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補腎化瘀泄?jié)岱酵ㄟ^調(diào)控細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶信號通路阻抑人腎小管上皮細(xì)胞間充質(zhì)轉(zhuǎn)化的機(jī)制研究

2021-05-11 07:50:34袁雅琪朱曉琳殷立平尹文雁凌淑洵高雪琴
江蘇中醫(yī)藥 2021年5期
關(guān)鍵詞:劑量信號模型

袁雅琪 朱曉琳 殷立平 尹文雁 凌淑洵 高雪琴 李 立

(南京中醫(yī)藥大學(xué)第二附屬醫(yī)院腎內(nèi)科,江蘇南京210017)

慢性腎臟病(CKD)是全世界范圍內(nèi)嚴(yán)重威脅人類健康的公共衛(wèi)生難題。引起CKD的多種因素會誘導(dǎo)致纖維化因子和致炎因子產(chǎn)生增加,進(jìn)而通過多種途徑引起腎臟組織結(jié)構(gòu)變化,表現(xiàn)為細(xì)胞極性消失、骨架重塑、遷移和侵襲性增強(qiáng),上皮組織消失,成纖維細(xì)胞、炎癥細(xì)胞聚集,細(xì)胞外基質(zhì)沉積,發(fā)生纖維化,最終造成腎功能進(jìn)行性喪失[1]。大量研究表明,在腎臟纖維化的發(fā)生發(fā)展中,腎小管上皮細(xì)胞的上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)扮演著極其重要的角色,即使在CKD早期也可檢測到上皮、間質(zhì)標(biāo)志物的相互轉(zhuǎn)變[2-3]。

轉(zhuǎn)化生長因子β(TGF-β)被公認(rèn)為最重要的EMT正向調(diào)節(jié)因子,在誘導(dǎo)腎小管上皮細(xì)胞EMT中扮演了極其重要的角色[4]。Smad信號能夠介導(dǎo)一系列的分子事件,而這些事件是EMT進(jìn)程所必需的。TGF-β/Smad通路是誘導(dǎo)EMT的經(jīng)典信號通路[5],而Wnt、細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(ERK)等多種信號通路常常與其發(fā)生交叉對話。補腎化瘀泄?jié)岱绞悄暇┲嗅t(yī)藥大學(xué)第二附屬醫(yī)院腎臟科在長期臨床用藥過程中的經(jīng)驗方,對緩解CKD的進(jìn)展具有較好的臨床療效。本研究擬探討補腎化瘀泄?jié)岱皆谌四I小管上皮細(xì)胞(HK-2)EMT中的作用及其干預(yù)機(jī)制,為其臨床使用提供理論依據(jù)。

1 實驗材料

1.1 實驗細(xì)胞HK-2細(xì)胞株購自中國科學(xué)院典型培養(yǎng)物保藏委員會細(xì)胞庫。

1.2 藥物與試劑補腎化瘀泄?jié)岱剿幬锝M成:生黃芪30 g,黨參15 g,蒼術(shù)15 g,生地黃15 g,土茯苓30 g,丹參15 g,桃仁10 g,水蛭3 g,虎杖15 g,白花蛇舌草15 g,生大黃10 g。中藥按處方量173 g加水500 mL,煎煮2次,濾過除去雜質(zhì),進(jìn)一步水煎濃縮,濾過除菌備用。TGF-β1購自美國R&D公司;胎牛血清、DMEM培養(yǎng)基購自美國Gibco公司;E-鈣黏蛋白(E-cadherin,批號:3195)、α-平滑肌肌動蛋白(α-SMA,批號:19245)、波形蛋白(Vimentin,批號:5741)、β-肌動蛋白(β-actin,批號:4970)、細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(ERK,批號:4695)、磷酸化細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(p-ERK,批號:4370)、Smad2/3(批號:8685)、p-Smad2/3(批號:18338)多克隆抗體,免疫球蛋白G(IgG)二抗(批號:7074),購自美國CST公司;絲裂原活化蛋白激酶激酶(MEK)抑制劑(PD98059,批號:MP23)購自上海愛必信生物科技有限公司;RIPA細(xì)胞裂解液(P0013B)購自上海碧云天公司;BCA蛋白定量試劑盒購自美國Thermo公司;RT-PCR逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、Real-time PCR試劑盒購自日本TaKaRa公司;超敏ECL發(fā)光液購自美國Millipore公司。

1.3 主要儀器倒置相差顯微鏡;多功能酶標(biāo)儀(PerkinElmer);熒光定量PCR循環(huán)儀;垂直電泳儀、轉(zhuǎn)膜槽(BIO-RAD)。

2 實驗方法

2.1 細(xì)胞培養(yǎng)將HK-2以貼壁方式培養(yǎng),培養(yǎng)基為含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液(含青霉素100 U/mL+鏈霉素100 μg/mL),放置于37 ℃含95%空氣、5%CO2、飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),于細(xì)胞對數(shù)生長期進(jìn)行實驗。

2.2 細(xì)胞活力檢測待HK-2生長至80%~90%時,將其消化重懸接種于96孔板內(nèi)培養(yǎng),待細(xì)胞貼壁后進(jìn)行分組與干預(yù)。設(shè)空白組和補腎化瘀泄?jié)岱讲煌瑒┝浚?、2、5、10 ng/mL)組,每組設(shè)5個復(fù)孔。培養(yǎng)24 h后每孔加入10 μL CCK-8試劑,孵育4 h后,測定波長450 nm處各孔OD值,取平均值進(jìn)行分析。

2.3 細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察細(xì)胞分組同步化培養(yǎng),待生長至70%左右融合后,空白組仍于正常培養(yǎng)液中培養(yǎng),模型組于正常培養(yǎng)液加TGF-β1 5 ng/mL[6],中藥低、中、高劑量組在模型組的基礎(chǔ)上加入低、中、高劑量(1、2、5 ng/mL)補腎化瘀泄?jié)岱剿鍎└深A(yù),孵育48 h后,倒置顯微鏡下(×40)觀察細(xì)胞形態(tài)。

2.4 Western blot檢測相關(guān)蛋白表達(dá)細(xì)胞同步化培養(yǎng)后分為空白組、模型組(TGF-β1 5 ng/mL)、PD98059干 預(yù) 組(TGF-β1 5 ng/mL+PD98059 10 μmol/L)和中藥低、中、高劑量組(TGF-β1 5 ng/mL+補腎化瘀泄?jié)岱剿鍎?、2、5 ng/mL),干預(yù)24 h,收集細(xì)胞。采用RIPA裂解液(含蛋白酶抑制劑、磷酸酶抑制劑、EDTA)抽提總蛋白,BCA法進(jìn)行蛋白定量,蛋白樣品20 μg每泳道加入到8%SDS-PAGE凝膠中進(jìn)行電泳分離,將蛋白電轉(zhuǎn)至PDVF膜上,5%脫脂奶粉封閉液封閉1 h,一抗4 ℃過夜,TBST漂洗3次后加入辣根堿過氧化物酶標(biāo)記的二抗室溫孵育1 h,TBST漂洗3次后,于PVDF膜上滴加ECL顯影液,凝膠成像系統(tǒng)掃描并分析條帶。

2.5 Real-time PCR檢測相關(guān)基因mRNA的表達(dá)細(xì)胞同步化培養(yǎng)后分為空白組、模型組(TGF-β1 5 ng/mL)和中藥低、中、高劑量組(TGF-β1 5 ng/mL+補腎化瘀泄?jié)岱剿鍎?、2、5 ng/mL),干預(yù)24 h后采用TRIzol裂解細(xì)胞,室溫靜置5 min,加入氯仿充分振蕩15 s,室溫靜置3 min,12 000×g、4 ℃離心15 min后提取上清,加入異丙醇,輕輕混勻后室溫靜置10 min,12 000×g、4 ℃離心10 min,棄上清,加入75%乙醇輕輕洗滌,7500×g、4 ℃離心5 min,棄上清,室溫干燥沉淀后采用適量DEPC水溶解總RNA。測定總RNA濃度及純度后,采用500 ng RNA進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,根據(jù)說明書,加入Master Mix和RNase-free dH2O,在37℃ 15 min,85 ℃ 5 s,4 ℃條件下合成cDNA。根據(jù)Real-time PCR說明書,在PCR反應(yīng)板中加入SYBR Premi×E×TaqⅡ、cDNA及目的基因引物,在50 ℃ 20 s、95 ℃ 10 min、95 ℃ 15 s、60 ℃ 15 s、72 ℃ 40 s條件下采用熒光定量PCR循環(huán)儀擴(kuò)增40個循環(huán),相對定量法(2-△△Ct)進(jìn)行統(tǒng)計分析。根據(jù)Gen Bank E-cadherin、α-SMA、Vimentin及β-actin基因全長序列,利用引物設(shè)計軟件Primer 5.0設(shè)計E-cadherin、α-SMA、Vimentin及β-actin的引物。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

2.6 統(tǒng)計學(xué)方法采用SPSS 17.0軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計分析。數(shù)據(jù)以(±s)表示,2組間比較采用獨立樣本 t 檢驗,3組及以上各組間的比較采用ANOVA單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

3 實驗結(jié)果

3.1 補腎化瘀泄?jié)岱綄K-2細(xì)胞活力的影響與空白組比較,1、2、5 ng/mL補腎化瘀泄?jié)岱剿鍎└深A(yù)對HK-2細(xì)胞活力無影響,但當(dāng)劑量達(dá)到10 ng/mL時,細(xì)胞活力有所下降(P<0.05),考慮可能為細(xì)胞毒性作用,故后續(xù)實驗選用濃度1、2、5 ng/mL的補腎化瘀泄?jié)岱剿鍎R妶D1。

圖1 不同劑量補腎化瘀泄?jié)岱阶饔?4 h后HK-2細(xì)胞活力比較(±s,n=3)

3.2 補腎化瘀泄?jié)岱綄GF-β1誘導(dǎo)HK-2 EMT細(xì)胞形態(tài)學(xué)的影響空白組HK-2細(xì)胞呈“鵝卵石樣”外觀;模型組少見鵝卵石樣細(xì)胞,多見EMT特有的“紡錘形”結(jié)構(gòu),細(xì)胞變瘦長,呈梭形,似成纖維細(xì)胞樣;經(jīng)低、中、高劑量補腎化瘀泄?jié)岱剿鍎└深A(yù)后上述改變得到一定程度的抑制,部分細(xì)胞逆轉(zhuǎn)為鵝卵石樣,并以高劑量組作用最為明顯。見圖2。

3.3 補腎化瘀泄?jié)岱綄GF-β1誘導(dǎo)HK-2 EMT標(biāo)記物的影響中藥各劑量組α-SMA、Vimentin蛋白、mRNA表達(dá)較模型組明顯下降(P<0.05),E-cadherin蛋白、mRNA表達(dá)較模型組明顯上升(P<0.05),見圖3、圖4。以上變化以高劑量組最為明顯。

3.4 補腎化瘀泄?jié)岱綄GF-β1誘導(dǎo)HK-2 ERK及Smad2/3 的影響與空白組比較,模型組HK-2細(xì)胞經(jīng)TGF-β1刺激后,磷酸化ERK、磷酸化Smad2/3蛋白水平顯著升高(P<0.05)。與模型組比較,低、中、高劑量補腎化瘀泄?jié)岱骄苡行б种艵RK及Smad2/3蛋白高磷酸化水平(P<0.05),以高劑量影響最為明顯。此外,TGF-β1和補腎化瘀泄?jié)岱綄RK及Smad2/3總蛋白的表達(dá)無明顯影響。見圖5。

3.5 補腎化瘀泄?jié)岱綄Ρ菶RK通路抑制劑對TGF-β1誘導(dǎo)HK-2 EMT及Smad2/3的影響結(jié)果顯示:與模型組比較,PD98059干預(yù)組、中藥高劑量組α-SMA、Vimentin、磷酸化Smad2/3蛋白表達(dá)水平均明顯降低(P<0.05);Smad2/3總蛋白的表達(dá)無明顯差異。見圖6。

4 討論

腎臟纖維化是各種CKD發(fā)展到最后的共同病理過程,是導(dǎo)致腎功能損傷的關(guān)鍵因素。近年來,人們在腎臟纖維化的分子和細(xì)胞調(diào)控因子方面做了大量研究。研究證明EMT是腎臟纖維化的一個重要進(jìn)程,抑制EMT成為預(yù)防腎臟纖維化發(fā)生和發(fā)展的有效手段[7]。通常,在腎臟纖維化EMT過程中,腎小管上皮細(xì)胞失去上皮細(xì)胞標(biāo)記物,如黏附蛋白E-cadherin表達(dá)下調(diào);獲得間充質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記物,表 現(xiàn) 為Vimentin、α-SMA、Snail表達(dá)上調(diào)[8]。TGF-β1作為最重要的促纖維化因子,在腎臟纖維化中也發(fā)揮了關(guān)鍵作用[9]。研究表明,TGF-β1可以通過Smad依賴性和Smad非依賴性通路發(fā)揮生物學(xué)功能[10],TGF-β1下游信號包括了細(xì)胞質(zhì)中Smad2/3 蛋白磷酸化,磷酸化Smad2/3與Smad4 形成復(fù)合物,隨之轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核中,激活纖維化相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子[11]。此外,TGF-β1/Smad信號通路與ERK信號通路之間的交互關(guān)系在腎臟纖維化中也已經(jīng)被證實[12]。

圖2 各組HK-2 EMT細(xì)胞形態(tài)學(xué)比較(×40)

圖4 各組TGF-β1誘導(dǎo)HK-2 EMT標(biāo)記物mRNA表達(dá)比較(±s,n=3)

圖5 各組TGF-β1誘導(dǎo)HK-2 ERK及Smad2/3 蛋白表達(dá)比較(±s,n=3)

圖6 各組TGF-β1誘導(dǎo)HK-2 EMT及Smad2/3 蛋白表達(dá)比較(±s,n=3)

本研究采用TGF-β1刺激HK-2誘導(dǎo)EMT,觀察發(fā)現(xiàn)HK-2細(xì)胞形態(tài)出現(xiàn)了明顯改變,且EMT標(biāo)記物E-cadherin蛋白及mRNA表達(dá)水平明顯下降,Vimentin、α-SMA蛋白及mRNA表達(dá)水平明顯上調(diào),以上結(jié)果均提示HK-2細(xì)胞EMT體外模型構(gòu)建成功。此外,本研究還發(fā)現(xiàn)經(jīng)TGF-β1刺激后,ERK及Smad2/3蛋白磷酸化水平顯著升高;但使用ERK通路抑制劑預(yù)處理,再給予TGF-β1干預(yù)后,HK-2 EMT標(biāo)記物Vimentin、α-SMA蛋白表達(dá)下降,同時Smad2/3磷酸化水平也有所下降。這些現(xiàn)象反映出:ERK信號通路參與了TGF-β1誘導(dǎo)的HK-2細(xì)胞EMT,并且Smad2/3蛋白可能是ERK信號通路的下游信號分子。

CKD可歸屬于中醫(yī)學(xué)“水腫”“關(guān)格”“虛勞”“水毒癥”等范疇,乃本虛標(biāo)實證,本虛可為氣、血、陰、陽虧虛,標(biāo)實以水濕、濕毒、血瘀多見,病位在腎,可累及多臟。補腎化瘀泄?jié)岱交米阅I氣丸合桃紅四物湯,可補虛祛邪。方中黃芪益氣固表、利水載毒而出,黨參健脾益腎、益氣行水,蒼術(shù)利水解表、托毒外出,生地黃清熱涼血,土茯苓、虎杖、白花蛇舌草清利濕熱,丹參、桃仁活血化瘀,水蛭補肝腎、活血化瘀,大黃瀉下通便排毒兼活血化瘀。諸藥合用,共奏補腎益氣、活血化瘀、泄?jié)崤哦局πА1狙芯繉⒋酥兴帍?fù)方制成不同劑量水煎劑干預(yù)HK-2,結(jié)果表明:補腎化瘀泄?jié)岱侥茉谝欢ǔ潭壬铣蕜┝恳蕾囆缘啬孓D(zhuǎn)TGF-β1誘導(dǎo)的EMT標(biāo)記物E-cadherin、Vimentin、α-SMA蛋白及mRNA的表達(dá);同時,與模型組比較,補腎化瘀泄?jié)岱礁鲃┝拷MERK磷酸化及Smad2/3磷酸化水平均有一定程度的下調(diào),且以5 ng/mL效果最佳。這表明補腎化瘀泄?jié)岱皆谧枰諬K-2 EMT的同時還抑制了ERK及Smad2/3蛋白活性。在與ERK通路抑制劑PD98059干預(yù)組比較后,我們發(fā)現(xiàn)補腎化瘀泄?jié)岱秸{(diào)控EMT標(biāo)記物及Smad2/3的作用與ERK通路抑制劑的效果類似,表明補腎化瘀泄?jié)岱骄徑釫MT的作用很有可能與ERK通路有關(guān)。

綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn),補腎化瘀泄?jié)岱胶芸赡芡ㄟ^調(diào)控ERK信號通路,抑制Smad2/3蛋白磷酸化,從而實現(xiàn)逆轉(zhuǎn)HK-2 EMT的作用。但本研究只觀察了TGF-β1/Smad信號通路與ERK信號通路之間的交互關(guān)系,而中藥復(fù)方發(fā)揮療效是多成分多靶點共同作用的結(jié)果,是否存在調(diào)節(jié)其他信號通路的功能,將是我們下一步研究的方向。

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