槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞的增殖、凋亡以及TGF?β蛋白的影響

王婷，李海艦，曾伍姣，李莉娟

（廣東省第二人民醫院檢驗科，廣東廣州510317）

近年來，隨著世界經濟的高速發展，全球工業化規模超前，而環境污染卻急劇加重，與之息息相關的肺癌發病率和死亡率均呈逐年上升趨勢。目前，其已成為嚴重影響公眾健康的世界性問題。肺癌作為臨床上最常見的呼吸系統疾病，其發病率和死亡率居于全球之首，素有腫瘤界最強殺手之稱[1?2]。按組織病理學分類，肺癌分為小細胞肺癌和非小細胞肺癌兩類。其中非小細胞肺癌最為常見，其占肺癌類別的80%以上[3]。中國人口基數龐大，而肺癌患者基數也龐大。據統計顯示[4]肺癌的發病率和死亡率已位居癌癥首位。而手術切除、放化療、免疫治療以及分子靶向治療等是目前治療非小細胞肺癌的主要手段[5]，但其臨床治療效果不甚理想，流行病學研究顯示肺癌患者5年生存率僅為16%[6]。此外，其耐藥、高復發率以及高轉移等問題也逐漸出現，因此尋找高效、低毒的抗肺癌新藥仍是目前極為急迫的工作之一。

槐果堿(Sophocarpine,SC)是一種具有多種藥理活性的生物堿，其抗腫瘤、抗凋亡以及保護心肌等多種藥理活性已被發現[7?9]。近年來，已有研究報道[10]槐果堿對結腸癌、肝癌、食管癌、白血病等癌性疾病均具有明顯的抑制作用。TGF?β信號通路與細胞的正常增殖、分化、表型轉化等生物過程密切相關，而研究發現細胞發生異常后，如癌細胞、TGF?β信號通路的表達存在異常[11]。Zhang等[12]研究發現槐果堿可下調肝癌細胞TGF?β1蛋白的表達。目前，槐果堿對非小細胞肺癌的作用尚未見相關的研究報道，本研究擬通過研究槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞的增殖、凋亡和TGF?β蛋白的影響，初步闡明其抗癌作用的機制，為槐果堿開發為一種抗非小細胞肺癌新藥提供實驗依據。

1 實驗材料

1.1 藥物與試劑

槐果堿購買于西安林禾生物技術有限公司，質量分數＞98%；非小細胞肺癌A549細胞系購買于中科院上海細胞庫；RPMI?1640細胞培養液、PBS緩沖液、胎牛血清、DMSO、青霉素、鏈霉素、0.25%胰酶消化液、CCK?8購買于友康生物科技股份有限公司；BCA蛋白定量試劑盒購買于南京建成生物有限公司；TGF?β1抗體、HRP標記二抗購于英國Abcam公司；Annexin V?FITC/PI凋亡檢測試劑盒購買于上海美季生物技術有限公司。

1.2 主要儀器

LCI?3?165 CO2細胞培養箱（上海龍躍股份有限公司）；T960 PCR儀（力康生物醫療科技控股有限公司）；RDY?ZY2 Western blot電泳設備[中科瑞泰(北京)生物科技有限公司]；M200 PRO酶標儀(奧地利Tecan公司)；CyFlow?miniPOC流式細胞儀(德國Sysmex Pretec公司)。

2 方法

2.1 非小細胞肺癌A549細胞培養

將非小細胞肺癌A549細胞系于液氮罐中取出，37℃水浴融化，倒入細胞培養皿中，加入5 mL RP?MI?1640培養基，其中含有10%(φ)胎牛血清和100 U/mL的青霉素/鏈霉素雙抗，隨后移置于5%(φ)CO237℃的細胞培養箱內常規培養。隔天更換新鮮培養液，待細胞鋪滿培養皿80%以上時，按照1∶3比例傳代。

2.2 非小細胞肺癌A549細胞增殖抑制率檢測

將非小細胞肺癌A549細胞稀釋為1×105個，每孔加入100μL，即接種濃度為1×104個/孔，并培養24 h后，用不同濃度槐果堿處理（終濃度分別為20 μmol/L、40μmol/L、80μmol/L和160μmol/L），其中以0μmol/L為空白對照組，每組重復6孔。繼續細胞培養箱中分別培養24、48、72 h，小心加入含10%CCK8溶劑100μL，孵育3 h，最后于波長為450 nm處檢測細胞吸光度A值，增殖抑制率=［1-A(λ)藥物處理組/A(λ)空白對照組］×100%

2.3 非小細胞肺癌A549細胞凋亡率檢測

將梯度濃度槐果堿處理48 h后非小細胞肺癌A549細胞，分別加入PI和Annexin V/FITC各5μL，輕輕混勻并4℃避光孵育30 min，加入200μL Binding Buffer，流式細胞儀測定非小細胞肺癌A549細胞凋亡情況。

2.4 非小細胞肺癌A549細胞Bax和Bcl?2表達水平檢測

將梯度濃度槐果堿處理48 h后的非小細胞肺癌A549細胞，按Bax和Bcl?2試劑盒說明書進行操作，逐步提取細胞總RNA（Trizol法），合成cDNA，最終使用PCR儀設備檢測非小細胞肺癌A549細胞中Bax和Bcl?2基因的表達水平。Bcl?2引物序列:F?5′?GACTGAGTACCTGAACCGGCATC?3′，R?5′?CT?GAGCAGCGTCTTCAGAGACA?3′；Bax引 物 序 列:R?5′?CAAACATGTCAGCTGCCACAC?3′，F?5′?CGA ATTGGCGATGAACTGGA?3′;G A P D H引 物 序 列:R?5′?ATGGTGGTGAAGACGCCAGTA?3′，F?5′?GCA?CAGTCAAGGCTGAGAATG?3′。

2.5 非小細胞肺癌A549細胞TGF?β1蛋白表達水平檢測

收集藥物作用48 h后的非小細胞肺癌A549細胞，加入RIPA裂解液20μL，檢測總蛋白濃度。隨后每孔加入50μg的蛋白量，進行SDS?PAGE電泳分離，使用硝酸纖維素膜進行轉模，5%脫脂奶粉封閉，隨后加入一抗（1∶2 000）于4℃冰箱孵育24 h。PBS緩沖液洗膜5次，加入用HRP標記的二抗室溫孵育3 h，PBS緩沖液洗膜5次，最后ECL試劑進行化學發光和顯影。使用Image J軟件對電泳圖像進行灰度值分析，并以GAPDH作為參照。而TGF?β1蛋白的相對表達水平=TGF?β1條帶灰度值/GAPDH條帶灰度值。

2.6 槐果堿與TGF?β1分子對接

登錄Pubchem數據庫（https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/）并下載槐果堿的3D化學結構。登錄Pro?teinDatabase（https://www.rcsb.org/）數 據 庫 并 下 載TGF?β1 3D蛋白晶體結構，并利用Auto Docking軟件對蛋白晶體結構行進行蛋白修飾（加氫、加電子）和分子對接，最后使用Pymol對配體最優構象圖像進行繪圖分析。

2.7 統計學方法

本實驗數據使用SPSS 17.0進行統計學分析，計量資料用表示，多組之間比較采用單因素方差分析，P＜0.05為差異有統計學意義。

3 結果

3.1 槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞增殖抑制率的影響

由圖1可見，與空白對照組比較，槐果堿給藥組的增殖抑制率顯著升高（P＜0.05），隨著給藥時間的延長，各給藥組的增殖抑制率顯著升高（P＜0.05）。

3.2 槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞凋亡的影響

從圖2可見，槐果堿給藥組比空白對照組的細胞凋亡率顯著升高(P＜0.01)，其中，空白對照組的凋亡抑制率為(0.68±0.03)%，而槐果堿給藥組（20、40、80、160μmol/L）的細胞凋亡率分別為(9.55±0.73)%、(9.89±1.14)%、(14.16±2.42)%和(19.34±3.57)%，呈劑量依賴性。

3.3 槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞Bcl?2和Bax mRNA表達的影響

從圖3可見，槐果堿給藥組比空白對照組BaxmRNA表達水平明顯升高(P＜0.05)，而Bcl?2mRNA的表達水平則明顯降低(P＜0.05)，呈劑量依賴性。

3.4 槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞的TGF?β1蛋白表達量的影響

圖1 槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞增殖抑制率的影響Figure 1 Effect of sophocarpine on the proliferation inhibition rate of A549 cells（±s，n=6）

圖2 槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞凋亡的影響Figure 2 Effect of sophocarpine on the apoptosis of A549 cells（±s，n=6）

從圖4可見，槐果堿給藥組比空白對照組的TGF?β1蛋白表達量明顯降低(P＜0.05)，呈劑量依賴性。

3.5 槐果堿與TGF?β1分子對接

從圖5可見，槐果堿與TGF?β1蛋白（PDB ID:年5vqp）的Vina結合能為?4.9 kcal/mol，它們之間主要通過范德華力、烷基、氫鍵和Pi?烷基等作用力相互影響，綜上提示槐果堿與TGF?β1具有較好的結合活性。

圖3 槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞Bcl?2 mRNA和Bax mRNA表達的影響Figure 3 Effect of sophocarpine on the expression of Bcl?2 and BaxmRNA in A549 cells（±s，n=6）

圖4 槐果堿對非小細胞肺癌A549細胞TGF?β1表達的影響Figure 4 Effect of sophocarpine on the expression of TGF?β1 in A549 cells（±s，n=6）

圖5 槐果堿與TGF?β1對接結果Figure 5 Result of sophocarpine docked to TGF?β1

4 討論

肺癌已成為全球新發癌癥中發病率最高的疾病，且發病逐漸呈現年輕化。雖然臨床上治療方法也在逐漸推進，但現有治療方法也逐漸呈現出較多問題，如耐藥、副作用多以及預后效果差等問題。其發病機制目前尚不十分明確，多種外部因素，如紫外線、環境污染等可能參與了誘發基因突變，導致細胞生長失控，引發腫瘤的發生。近年來，隨著我國中藥研究的逐漸深入，從中藥庫中提取抗腫瘤活性成分具有一定的可行性，此外，其具有多靶點治療的優勢，逐步引起科研工作者的重視。因此，深入探討非小細胞肺癌的發生機制和尋找安全有效的治療新藥，特別是從中藥中尋找抗腫瘤活性成分，顯得非常必要。

腫瘤細胞有2個基本生物學特征，一為增殖異常，二為分化異常。故抑制異常增殖水平是評價抗瘤藥物有效性的指標之一[13]。本研究發現槐果堿可顯著抑制非小細胞肺癌A549細胞的增殖抑制，在一定濃度范圍內（20～160μmol/L），隨著槐果堿給藥濃度的升高以及處理時間的延長而顯著升高（P＜0.05）。王慶華等[14]研究發現槐果堿通過調控Bcl?2、Bax和p?Akt水平抑制肝癌細胞SMMC?7721生長,并調控MMP家族和TIMP家族蛋白抑制肝癌細胞侵襲能力。曹東旭等[15]研究發現槐果堿對人紅白血病K562細胞生長有明顯的抑制作用，且這種抑制作用呈濃度依賴性和時間依賴性。

在腫瘤發生和發展過程中，細胞不僅發生了異常增殖和分化，更為重要的是細胞凋亡能力也隨著降低或喪失。研究表明[16]在細胞凋亡調控過程中，Bcl?2家族作用極為重要。其中抑制凋亡基因和促進凋亡蛋白分別是Bcl?2家族的2大類基因，以Bcl?2為代表性的抑制凋亡基因和以Bax為代表性的促凋亡基因最為重要[17]。通過二者的正負調控，調節細胞正常凋亡生物過程，如兩者調控失衡，則可能引起癌癥的發生。本研究發現槐果堿可明顯升高Bax mRNA的表達水平(P＜0.05)和降低Bcl?2 mRNA的表達水平(P＜0.05)，呈劑量依賴性，提示了槐果堿可能通過影響細胞凋亡途徑，促進非小細胞肺癌A549細胞的凋亡進程。

TGF?β信號通路與正常細胞的增殖、分化、表型轉化及腫瘤發生密切相關[18]。TGF?β通過與I型、Ⅱ型受體結合，傳導細胞內外信號，激活多種蛋白亞型，如Smad2和Smad3，活化后的Smad2、Smad3最終與Smad4形成復合物，調節特定的基因轉錄過程，最終影響腫瘤細胞的生物學功能[19?20]。TGF?β1是TGF超家族中最經典的轉化生長因子[21]。越來越多的研究證實[22?23]，通過抑制TGF?β信號通路的傳導可能是治療非小細胞肺癌的有效手段之一。本研究發現槐果堿可顯著降低非小細胞肺癌A549細胞的TGF?β1蛋白表達水平，呈濃度依賴性。此外，分子對接結果顯示槐果堿與TGF?β1有較好的結合活性，提示了槐果堿可能通過抑制TGF?β1的活性，從而促進非小細胞肺癌A549細胞的快速凋亡。

綜上所述，槐果堿可劑量依賴性地抑制非小細胞肺癌A549細胞的增殖和誘導其凋亡，其抗肺癌活性可能通過影響肺癌細胞的增殖、凋亡和TGF?β1的表達有關。