腺癌細胞遷移。

2.5 miR-145-5p 抑制甲狀腺癌細胞移植瘤發(fā)生和發(fā)展

為了進一步研究 miR-145-5p 對甲狀腺癌發(fā)生和發(fā)展影響，進行了甲狀腺癌細胞移植瘤實驗。如圖 5A、B、C 所示，與 control 組相比，miR-145-5p mimic 組大鼠體內(nèi)移植瘤的重量和體積明顯減少（< 0.01）。如圖 5D 所示，與 control 組相比，miR-145-5p mimic 組大鼠體內(nèi)移植瘤 Vimentin 的陽性細胞比率明顯減少（< 0.01）。如圖 5E 所示，與 control 組相比，miR-145-5p mimic 組大鼠體內(nèi)移植瘤 TPM3、p-ERK 蛋白表達明顯下調(diào)（< 0.01）。因此，miR-145-5p 抑制甲狀腺癌細胞移植瘤發(fā)生和發(fā)展。

3 討論

癌癥的發(fā)生和發(fā)展是一個極其復雜的生物學過程，涉及數(shù)以百萬計的分子和生物學途徑，其中 miRNAs 近年來受到廣泛關(guān)注。已有眾多證據(jù)表明 miRNAs與前列腺癌、宮頸癌、肝癌和肺癌等多種癌癥的發(fā)生和發(fā)展密切相關(guān)[9-12]。過表達 miR-145 能夠抑制結(jié)腸癌、食管鱗狀細胞癌、肺癌等癌癥的發(fā)生[13-15]。本文通過研究發(fā)現(xiàn)，與正常甲狀腺細胞相比，miR-145 在甲狀腺癌細胞中表達明顯下調(diào)。因此，過表達 miR-145 有望抑制甲狀腺癌的發(fā)生和發(fā)展。本研究通過 TargetScan 數(shù)據(jù)庫預(yù)測到 TPM3 3'UTR 區(qū)與 miR-145-5p 存在結(jié)合位點，且通過熒光素酶報告基因?qū)嶒灠l(fā)現(xiàn) miR-145-5p 直接靶向 TPM3。已有研究表明，在高轉(zhuǎn)移性小鼠黑色素瘤細胞系中，TPM3 的表達水平高于低轉(zhuǎn)移性小鼠黑色素瘤細胞[8]；TPM3 敲除能顯著抑制膠質(zhì)瘤細胞的侵襲和遷移潛能[16]。本文研究發(fā)現(xiàn)，過表達 miR-145-5p 能夠靶向抑制 TPM3 的表達，從而抑制甲狀腺癌的侵襲和遷移。

甲狀腺癌患者治療存在的最大問題就是局部復發(fā)或遠處轉(zhuǎn)移，因此，抑制甲狀腺癌細胞的侵襲和遷移能力對于甲狀腺癌的治療至關(guān)重要。Liu 等[17]發(fā)現(xiàn)，miR-145-5p 通過靶向信號素 3A 抑制脂肪源性干細胞的成骨分化。Ding 等[18]報道 miR-145 通過調(diào)節(jié) TGF-β1 表達抑制乳腺癌細胞的增殖和遷移。Sathyanarayanan 等[19]發(fā)現(xiàn) miR-145 通過靶向人宮頸癌細胞 SIP1，調(diào)節(jié)上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化，抑制增殖、遷移和侵襲，因此，miR-145 有望抑制甲狀腺癌細胞的侵襲和遷移能力。本文通過 Transwell 法和劃痕實驗發(fā)現(xiàn)，miR-145-5p 靶向 TPM3 抑制甲狀腺癌細胞侵襲和遷移，這與其他癌癥細胞的結(jié)果相一致。

Control mimic-NC miR-145-5p mimic TPM3 TPM3 + miR-145-5p mimic

侵襲細胞數(shù)目Number of invading cells500 400 300 200 100 0 Control mimic-NC miR-145-5p mimic TPM3 TPM3 +miR-145-5p mimicA

Control mimic-NC miR-145-5p mimic TPM3 TPM3 + miR-145-5p mimic 0 h 24 h

劃痕閉合率（%）Scratch closure rate (%)100 80 60 40 20 0 Control mimic-NC miR-145-5p mimic TPM3 TPM3 +miR-145-5p mimicB

Figure 3 Effect of miR-145-5p targeting TPM3 on invasion and migration of thyroid cancer cell (A: Invasive ability of each group was detected by Transwell method,**< 0.01 compared with the control group,##< 0.01 compared with the miR-145-5p mimic group; B: Cell migration ability was detected by scratch test,**< 0.01 compared with the control group,##< 0.01 compared with the miR-145-5p mimic group)

p-ERK1/2 ERK1/2 GAPDH蛋白表達水平Expressed of protein0.6 0.4 0.2 0 Controlmimic-NCmiR-145-5p mimicTPM3TPM3 + miR-145-5p mimic Control mimic-NC miR-145-5p mimic TPM3 TPM3 +miR-145-5p mimic ERK1/2 p-ERK1/2 A

Figure 4 miR-145-5p inhibits ERK signaling pathway by targeting TPM3 (A: Expression levels of ERK and p-ERK protein in each group were detected by Western blot,**compared with control group,< 0.01,##compared with miR-145-5p mimic group,< 0.01; B: Invasive ability of each group was detected by Transwell method,**< 0.01 compared with the control group,##< 0.01 compared with the miR-145-5p mimic group; C: Cell migration ability was detected by scratch test,**< 0.01 compared with the control group,##< 0.01 compared with the miR-145-5p mimic group)

移植瘤體積（mm3）Transplanted tumor volume (mm3)800 600 400 200 0 Control miR-145-5p mimic A 3 6 9 12 15 18 21 24 27 30 時間（h）Time (h)B

Figure 5 Effect of miR-145-5p on thyroid carcinoma xenografts (A: Picture of transplanted tumor; B: Volume of transplanted tumor,**< 0.01 compared with the control group; C: Weight of the transplanted tumor,**< 0.01 compared with the control group; D: Expression of Vimentin+in transplanted tumors was detected by immunohistochemistry,**< 0.01 compared with the control group; E: Expression of TPM3, ERK and p-ERK protein in the transplanted tumor was detected by Western blot,**< 0.01 compared with the control group)

本研究發(fā)現(xiàn)，miR-145-5p 靶向 TPM3 抑制磷酸化 ERK 的表達，說明 miR-145-5p 靶向TPM3 對甲狀腺癌的侵襲和遷移能力的抑制作用可能與抑制 ERK 信號通路有關(guān)。為了驗證這一猜測，添加 ERK 信號通路激活劑 TPA 后通過 Transwell 法和劃痕實驗檢測細胞侵襲和遷移能力。結(jié)果發(fā)現(xiàn)，miR-145-5p 通過 ERK 信號通路抑制甲狀腺癌細胞侵襲和遷移。ERK 信號通路是自然界生物體內(nèi)普遍存在的信號轉(zhuǎn)導系統(tǒng)之一，參與細胞的增殖、分化及凋亡等不同生理功能。已有研究表明激活ERK 信號通路途徑有助于甲狀腺癌細胞的侵襲和遷移[20]，抑制 ERK 信號通路途徑能夠抑制甲狀腺癌細胞的侵襲和遷移[21]，這與本文研究結(jié)果相統(tǒng)一。

通過體外實驗可知，miR-145-5p 過表達靶向 TPM3 通過 ERK 信號通路抑制甲狀腺癌細胞的侵襲和遷移。生物機體內(nèi)環(huán)境是極其復雜多變的，為了更好地了解 miR-145-5p 對甲狀腺癌細胞的影響，本文進行了裸鼠體內(nèi)移植瘤實驗。通過研究發(fā)現(xiàn)，miR-145-5p 過表達會使體內(nèi)移植瘤的重量和體積明顯減少，并使移植瘤的 Vimentin 陽性細胞比率明顯減少，TPM3、ERK、p-ERK蛋白表達明顯下調(diào)，說明 miR-145-5p 過表達抑制甲狀腺癌移植瘤的侵襲和遷移，并抑制 ERK 信號通路的激活。

綜上所述，miR-145 在甲狀腺癌細胞中低表達，高表達 miR-145 靶向抑制 TPM3 來抑制甲狀腺癌細胞的侵襲和遷移，這種作用是通過 ERK 信號通路來實現(xiàn)的。未來將進一步挖掘 miR-145 在甲狀腺癌的診斷和預(yù)后中的價值。

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miR-145-5p inhibits thyroid cancer TPC-1 cell invasion and metastasis via ERK signaling pathway by targeting TPM3

LAN Tian, LIU Wei-meng, ZOU Yang, QIU Ping

Department of Endocrinology and Metabolism, The First Affiliated Hospital of Chengdu Medical College, Chengdu 610500, China (LAN Tian, QIU Ping); Department of Gynecology, The Sixth People's Hospital of Panzhihua, Panzhihua 617023, China (LIU Wei-meng); Internal Medicine, The Ninth People's Hospital of Chongqing, Chongqing 400700, China(ZOU Yang)

This work aims to study the effect of miR-145-5p on invasion and metastasis of thyroid cancer cells.miR-145-5p mimic plasmid, mimic-NC plasmid, and TPM3 plasmid were separately or jointly transfected into thyroid cancer cells by Lipofectamine2000. Expression of miR-145-5p and TPM3 mRNA was detected by RT-qPCR. The targeted relationship was detected by dual luciferase reporting assay. Cell invasion ability was detected by Transwell method. Cell migration ability was measured by a scratch test. Expression of ERK1/2, and p-ERK1/2 was detected by Western blot. A thyroid cancer xenograft model was constructed by subcutaneous injection of the right hind limb of nude mice. The volume and weight of the transplanted tumor were determined. Expression of vimentin was detected by immunohistochemistry. Expression of TPM3, ERK1/2 and p-ERK1/2 was detected by Western blot.Expression of miR-145-5p is decreased in thyroid cancer cells, and miR-145-5p was found to target and inhibit TPM3 expression. Overexpression of miR-145-5p significantly reduced the number of invasion and wound healing of thyroid cancer cells, and down-regulated p-ERK expression, whereas both TPM3 overexpression and ERK pathway activators reversed the miR-145-5p-induced effects (< 0.01). Overexpression of miR-145-5p significantly reduced the weight and volume of transplanted tumors, and significantly reduced the ratio of Vimentin-positive cells in transplanted tumors and down-regulated TPM3 and p-ERK1/2 protein expression (< 0.01).miR-145-5p inhibits thyroid cancer cell invasion and metastasis via ERK signaling pathway by targeting TPM3.

miR-145-5p; thyroid cancer; TPM3; ERK; invasion; migration

QIU Ping, Email: wxqiuping@163.com

四川省教育廳自然類課題（18Z065）

邱平，Email：wxqiuping@163.com

2020-09-10

10.3969/j.issn.1673-713X.2021.01.005